Chestnut Studying
摘要
Macrophages destroy bacteria and other microorganisms through phagocytosis-coupled antimicrobial responses, such as the generation of reactive oxygen species and the delivery of hydrolytic enzymes from lysosomes to the phagosome. However, many intracellular bacteria subvert these responses, escaping to other cellular compartments to survive and/or replicate. Such bacterial subversion strategies are countered by a range of additional direct antibacterial responses that are switched on by pattern-recognition receptors and/or host-derived cytokines and other factors, often through inducible gene expression and/or metabolic reprogramming. Our understanding of these inducible antibacterial defence strategies in macrophages is rapidly evolving. In this Review, we provide an overview of the broad repertoire of antibacterial responses that can be engaged in macrophages, including LC3-associated phagocytosis, metabolic reprogramming and antimicrobial metabolites, lipid droplets, guanylate-binding proteins, antimicrobial peptides, metal ion toxicity, nutrient depletion, autophagy and nitric oxide production. We also highlight key inducers, signalling pathways and transcription factors involved in driving these different antibacterial responses. Finally, we discuss how a detailed understanding of the molecular mechanisms of antibacterial responses in macrophages might be exploited for developing host-directed therapies to combat antibiotic-resistant bacterial infections.
巨噬细胞通过吞噬作用和抗菌反应来消灭细菌和其他微生物,例如产生活性氧和从溶酶体向吞噬体输送水解酶。然而,许多细胞内细菌会破坏这些反应,逃到其他细胞区室中存活和/或繁殖。 这种细菌破坏策略会受到一系列额外的直接抗菌反应的反击,这些反应通常通过诱导基因表达和/或代谢重编程,由模式识别受体和/或宿主来源的细胞因子和其他因子启动。 我们对于巨噬细胞中这些诱导性抗菌防御策略的理解正在迅速发展。在这篇综述中,我们概述了巨噬细胞中可能参与的各种抗菌反应,包括LC3相关吞噬作用、代谢重编程和抗菌代谢物、脂滴、鸟苷酸结合蛋白、抗菌肽、金属离子毒性、营养耗竭、自噬和一氧化氮的产生。我们还强调了驱动这些不同抗菌反应的关键诱导剂、信号通路和转录因子。最后,我们讨论了如何利用对巨噬细胞抗菌反应分子机制的详细理解来开发针对宿主的疗法,以对抗抗生素耐药细菌感染。
前言
巨噬细胞是专业的吞噬细胞,它们存在于全身特定的解剖位置,能够感知环境挑战并作出反应。它们能够区分危险刺激和无害刺激,确保只有在遇到真正的威胁时才会触发破坏性的生物反应,例如产生抗菌自由基。这种区分是通过多种机制实现的。首先,巨噬细胞表达吞噬受体,促进对细胞凋亡和微生物等颗粒物质的摄取和降解,并触发适当的下游反应。吞噬作用对于维持体内平衡至关重要。例如,肺泡巨噬细胞在肺泡之间爬行,吞噬并消灭病原菌,从而抑制其他免疫成分的触发,否则会导致病理炎症。其次,巨噬细胞表达模式识别受体(PRR),用于检测危险分子的分子特征,例如病原体相关分子模式(PAMP)。PRR本身通常无法区分病原性和非病原性细菌,因为PAMP在两者中都很常见。然而,非粘膜组织中的巨噬细胞只有在遇到侵入性细菌时才可能遇到PAMP。对于粘膜组织中的巨噬细胞来说,发育程序、特定的微环境和其他信号对于选择性地启动抗菌防御机制非常重要。例如,促炎细胞因子(如干扰素-γ)使巨噬细胞对PAMP敏感,从而增强抗菌防御能力。当巨噬细胞面临细菌感染威胁时,可通过这种方式直接启动抗菌反应。
在考虑抗菌防御机制时,必须认识到巨噬细胞在个体发育和环境方面存在不同类型。有些巨噬细胞来自胎儿,在胚胎发育期间由卵黄囊衍生的红髓祖细胞发育而来,并通过局部自我更新维持到成年。其他巨噬细胞则来自单核细胞,由骨髓造血干细胞分化而来。组织微环境对巨噬细胞表型也有显著影响。因此,正如我们在此讨论的那样,抗菌防御系统并不一定适用于所有巨噬细胞群。除了不同组织巨噬细胞之间的防御系统存在多样性外,年龄和先前环境挑战也会影响组织巨噬细胞的表型和功能,当稳态受到干扰时,单核细胞衍生的巨噬细胞能够取代胎儿衍生的巨噬细胞。例如,单核细胞分化成肺泡巨噬细胞,并在肺纤维化期间导致病理。尽管不同组织和个体之间的巨噬细胞存在异质性,但它们仍具有共同的特性,这些特性对于抗菌防御至关重要。
十九世纪末,埃利·梅契尼科夫首次描述了吞噬作用,我们对这一过程的理解仍在不断加深。组织特异性吞噬受体(如免疫球蛋白超家族的补体受体(CRIg;也称为VSIG4))在抗菌防御中的作用已经得到确定,介导吞噬作用与抗菌活性氧(ROS)的产生以及随后在吞噬溶酶体中细菌降解的分子机制也已确定。例如,巨噬细胞金属弹性蛋白酶(也称为MMP12)的细胞内储存物被输送到吞噬溶酶体,直接破坏细菌。然而,许多细胞内细菌病原体,例如分枝杆菌、沙门氏菌、李斯特菌、军团菌、耶尔森菌和志贺氏菌,可以在巨噬细胞内存活和繁殖。这些生物的共同特征是它们能够逃避吞噬作用介导的抗菌防御机制。其他文献已对这种逃避途径进行了研究,在此不再赘述。我们也不讨论与抗菌防御相关的炎症和细胞死亡等生物学过程,因为它们本身通常不会导致细菌死亡(尽管有证据表明,一些哺乳动物的孔形成蛋白诱导炎症性细胞死亡,也可以直接作用于细菌)。相反,我们关注的是诱导性抗菌防御系统,该系统在检测到细菌或其他危险信号时启动或增强,直接杀死细菌或抑制其生长。这些反应通常涉及受调控的基因表达和/或细胞代谢。巨噬细胞使用的各种抗菌反应使杀死病原菌的可能性多样化,有可能使病原体与宿主的平衡向宿主倾斜。我们将介绍我们对这些途径的最新认识,重点介绍该领域的新发现,特别是代谢重编程和抗菌代谢产物、脂滴和金属离子毒性。我们将重点介绍我们对巨噬细胞诱导性抗菌反应的最新认识,讨论当前的知识空白,并提供旨在针对直接抗菌防御途径的宿主定向疗法(HDT)的示例(表1)。
抗菌防御诱导剂
