Chestnut Studying
摘要
Macrophage transition from an inflammatory to reparative phenotype after tissue injury is controlled by epigenetic enzymes that regulate inflammatory gene expression. We have previously identified that the histone methyltransferase SETDB2 in macrophages drives tissue repair by repressing NF-κB–mediated inflammation. Complementary ATAC-Seq and RNA-Seq of wound macrophages isolated from mice deficient in SETDB2 in myeloid cells revealed that SETDB2 suppresses the inflammatory gene program by inhibiting chromatin accessibility at NF-κB–dependent gene promoters. We found that STAT3 was required for SETDB2 expression in macrophages, yet paradoxically, it also functioned as a binding partner of SETDB2 where it repressed SETDB2 activity by inhibiting its interaction with the NF-κB component, RELA, leading to increased RELA/NF-κB–mediated inflammatory gene expression. Furthermore, RNA-Seq in wound macrophages from STAT3-deficient mice corroborated this and revealed STAT3 and SETDB2 transcriptionally coregulate overlapping genes. Finally, in diabetic wound macrophages, STAT3 expression and STAT3/SETDB2 binding were increased. We have identified what we believe to be a novel STAT3/SETDB2 axis that modulates macrophage phenotype during tissue repair and may be an important therapeutic target for nonhealing diabetic wounds.
巨噬细胞在组织损伤后从炎症表型向修复表型转变的过程受调控炎症基因表达的表观遗传酶控制。我们之前已经发现,巨噬细胞中的组蛋白甲基转移酶SETDB2通过抑制NF-κB介导的炎症来促进组织修复。对从SETDB2骨髓细胞缺陷小鼠中分离出的伤口巨噬细胞进行互补性ATAC-Seq和RNA-Seq分析后发现,SETDB2通过抑制NF-κB依赖性基因启动子上的染色质可及性来抑制炎症基因程序。我们发现,STAT3是巨噬细胞中SETDB2表达的必要条件,但矛盾的是,它也是SETDB2的绑定伴侣,通过抑制SETDB2与NF-κB成分RELA的相互作用来抑制SETDB2的活性,从而导致RELA/NF-κB介导的炎症基因表达增加。此外,STAT3缺陷小鼠伤口巨噬细胞中的RNA-Seq证实了这一点,并揭示了STAT3和SETDB2对重叠基因的转录调控。最后,在糖尿病伤口巨噬细胞中,STAT3表达和STAT3/SETDB2结合增加。我们已经确定了一个新的STAT3/SETDB2轴,该轴在组织修复过程中调节巨噬细胞表型,并可能成为糖尿病伤口不愈合的重要治疗靶点。