巨噬细胞表达多种受体,使这些细胞能够检测环境挑战并做出相应反应。例如,Toll样受体(TLR)能够检测各种PAMP和危险相关的分子模式,从而启动控制炎症、细胞存活、抗原呈递和抗菌反应的基因表达程序。20世纪90年代的基础研究首次揭示了TLR在哺乳动物宿主防御中的重要性;研究人员发现,缺乏发育基因Toll的果蝇会感染真菌Aspergillus fumigatus,随后不久又发现了具有促炎功能的人类Toll同源物。随后,人们发现Tlr4突变是C3H/HeJ和C57BL/10ScCr小鼠品系对脂多糖(LPS)无反应的表型的诱因,从而将TLR4与抗菌防御联系起来。基因关联研究证实了TLR4在人类抵御细菌方面的重要性。例如,TLR4变异与易感染革兰氏阴性菌有关 。此外,MYD88和IRAK4 TLR信号传导组件存在遗传缺陷的儿童易患化脓性细菌感染。然而,这些人不易患其他感染,这很可能表明其他先天免疫受体可用于诱导抗菌防御。值得注意的是,IL-1家族细胞因子和其他TLR也使用MYD88-IRAK轴进行信号传导,因此很难从这些遗传缺陷的研究中得出任何一种受体信号传导系统的表型。此外,TLR4对抗菌防御的贡献可能部分反映了细胞因子和其他炎症介质的诱导产生,这些细胞因子和炎症介质以自泌或旁泌的方式发挥作用,开启巨噬细胞的额外抗菌反应。
通过细胞因子受体进行信号传导对于激活巨噬细胞的抗菌反应也至关重要,T细胞衍生的IFNγ就是一个很好的例子。人类基因研究强调了IFNγ在抵御细菌病原体方面的重要性,研究表明,IFNγ反应所需的基因先天错误会导致孟德尔易感性结核病。小鼠的情况也是如此。除了IFNγ,肿瘤坏死因子(TNF)也有助于巨噬细胞的抗菌防御,最近一项针对沙门氏菌亚种肠炎血清型肠炎沙门氏菌(Stm)的研究证实了这一点。该研究显示,TNF可对抗巨噬细胞激活,从而在宿主体内持续存在。其他细胞因子在巨噬细胞抗菌反应中也发挥着重要作用。例如,TH17细胞衍生和IL-10家族成员IL-26都可以诱导抗菌自噬,并在巨噬细胞内发挥直接的抗菌活性。最近的一项研究分析了免疫细胞对86种不同细胞因子的反应,无疑将为其他细胞因子在诱导巨噬细胞抗菌反应中的作用提供新的见解。
最后,虽然吞噬性受体(如溶血素Fcγ受体(FcγRs))通常通过ROS的产生和吞噬体-溶酶体融合与直接的抗菌防御相关,但有证据表明它们也可以通过基因调控参与诱导性抗菌防御。例如,FcγRs会触发转录因子EB(TFEB)的核转运,后者是溶酶体生物发生的主调节因子,可诱导溶酶体基因的表达,并使巨噬细胞做好应对后续挑战的准备,从而增强抗菌防御能力。
诱导性抗菌防御的类型
来自各种受体的输入信号会进入巨噬细胞信号系统,从而开启或放大一系列抗菌反应,包括LC3相关吞噬作用(LAP)、代谢重编程和抗菌代谢物、脂滴、鸟苷酸结合蛋白(GBPs)、抗菌肽、金属离子毒性、营养耗竭、自噬和一氧化氮(NO)的产生(图1)。
LC3相关吞噬作用
虽然巨噬细胞通过吞噬受体进行吞噬作用介导的细菌破坏,但TLR信号通过线粒体重编程(稍后讨论)和LAP(图1a)增强了吞噬作用耦合的抗菌防御。15年前,人们发现吞噬颗粒中的TLR信号传导会导致两种与自噬相关的蛋白(ATG5和ATG7)将自噬标记物LC3招募到吞噬体中,从而揭示了巨噬细胞中的LAP。然而,LAP并不涉及自噬机制的所有组成部分,也不会形成双膜自噬体,因此LAP与自噬不同。LAP加速吞噬体-溶酶体融合,从而增强巨噬细胞对吞噬微生物的杀伤力。这一过程需要吞噬细胞NADPH氧化酶复合物产生ROS,而ROS是LC3被招募到吞噬体所必需的。在病原体识别下游,IL-6自身分泌也会促进巨噬细胞中的LAP。对IL-6缺陷巨噬细胞的研究表明,这种细胞因子会刺激ERK1和ERK2聚集到吞噬体上,使吞噬体氧化酶的p47phox(也称为NCF1)成分磷酸化,从而诱导ROS的产生和LAP的启动。值得注意的是,脓毒症患者体内LAP功能受损,可能造成免疫麻痹。因此,在严重脓毒症的情况下,恢复LAP功能是HDT的潜在目标。该研究还表明,IL-6诱导的LAP对于巨噬细胞介导的铜绿假单胞菌杀伤至关重要。许多细菌病原体编码了破坏LAP的机制,这凸显了此通路在抗菌防御中的重要性。
代谢重编程和抗菌代谢物
流行病学研究显示,生物体的新陈代谢与感染性疾病易感性有关。一项对超过35000名健康志愿者进行的研究表明,肥胖与感染风险增加有关。事实上,有证据表明,巨噬细胞的新陈代谢信号与感染性疾病的结果有关。研究表明,巨噬细胞对革兰氏阴性细菌的反应是上调食欲控制激素瘦素的受体表达,而瘦素会削弱巨噬细胞的抗菌防御能力。作者还发现,阻断瘦素对巨噬细胞的信号传导可增强吞噬溶酶体的活性,提高对Stm的抗菌防御能力。然而,这一途径在巨噬细胞抗菌防御中的作用似乎取决于具体情况,因为瘦素信号传导在小鼠肺部感染模型中可促进抗菌防御。更广泛地说,免疫代谢学领域(关注免疫系统和细胞代谢之间的联系)的研究表明,巨噬细胞代谢途径可控制抗菌防御(图2)。
受调控的细胞代谢会产生调节巨噬细胞炎症反应的代谢产物(图框1),也可用于抗菌防御(图1b)。例如,TLR信号可重新编程巨噬细胞中的线粒体功能,增加线粒体ROS(mROS)的产生,并招募线粒体进入吞噬体,以对抗Stm。从机制上讲,TLR信号分子TRAF6和ECSIT对于这种反应非常重要。线粒体融合蛋白MFN2也是TLR诱导的mROS产生和抗菌防御所必需的,但该机制目前尚不清楚。一项研究进一步揭示了TLR-mROS轴,该研究表明,河马激酶MST1(也称为STK4)和MST2(也称为STK3)是TLR诱导的mROS产生和线粒体招募到吞噬体所必需的。髓样细胞特异性Mst1和Mst2双基因敲除证实了这一途径对巨噬细胞杀灭细菌的作用,以及在脓毒症模型中的抗菌防御作用。有趣的是,同一研究小组还揭示了机械感应在这一反应中的作用。研究表明,机械激活离子通道PIEZO1对于诱导性mROS的产生、线粒体向吞噬体的迁移以及巨噬细胞的细菌杀伤至关重要,尽管PIEZO1引发的炎症也可能有助于宿主体内防御。不同组织之间的细胞外基质的硬度各不相同,因此巨噬细胞对机械应激的抗菌反应可能会受到不同组织微环境的影响。
尽管上述研究阐明了TLR信号将线粒体定位在吞噬体附近的机制,但mROS如何传递到吞噬体尚不清楚。一项研究表明,在巨噬细胞对金黄色葡萄球菌作出反应时,线粒体衍生的囊泡将超氧化物歧化酶2传递到吞噬体,以过氧化氢介导的细菌杀伤。结合上述关于LAP的文献,TLR信号似乎可以放大两种经典的与吞噬作用相关的抗菌反应:通过LAP的溶酶体介导的细菌降解,以及通过线粒体重编程的ROS介导的攻击。在某些情况下,诱导性mROS也可能对宿主有害。在斑马鱼模型中,过量的TNF诱导mROS的产生,从而引发信号级联反应,导致分枝杆菌感染的巨噬细胞坏死,使分枝杆菌在细胞外空间生长。因此,巨噬细胞中诱导的mROS的产生似乎在氧化应激介导的细菌杀灭和促进细菌致病性的细胞坏死之间取得了平衡。
除了mROS,调节的巨噬细胞代谢还会产生多种抗菌代谢产物。微生物吞噬作用会通过戊糖磷酸途径产生NADPH,而吞噬细胞NADPH氧化酶复合物需要NADPH来在吞噬小体中产生抗菌ROS42(图2a)。吞噬体中的其他因素可能也会影响这种反应的有效性。在吞噬大肠杆菌的巨噬细胞中,核糖-5-磷酸(RL5P)的水平(核糖-5-磷酸是戊糖磷酸途径酶6-磷酸葡萄糖脱氢酶的产物)有所增加,RL5P会直接抑制暴露于氧化应激的大肠杆菌的生长。因此,这种代谢物可能与吞噬体ROS一起发挥抗菌作用,尽管这还有待直接证明。在线粒体代谢方面,三羧酸(TCA)循环中间产物富马酸在巨噬细胞活化的早期阶段产生,并可直接抑制细菌生长(图2b),尽管这种代谢物是否在活化的巨噬细胞中积累到足以发挥抗菌作用的浓度仍有待确定。TCA循环代谢产物衣康酸在抑制炎症反应(图框1)和抑制细菌生长方面的作用也引起了广泛关注。2011年,研究人员发现活化巨噬细胞会产生这种代谢产物,从而揭示了衣康酸与免疫相关的功能。随后,研究人员发现,IFNγ诱导基因和LPS诱导基因Irg1(也称为Acod1)编码一种脱羧酶,可将TCA循环中间产物顺式-衣康酸脱羧生成衣康酸。