实验结果1
SETDB2在NF-κB依赖性基因启动子中富集于小鼠伤口巨噬细胞中
在人类和鼠类伤口巨噬细胞中,SETDB2富集在NF-κB依赖性基因启动子上。为了研究 SETDB2 在伤口巨噬细胞中控制的下游基因,并阐明 SETDB2 控制巨噬细胞表型的确切转录靶标、 作者对来自Setdb2fl/fl Lyz2Cre+ mTmG小鼠伤口的CD3-CD19-Ly6G- CD11b+Ly6Chi GFP+和CD3-CD19-Ly6G- CD11b+Ly6Clo GFP+细胞进行了 FACS 检测。 在这一系统中,成功的基因重组会同时导致Tomato报告子的切除和 GFP 报告子的激活,从而在成功进行 Cre 介导的缺失基因删除的细胞中实现 GFP 表达。鉴于作者之前发现SETDB2在伤口后第 5 天的伤口巨噬细胞中表现出最高的表达量,作者从Setdb2fl/flLyz2Cre mTmG小鼠中分离了第 5 天的伤口巨噬细胞,以确定SETDB2缺失后巨噬细胞下游转录特征的最大改变。由于 Ly6C 是一种公认的指定炎性巨噬细胞亚群的表面标记物,作者进一步使用 FACS 将CD3-CD19-Ly6G- CD11b+ GFP+群体分离成CD3-CD19-Ly6G- CD11b+ GFP+Ly6Chi(Ly6Chi)和CD3-CD19-Ly6G- CD11b+ GFP+Ly6Clo(Ly6Clo)亚群,以根据炎性亚型划分转录差异。作者对Ly6Chi和Ly6Clo亚群进行了 RNA-Seq 分析,确定了这些亚型的基因表达谱,并研究了 SETDB2 如何影响这些亚群的基因表达。不出所料,作者观察到Ly6Chi和Ly6Clo 之间差异表达基因的显著差异,而 SETDB2 的缺乏又进一步改变了这些基因的表达(图 1A)。此外,作者发现 SETDB2 控制着在伤口修复中起关键作用的炎症基因的表达,包括Il1b、Il6、Il12 和Tnf,而 SETDB2 缺失会进一步增加Ly6Chi群体中这些基因的表达(图 1,B 和 C)。重要的是,发现的许多 DEGs 都是众所周知的 TNF-α 和 IFN-β 信号通路的下游靶点,它们在包括伤口愈合在内的重要生物过程中调节炎症起着关键作用。为支持 SETDB2 调节炎症表型,这些促炎症基因在 Ly6Chi 巨噬细胞群中更为富集,与Ly6Clo巨噬细胞亚型相比,Ly6Chi巨噬细胞群显示出更强的炎症特征。为了进一步划分 SETDB2 调控的下游通路,作者对 DEGs 进行了基因本体(GO)分析,结果支持伤口巨噬细胞中Ly6Chi和Ly6Clo亚群之间独特的转录特征(图 1D)。此外,在 Setdb2 缺陷的Ly6Chi巨噬细胞中,包括免疫反应、对 LPS 的反应和细胞因子活性在内的通路也被上调,这进一步支持了 SETDB2 在限制该亚群炎症表型中的作用。此外,Setdb2缺陷型Ly6Chi巨噬细胞亚群的通路分析表明,IL-1R和NF-κB信号的激活增加,进一步支持了SETDB2在负向调节这些炎症通路中的作用。由于基因表达的变化不一定反映 SETDB2 缺失导致的染色质结构的改变,作者接下来对从Setdb2fl/fl Lyz2Cre+和 Cre 阴性对照的伤口中 FACS 分离出的CD3-CD19-Ly6G- CD11b+ Ly6C+ GFP+细胞进行了 ATAC-Seq,以检测 Setdb2 缺陷伤口巨噬细胞中染色质的可及性,并特别关注图 1A 中 RNA-Seq 鉴定出的炎症相关基因。