这项研究还表明,衣康酸可抑制结核分枝杆菌(Mtb)和Stm的生长,而IRG1对于巨噬细胞对抗Stm的抗菌防御至关重要。从机理上讲,衣康酸可抑制异柠檬酸裂解酶,这是一种在乙醛酸分流中的一种代谢酶,可使这些细菌病原体在葡萄糖限制条件下利用脂肪酸作为碳源。因此,在慢性感染小鼠期间,Mtb和Stm的持续存在都需要异柠檬酸裂解酶。此外,衣康酸还针对甲基柠檬酸循环。这一点与Mtb尤其相关,因为Mtb将胆固醇用作碳源,而甲基柠檬酸循环会吸收胆固醇代谢产生的丙酰辅酶A(CoA),否则这些物质会对细菌产生毒性。衣康酸衍生物衣康酰辅酶A(itaconyl-CoA)抑制维生素B12依赖性甲基丙二酰辅酶A(methylmalonyl-CoA)突变酶,对于丙酸介导的结核分枝杆菌生长抑制也至关重要。因此,衣康酸可通过破坏多种代谢途径抑制细菌生长。
对衣康酸如何产生并传递给巨噬细胞内细胞内细菌的机制研究显示: (1)TFEB是诱导Irg1表达和衣康酸产生的必要条件;(2)GTP酶RAB32与IRG1相互作用,并协调将衣康酸运送到含沙门氏菌的液泡中;(3)IRG1和RAB32之间的这种相互作用由激酶LRRK2提供支架。除了直接的抗菌作用外,衣康酸还可以诱导TFEB介导的溶酶体生物发生,这是该代谢产物通过巨噬细胞靶向细菌的间接机制。ABCG2被鉴定为衣康酸的出口蛋白,ABCG2缺乏会导致溶酶体生物发生增加和巨噬细胞的抗菌防御增强,这为上述观点提供了支持。多项研究表明,IRG1和衣康酸还可以通过免疫调节来增强宿主的体内防御能力,结核分枝杆菌、金黄色葡萄球菌的研究以及衣康酸类似物二甲基衣康酸的抗感染特性就是很好的例证。衣康酸(方框1)的免疫调节作用可能对它在许多传染病环境中的有益效果至关重要。衣康酸细菌报告基因和直接衣康酸生物传感器的最新发展应有助于阐明衣康酸的直接抗菌活性与它在宿主体内防御中的免疫调节活性之间的贡献。
正如人们所预料的那样,一些细菌病原体会劫持巨噬细胞的代谢反应。例如,Stm能够感知由于TCA循环中断和线粒体重组而导致活性巨噬细胞中琥珀酸积累,从而促使致病基因表达,以支持巨噬细胞内的生存。另一项研究表明,Stm能够促进糖酵解并抑制丝氨酸合成,使其能够利用巨噬细胞内的糖酵解中间产物作为碳源。HDTs(表1)可以靶向巨噬细胞的代谢途径,正如谷氨酰胺代谢拮抗剂所显示的那样,它可以增强巨噬细胞中的NO产生,减少结核分枝杆菌感染小鼠的细菌负荷和肺部病变。鉴于迄今为止仅发现少数代谢物具有多种免疫调节作用,免疫代谢研究在巨噬细胞抗菌防御方面可能会有许多新发现。
脂滴
许多细胞器在先天免疫中发挥着重要作用,脂滴最近成为直接抗菌防御的媒介(图1c)。脂滴由一层磷脂单层和一层疏水性中性脂质核心组成,前者由驻留蛋白构成,后者包含甘油三酯和/或固醇酯。细胞摄取或从头合成脂肪酸后,脂滴就会从内质网中萌生(图2c)。这使得中性脂类可以作为能量储备,通过β-氧化为线粒体提供能量。然而,脂滴作为燃料储备的使用并不局限于宿主细胞。许多传染性病原体都会诱导脂滴的形成,许多病原体,例如结核分枝杆菌,都可以将其作为细胞内营养来源。这也可以被视为病原体的免疫颠覆策略,因为脂滴本身在先天免疫中具有重要作用。TLR配体促进脂滴在巨噬细胞中的积累,其中二酰基甘油酰基转移酶1介导的三酰甘油合成73和抑制脂肪分解均有助于脂滴的积累。TLR诱导的脂滴用于在巨噬细胞中产生前列腺素E2和前列腺素E2依赖性炎症介质,还具有更直接的抗菌功能。
脂滴可以直接杀死细菌的早期证据来自对果蝇的研究,其中显示脂滴上组蛋白的存在赋予了抗菌活性。在小鼠身上也发现了类似的现象;例如,从小鼠肝脏中纯化的脂滴具有蛋白质介导的抗菌活性,脂滴纯化前给予LPS被证明可以改变脂滴蛋白质组并增强脂滴的抗菌功能。这项研究还表明,巨噬细胞利用脂滴杀死细菌。脂滴上抗菌肽(AMP)的分子量较高(随后描述),LPS处理会导致其积聚,从而促进巨噬细胞内细菌的死亡。其他脂滴中的抗菌蛋白,包括组蛋白,也被发现,支持了果蝇早期的工作。值得注意的是,透射电子显微镜显示,在感染人类巨噬细胞中,脂滴通常靠近大肠杆菌,偶尔似乎会破坏液泡膜,直接接触细菌。因此,脂滴似乎不仅将潜在有毒的脂肪酸与细胞的其他部分隔离开来,而且还浓缩了可用于直接杀死细菌的各种抗菌蛋白。脂滴如何被招募到膜包裹的巨噬细胞内细菌中尚不清楚,但研究表明,小GTP酶ARL8B介导脂滴与巨噬细胞溶酶体之间的接触,这也许可以提供一些线索。 毫不奇怪,这种由脂滴介导的可诱导抗菌防御系统被一些细菌病原体所破坏。 例如,Stm逃避巨噬细胞内的脂滴。脂滴在细菌杀伤中的作用进一步强调了巨噬细胞代谢在抗菌防御中的作用。
鸟苷酸结合蛋白
巨噬细胞还使用大多数细胞类型共有的细胞自主防御机制,通过诱导基因表达由干扰素激活。四种IFN诱导的GTP酶家族——粘病毒抗性蛋白、免疫相关GTP酶、GBPs和IFN诱导的超大GTP酶——可针对多种病原体启动细胞防御机制。在此,我们概述了GBPs的功能(图1d),它们是过去十年先天免疫研究的重点。GBPs(人类有7个,小鼠有11个)的特征是具有保守的N端GTP酶结构域和C端螺旋结构域。GBPs在巨噬细胞中由IFNγ和LPS诱导,并通过多种机制促进抗菌防御,包括促进自噬体功能。通过募集到含细菌的液泡中,GBPs将细菌释放到细胞质中,从而激活炎症性半胱天冬酶和非典型炎症体。人类GBP1的研究表明,GBP1能够以GTP依赖的方式与志贺氏菌结合。最近,研究表明,GBP1在细胞内Stm上形成含有多聚体GBP的复合物中起着核心作用。有趣的是,从小鼠GBP1的N端区域衍生出的11个氨基酸的短肽直接杀死了弗朗西斯菌和脑膜炎奈瑟菌。未来,确定该基序是否有助于巨噬细胞内GBP1的抗菌活性将很有意义。巨噬细胞本身需要抵御GBP,因为GBP可能会造成自我伤害。例如,GBP1的过度表达会杀死巨噬细胞,但IFNγ信号会减弱这种反应。有趣的是,有证据表明,一些GBP在炎症性脂滴中富集,因此这可能会提供一种限制GBP细胞毒性效应并促进其传递给巨噬细胞内细菌的方法。
抗菌肽
除了GBPs,活化的巨噬细胞诱导表达编码AMPs的基因(图1e)。这个庞大的肽家族具有广谱抗菌活性,通过破坏细胞膜杀死微生物。AMPs可以分泌到细胞外介质中,进入含细菌的吞噬溶酶体,或装载到脂滴上,以靶向细胞内细菌。许多研究已经证实了AMPs在体外中的有效性。然而,由于AMPs之间的冗余性和协同作用,体内研究非常复杂,这可能会掩盖任何单一AMP的重要性。为此,从果蝇中删除所有已知的AMP,以显示AMP在这种模式生物体内的功能和特异性。值得注意的是,AMP还可以通过一系列免疫调节作用,包括作为趋化剂的功能,促进宿主的体内防御。
研究最多的AMPs是防御素和溶菌酶。防御素由多种细胞产生,是一大类肽,可分为α防御素、β防御素和θ防御素三个亚类,其中只有α防御素和β防御素存在于人类和小鼠体内。相比之下,非人灵长类动物、人类和小鼠体内存在单个基因形式的溶菌酶,这种AMP尤其与巨噬细胞的抗菌防御有关。C-末端域具有抗菌活性,在N-末端域裂解后释放。在小鼠中,这种AMP被称为“类抗菌肽”(cathelicidin-related antimicrobial peptide,CRAMP),而在人类中,活性形式被称为CAMP(或LL-37)。在小鼠模型中,CRAMP可保护粘膜表面免受细菌病原体的侵袭。在人类巨噬细胞中,TLR-维生素D轴上调CAMP的表达,如前所述,CAMP有助于这些细胞中的脂滴直接杀死细菌(图1c)。Kinocidins是另一类阳离子杀菌小细胞因子-趋化因子。IL-26是这一类别的代表,它能够直接抑制多种细菌在体外生长,并降低脓毒症小鼠模型中的细菌负荷。IL-26能够直接作用于感染巨噬细胞内的麻风分枝杆菌。人类IFNβ的直接抗菌活性也有相关报道。