作者的 ATAC-Seq 分析发现,与 Setdb2 基因健全的Ly6Chi细胞相比,Setdb2 基因缺陷的Ly6Chi伤口巨噬细胞中炎症基因(Il1b 、Nfkb1 、Relb 、Rel 、Cxcl2)的染色质可及性增加了(图 1E)。这些最初的无偏测序结果还有两个值得注意的发现。首先,正如之前所显示的,SETDB2 通过 H3K9 的三甲基化促进封闭染色质构型,从而导致炎症基因的沉默。其次,SETDB2调节炎症基因启动子中NF-κB结合区染色质的可及性,这再次证实了之前的研究结果,即SETDB2转录靶向NF-κB结合启动子区。由于作者发现 SETDB2 能特异性地调节炎症基因启动子区中的 NF-κB 结合区,因此作者试图更具体地研究 SETDB2 和 NF-κB 在已知的 NF-κB 靶基因上的相互作用。作者分离了小鼠生化巨噬细胞(BMDMs),并用 IFN-β(10 U/mL;8.5 ng/mL)(作者之前已确定 IFN-β是 SETDB2 的强效上游调节因子)处理,同时使用或不使用 NF-κB 抑制剂(BAY 11-7082,10 μM)。然后,对炎症基因启动子上由 SETDB2 沉积的抑制性表观遗传标记 H3K9me3 进行了 ChIP 分析。IFN-β 导致Il1b和Tnf启动子上的 H3K9me3 预期增加,而这种 H3K9 三甲基化在 NF-κB 抑制剂的处理下被逆转(图 1,F 和 G)。总之,这些数据表明,SETDB2 通过调节这些基因内染色质的可及性,抑制 NF-κB 依赖性炎症基因的表达,而矛盾的是,NF-κB 在这些基因启动子上正向调节 SETDB2 的功能。
实验结果2
STAT3 在人类和鼠类伤口巨噬细胞的伤口修复过程中是动态的,并调节SETDB2
STAT3 可调控人和小鼠伤口巨噬细胞中 SETDB2 的表达,并且是正常伤口愈合所必需的。作者研究了调控巨噬细胞中SETDB2表达的上游转录机制。作者采用了生物信息学、体外和体内相结合的方法来确定调控SETDB2 表达的 TFs。由于作者的研究小组之前已经发现 STAT 蛋白能调控SETDB2的表达,因此作者分析了人类SETDB2启动子中预测的 STAT 结合位点。利用可公开访问的 TF 结合数据库 JASPAR,作者检查了各种 STAT 蛋白结合位点,发现 STAT3 是预测与SETDB2启动子结合的最主要 STAT TF。作者在人类SETDB2启动子中发现了 24 个推定的 STAT3 结合位点,这些位点还与活跃转录的多个特征重叠,包括 H3K27Ac、H3K4me3 和开放染色质 DNase 超敏位点(DHS),这些位点都是通过 UCSC 基因组浏览器(https://genome.ucsc.edu/ )发现的(图 2A )。虽然作者之前已经确定了 STAT1 在调控巨噬细胞中SETDB2的重要性,但根据作者最近对人类伤口的 scRNA-Seq 数据以及对 TF 与SETDB2启动子结合的分析,作者确定 STAT3 是伤口巨噬细胞中表达最强烈、最丰富的 STAT 成员(图 2B)。此外,为了进一步研究 STAT3 和 SETDB2 之间的关系,作者对患者皮肤伤口 scRNA 序列中的巨噬细胞进行了皮尔逊相关性分析。作者发现,在人类伤口巨噬细胞中,STAT3和SETDB2表现出显著且非常强的相关性(图 2C)。接下来,为了证实 Stat3 与Setdb2启动子的结合,作者分离了小鼠巨噬细胞并对 Stat3 进行了 ChIP 检测。与IgG对照抗体相比,作者在Setdb2启动子上发现了明显的 Stat3 富集(图 2D)。为了确定 STAT3 功能对SETDB2启动子的影响,作者将人SETDB2转录起始位点的 3 kb 片段克隆到 pGL3 荧光素酶载体中,并测量了它在 BMDMs 中的活性。如图 2E 所示,在用 IFN-β 处理的 BMDMs 中,SETDB2启动子的活性增加了 2 倍,这种增加在用 JAK1/3 抑制剂托法替尼(100 μM)处理后受到抑制。此外,从Stat3fl/fl Lyz2Cre+小鼠和Cre阴性同系对照分离的体内伤口巨噬细胞(CD3-CD19-Ly6G- CD11b+ Ly6C+)显示Setdb2表达减少(图2F),用托法替尼处理BMDMs可减少Setdb2的表达(图2G)。接下来,为了研究 STAT3 在正常伤口愈合过程中的动力学,作者在小鼠伤口愈合后第 0 天和第 5 天采集了伤口巨噬细胞(CD3-CD19-NK1.1-Ly6G- CD11b+ Ly6C+ ),并对 STAT3 进行了 Western 印迹检测。STAT3 从第 0 天到第 5 天明显减少,表明它在整个伤口愈合过程中具有高度动态性(图 2H)。最后,为了测试 STAT3 在伤口修复过程中在巨噬细胞中的作用,作者对Stat3fl/fl Lyz2Cre+和 Cre 阴性对照组进行了创伤,并使用 NIH ImageJ 软件测量了整个愈合过程中的伤口大小。在较早的时间点,髓系细胞特异性地缺失 Stat3 会导致伤口变小;然而,在第 5 天,巨噬细胞中 Stat3 的缺失会导致伤口略微变大,这表明 Stat3 在伤口修复过程中以时间依赖性的方式调节巨噬细胞的表型(图 2I)。综上所述,这些结果表明,STAT3 在整个伤口愈合过程中都是动态的,在这一过程中驱动人和小鼠伤口巨噬细胞中SETDB2的表达,并以时间依赖性的方式调节伤口愈合。
实验结果3
STAT3 抑制伤口巨噬细胞中 SETDB2 和 NF-κB 之间的物理相互作用
STAT3 可抑制伤口巨噬细胞中 SETDB2 与 NF-κB 之间的物理相互作用。由于作者发现 SETDB2 选择性地靶向 NF-κB 结合的启动子区域,而且 NF-κB 是 SETDB2 在炎症基因启动子上的活性所必需的,因此作者研究了 SETDB2 和 NF-κB 之间的蛋白质相互作用。因此,作者从人类伤口的单细胞 RNA-Seq(scRNA-Seq)数据集中对巨噬细胞进行了表达-相互作用分析,以细胞类型特异性的方式鉴定候选的 SETDB2 结合伙伴。作者发现 SETDB2、RELA(NF-κB 成分)(相互作用得分 0.50)和 STAT3(相互作用得分 0.40)之间的相互作用得分最高(图 3A)。为了证实 SETDB2 与这些 TF 中的一个或多个结合,作者使用重组 GST-SETDB2 与 BMDM 裂解物中的纯 GST 阴性对照进行了谷胱甘肽-S 转移酶(GST)下拉检测。作者发现 NF-κB 成分 p65(RELA)和 STAT3 是 SETDB2 的结合伙伴(图 3B)。值得注意的是,相对于它们的输入,RELA 和 STAT3 与 SETDB2 表现出相似的结合强度,这与作者的候选相互作用分析中分别为 0.50 和 0.40 的相互作用评分相一致,进一步支持了作者的发现。
鉴于 STAT3 和 RELA 之间的相互作用得分相似,且 STAT3 和 RELA 与 GST-SETDB2 的结合比例相等,作者假设 STAT3 可能会改变 RELA 和 SETDB2 的结合。为了验证这一点,作者首先在用 Stat3 抑制剂(隐丹参酮,1 μM)处理的 BMDMs 中进行了 Setdb2 免疫沉淀。Stat3抑制增加了Setdb2与RelA的结合,表明Stat3确实负向调节了Setdb2/RelA的结合(图3C)。此外,作者在缺乏 Stat3 的 BMDMs(Stat3fl/flLyz2Cre+ )与 Cre 阴性的同卵对照中进行了内源性 Setdb2 和 RelA 的共免疫沉淀。与对照组相比,Stat3缺陷的巨噬细胞中有更多的NF-κB与Setdb2结合,这证实了作者之前的发现,即Stat3干扰了Setdb2/RelA的相互作用。值得注意的是,在同一组实验中,IFN-β导致NF-κB与Setdb2结合的适度增加,这与作者的RNA-Seq和ATAC-Seq发现的Setdb2对NF-κB依赖性启动子的调控以及作者之前发现的Setdb2活性受IFN-β调控的结果是一致的(图3D)。