除了在染色质调节中的作用外,组蛋白还可以直接杀死细菌。多项证据表明,巨噬细胞利用这种效应来抵御细菌。首先,小鼠巨噬细胞对他汀类药物的反应是产生含有组蛋白的胞外陷阱,以靶向S. aureus。第二,组蛋白有助于脂滴发挥抗菌作用,而脂滴本身有助于巨噬细胞进行自主抗菌防御。最后,组蛋白H2A与巨噬细胞产生的CAMP协同作用,通过CAMP产生的孔进入细菌,从而杀死大肠杆菌和金黄色葡萄球菌。脂滴上同时存在组蛋白和类脂素,这为协同抗菌提供了可能。
金属离子毒性
细菌生长需要铜和锌等生物金属,先天免疫系统可以通过剥夺细菌病原体所需的微量元素来满足这一需求。然而,铜和锌也会直接对细菌产生毒性,巨噬细胞利用这一现象来毒杀细胞内的细菌(图1f)。一些初步证据来自对巨噬细胞吞噬体在感染不同分枝杆菌和/或响应IFNγ和TNF时进行的X射线荧光分析。这项研究报告了锌和铜等几种元素在各种条件下的吞噬体浓度变化。随后,对E. coli铜利用的小鼠巨噬细胞以及Mtb锌动员的人类巨噬细胞的研究为细菌被巨噬细胞金属离子中毒提供了证据。对于铜,研究表明,LPS和IFNγ上调了小鼠巨噬细胞中铜转运蛋白CTR1和ATP7A的表达,ATP7A表达的沉默削弱了巨噬细胞对E. coli的杀伤力,铜敏感E. coli突变体的细胞内存活率降低。有人推测铜可能催化吞噬体中的羟基自由基的产生,但考虑到酸应力使E. coli对铜应力敏感,铜在酸性吞噬体中的直接毒性也是可能的。无论铜毒性的机制是什么,一些细菌病原体都使用铜防御策略在巨噬细胞中存活和/或定植宿主(在其他地方进行了回顾)。
自开创性论文表明人类巨噬细胞使用锌毒杀结核分枝杆菌以来,大量文献记录了这种金属作为先天免疫系统抗菌因子的情况。其中一些报告表明,对于多种细菌病原体,感染会促使巨噬细胞或中性粒细胞中的细菌释放锌,导致细胞内细菌锌胁迫。因此,在许多研究中,锌敏感的特定细菌病原体突变体被证明会降低巨噬细胞内的存活率和/或宿主定植率。一些细菌病原体逃避巨噬细胞锌毒性反应的现象也有文献记载,例如使用锌胁迫报告菌株的尿路致病E. coli的研究。巨噬细胞介导的锌毒性所涉及的分子过程细节开始显现。细菌感染会引发锌动员,与此相对应,TLR激动剂也会在人体巨噬细胞内诱导含锌囊泡的形成。此外,锌出口蛋白SLC30A1(也称为ZNT1)在原代人巨噬细胞中可被TLR诱导,其过表达足以在单核细胞系(THP-1)中诱导含锌囊泡的形成。在THP-1细胞异位表达研究中,以及在沙门氏菌感染小鼠模型中Slc30a1的髓样特异性缺失,证实了SLC30A1在巨噬细胞中的抗菌作用。
当SLC30A1在巨噬细胞中异位表达时,它存在于血浆膜和含有锌胁迫E. coli的囊泡上。这很有意思,因为SLC30A1是公认的细胞表面锌出口蛋白,可将锌运出细胞。因此,当细菌被吞噬时,SLC30A1可能从血浆膜转运到吞噬体。如果情况属实,那么现有的细胞表面SLC30A1可能有助于巨噬细胞介导的锌毒性,而TLR诱导的SLC30A1则可能通过将锌输出细胞外来恢复锌的稳态。SLC30A锌输出器被认为通过H+/Zn2+交换发挥作用。这可以使吞噬溶酶体随着时间的推移从酸性环境过渡到富含锌的环境,从而引发锌毒性反应。根据这一模型,囊性纤维化患者的巨噬细胞在吞噬作用和吞噬溶酶体酸化方面存在缺陷,锌毒性反应也存在缺陷。对SLC30A1和该通路其他成分的进一步研究可能会为开发抗菌HDT提供机会。
营养耗竭
病原体需要微量元素和其他营养物质才能生长,因此巨噬细胞可以通过限制金属离子和其他微量营养素的可用性来利用这一弱点(图1g)。这个过程通常被称为营养免疫。其中一种机制涉及天然抗性相关巨噬细胞蛋白1(NRAMP1;也称为SLC11A1),这种蛋白最初被描述为一种促进吞噬体酸化和运输锰和铁的吞噬体蛋白,最近发现它还可以从含细菌的吞噬体中去除镁。巨噬细胞还调节铁的可用性,有助于降低血红蛋白水平,这是全身细菌感染期间细胞外间隙的特征。例如,在Stm的作用下,巨噬细胞释放出包覆着转铁蛋白受体的胞外囊泡,将细菌从细胞外空间中隔离,从而抑制细菌生长。因此,在细菌诱导的肺部损伤模型中,靶向降解巨噬细胞铁转运蛋白(FPN;也称为SLC40A1)可减少细胞外细菌的生长,增强屏障完整性。