为了检验 Stat3 对巨噬细胞中 Setdb2 和 RelA 结合的影响,作者在Stat3fl/flLyz2Cre+或 Cre 阴性的同种对照 BMDMs 中对 Setdb2 和 RelA 进行了 ChIP 检测,结果发现与Stat3fl/fl Lyz2Cre-巨噬细胞相比,Stat3 缺失的巨噬细胞中 Setdb2 和 NF-κB 在Il1b和Il6启动子处的富集增加了(图 3,E 和 F)。作者在第 5 天分离的体内伤口巨噬细胞(CD3-CD19-NK1.1-Ly6G- CD11b+)中进行了同一组实验,发现在 Stat3 缺失的巨噬细胞中,Setdb2 和 RelA 与Il1b启动子的结合增加。综上所述,这些结果确定了 STAT3 可抑制伤口巨噬细胞中 NF-κB 和 SETDB2 的结合相互作用,因此,STAT3 的水平可能通过直接影响SETDB2的表达以及干扰炎症基因启动子位点的 SETDB2/NF-κB 结合相互作用而对炎症基因表达的精确控制至关重要。
实验结果4
STAT3 和 SETDB2 核心调节伤口巨噬细胞中炎症基因的表达
STAT3 和 SETDB2 核心调节伤口巨噬细胞中炎性基因的表达。鉴于 STAT3 在调节SETDB2表达和 SETDB2 活性方面的重要作用,作者研究了 STAT3 在伤口愈合过程中的转录靶标。作者选择了伤口愈合后第 5 天的时间点,这与作者之前在Setdb2fl/fl Lyz2Cre小鼠中进行的 RNA-Seq 和 ATAC-Seq 分析类似,以确保 STAT3 和 SETDB2 缺失之间的准确比较。从Stat3fl/fl Lyz2Cre+小鼠和Cre阴性同系对照小鼠中分离出伤口巨噬细胞,然后用FACS对CD3-CD19-Ly6G- CD11b+ Ly6C+进行分选,并将其分离成Ly6Chi和Ly6Clo群。然后,作者对这些伤口巨噬细胞进行了 RNA-Seq 分析,发现在缺乏 Stat3 的伤口巨噬细胞中,包括 IL-17 和 IL-1BR 通路在内的关键炎症基因通路中的基因表达量增加了(图 4A)。此外,与作者在Setdb2fl/fl Lyz2Cre+伤口巨噬细胞中观察到的结果类似(图 1),Stat3 的炎症转录靶标在Ly6Chi巨噬细胞群体中更高,这与该亚群的促炎症巨噬细胞表型一致。为了确定Stat3下游的重要调控通路,作者对Stat3fl/fl Lyz2Cre+伤口巨噬细胞中的DEGs进行了GO分析,发现在Stat3缺陷的巨噬细胞中,参与IFN-β和TNF-α信号通路的基因上调(图4,B和C)。此外,作者还对Setdb2fl/fl Lyz2Cre+巨噬细胞中上调的一组促炎基因进行了定量 PCR(qPCR),从而验证了 RNA-Seq 数据以及 Stat3 和Setdb2之间的核心共轭作用。与对照组相比,作者观察到Stat3fl/fl Lyz2Cre+BMDM 中包括Il1b、Il6 和Il12a在内的炎性细胞因子表达增加(图 4,D-F)。
根据作者观察到的 SETDB2 和 STAT3 物理相互作用并参与类似炎症基因调控的情况,作者研究了它们是否调控重叠的信号通路。为了解决这个问题,作者进行了与上述类似的 GO 分析,但特别考察了Setdb2fl/fl Lyz2Cre+和Stat3fl/fl Lyz2Cre+伤口巨噬细胞中上调基因的富集情况。作者发现,在 Setdb2 基因缺陷的巨噬细胞中,共有 584 个基因上调(438 个基因下调),而在 Stat3 基因缺陷的巨噬细胞中,共有 551 个基因上调(746 个基因下调)(图 4G)。其中,12个常见基因在Setdb2fl/fl Lyz2Cre+和Stat3fl/fl Lyz2Cre+巨噬细胞中上调,19个常见基因下调。类似的分析表明,29 个基因在Setdb2fl/fl Lyz2Cre+中下调,但在Stat3fl/fl Lyz2Cre+ 中上调,还有 19 个基因在Setdb2fl/fl Lyz2Cre+中上调,但在Stat3fl/fl Lyz2Cre+ 中下调。仅在Ly6Chi群体中,Rasd1和Lyz1在Setdb2fl/fl Lyz2Cre+和Stat3fl/fl Lyz2Cre+两组中均上调(图 4H)。为了进一步证实 Stat3 抑制下游炎症基因表达的发现,作者在小鼠 BMDMs 中用隐丹参酮(1 μM)处理 6 小时,对 Stat3 进行药理学抑制。在 BMDMs 中抑制 Stat3 会导致Il6和Tnf的表达增加(图 4,I 和 J)。综上所述,这些结果表明 SETDB2 和 STAT3 核心调节促炎基因的转录,STAT3/SETDB2 的相互作用对伤口愈合过程中控制炎性巨噬细胞表型至关重要。
实验结果5
糖尿病伤口巨噬细胞向修复表型过渡期间 STAT3 增加
在向修复表型过渡的过程中,糖尿病伤口巨噬细胞中的 STAT3 会增加。鉴于作者之前的研究发现 SETDB2 在 T2D 伤口巨噬细胞中减少,而作者目前的数据表明 STAT3 对 SETDB2 有新的调控作用,因此作者研究了 STAT3 对 SETDB2 的调控在糖尿病伤口巨噬细胞中是否发生了改变。为了比较健康巨噬细胞和 T2D 巨噬细胞中STAT3的表达,作者分析了从非糖尿病患者和 T2D 患者分离的人类伤口组织中的 scRNA-Seq。作者发现,与对照组相比,来自人类 T2D 伤口的巨噬细胞中STAT3的表达明显增加(图 5A)。为了模拟糖尿病伤口愈合的病理过程,作者通常使用糖尿病诱导肥胖(DIO)小鼠模型,该模型在生理上密切反映了糖尿病前期的状态,作者实验室和其他实验室已经建立了完善的模型来模拟 T2D 对伤口愈合的病理影响。因此,作者分离了 DIO 和正常饮食(ND)小鼠的伤口巨噬细胞,然后用 IFN-β 处理巨噬细胞。与 ND 巨噬细胞相比,DIO 巨噬细胞的Stat3和Nfkb/c-Rel表达增加(图 5,B 和 C)。通过对不同时间点分离自 ND 和 DIO 小鼠的整个伤口和伤口巨噬细胞进行 Western 印迹分析,也在蛋白质水平上验证了这一点。既然作者发现 STAT3 抑制了正常巨噬细胞中 RELA/SETDB2 的相互作用,作者接下来要问的是,糖尿病巨噬细胞中 STAT3 的增加是否会破坏 RELA/SETDB2 的相互作用,从而可能导致 NF-κB 介导的炎症增加,因为 NF-κB 依赖性启动子上的 SETDB2 减少了。为了验证这一点,作者在ND和DIO小鼠受伤后第5天获得的整个伤口裂解物中进行了Stat3与内源性Setdb2的共免疫沉淀。与 ND 伤口相比,作者观察到 DIO 伤口中 Stat3 与 Setdb2 的结合增加了(图 5D)。为了检验Stat3失调的差异是否是由于活化增加所致,作者测量了ND和DIO巨噬细胞中磷酸化的Stat3,因为Stat3是以活性形式磷酸化的。ND 和 DIO BMDMs 的基础 Stat3 磷酸化并无太大差异,这表明 Stat3/RelA 结合的差异很可能是由于Stat3表达的增加,而不是 Stat3 的活化和/或与 Setdb2 的亲和力。最后,为了测试巨噬细胞中的 Stat3 基因缺失是否能改善糖尿病小鼠的伤口愈合,作者对巨噬细胞特异性缺失 Stat3 的 DIO 小鼠(Stat3fl/fl Lyz2Cre+ )与 Cre 阴性对照组进行了伤口曲线分析。事实上,巨噬细胞中的 Stat3 基因缺失大大改善了 DIO 小鼠的早期伤口愈合(图 5E)。综上所述,这些结果表明,STAT3在人和小鼠糖尿病伤口巨噬细胞中增加,并在糖尿病伤口中与 SETDB2 产生更强的相互作用,而且作者证实,在巨噬细胞中删除 STAT3 可改善体内糖尿病伤口愈合。
The STAT3/SETDB2 axis dictates NF-κB–mediated inflammation in macrophages during wound repair. JCI Insight. 2024