巨噬细胞内的铁供应也可以通过调节来对抗细胞内病原体。FPN会迅速从早期吞噬体中移除,这有助于限制巨噬细胞内吞噬细菌的铁供应。然而,沙门氏菌空泡中FPN的存在为有效的杀菌性ROS反应提供了铁源。这些看似矛盾的研究结果凸显出,腔室内的铁水平控制可能需要在限制细菌生长和促进抗菌防御之间取得微妙的平衡。就结核分枝杆菌而言,限制铁的摄入似乎至关重要,一项比较肺泡巨噬细胞和间质巨噬细胞的双RNA测序研究证明了这一点,这两种巨噬细胞分别支持或限制结核分枝杆菌的生长。锌的隔离也被先天免疫系统用作营养饥饿策略。虽然尚未对巨噬细胞对细菌的反应进行广泛研究,但粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子衍生的巨噬细胞会限制真菌病原体组织胞浆菌对锌的利用。为了抵御巨噬细胞介导的金属离子剥夺,许多细菌病原体具有复杂的生物金属获取系统。
巨噬细胞还限制细菌获取其他营养物质,例如通过耗尽精氨酸和色氨酸等氨基酸。精氨酸酶1可将精氨酸转化为鸟氨酸,在缺氧环境下,巨噬细胞需要这种酶来控制结核分枝杆菌的生长。在诱导型一氧化氮合成酶(iNOS;也称为NOS2)激活时,也会发生精氨酸耗竭,该酶会消耗精氨酸来促进抗微生物NO的产生(下文将讨论)(图2d)。l-色氨酸的耗竭在宿主防御中也起着一定的作用。人体成纤维细胞对IFNγ的反应表明,色氨酸的降解会限制细胞内原虫寄生虫弓形虫的生长。同样,色氨酸的耗竭也会促进巨噬细胞的抗菌防御,伯纳特氏立克次体的色氨酸自养性研究也证明了这一点。这是通过IFNγ诱导的吲哚胺2,3-双加氧酶1(IDO1)的表达来调节的,该酶可将l-色氨酸转化为N-甲酰基喹啉。然而,在李斯特菌的情况下,IDO1通过产生下游喹啉代谢物来促进骨髓细胞的抗菌防御,这些代谢物可作为直接抗菌剂。有趣的是,当宿主来源的色氨酸有限时,结核分枝杆菌会通过合成自身的色氨酸来对抗CD4+ T细胞介导的色氨酸耗竭和IFNγ。谷氨酰胺的可用性在宿主与病原体的相互作用中也很重要(图2e)。结核分枝杆菌在人类巨噬细胞内同化氮的代谢分析表明,这种病原体从宿主那里获取多种氨基酸,特别是谷氨酰胺。谷氨酰胺代谢拮抗剂(JHU083)在小鼠模型中减少了肺部结核分枝杆菌的数量和病理,同时增加了抗菌性NO的产生,这支持了谷氨酰胺耗竭可能是HDT对抗结核分枝杆菌的可行策略这一观点。此类研究得出的一个共同结论是,巨噬细胞耗竭氨基酸会限制病原体生长所需的营养,同时促进抗菌分子的产生。
自噬
自噬介导细胞成分的降解和回收,从而控制能量供应与需求。巨噬细胞还利用自噬来靶向细胞内病原体,这一过程被称为异噬(图1h),结核分枝杆菌研究首次证明了这一点。从机制上讲,异噬的初始阶段包括E3泛素连接酶对细胞内细菌的泛素化,然后与自噬载体的蛋白质结合。一旦泛素化,病原体就会被运送到由自噬相关蛋白组装而成的吞噬体,这些蛋白包括ATG14、ATG5至ATG12、beclin 1和ULK1。ATG7和ATG14在抗菌防御中起着重要作用,最近有研究表明,它们可以抑制结核分枝杆菌在人类巨噬细胞中的复制,ATG5、ATG7和ATG16L1在小鼠急性感染模型中也有类似作用。自噬的最后阶段包括自噬体与溶酶体的融合,这需要包括RAB7、VAMP8和LAMP2在内的多种蛋白质。
早期检测入侵的病原体对于有效进行异噬至关重要。对于结核分枝杆菌,这一早期步骤由E3泛素连接酶TRIM32和SMURF1驱动。SMURF1缺陷的巨噬细胞无法募集功能性自噬泡,Smurf1–/–小鼠无法控制结核分枝杆菌感染。目前,我们正在研究自噬中的泛素化靶标,但Stm的研究表明,E3泛素连接酶RNF213将胞浆Stm表面的LPS作为靶标。有趣的是,RNF213对于对抗革兰氏阳性李斯特菌的抗菌反应也至关重要。在这种情况下,RNF213与ISG15结合,后者是一种由干扰素(IFN)刺激产生的泛素样蛋白。在这两种情况下,RNF213都定位在含有李斯特菌和Stm的液泡中,这支持了RNF213在异养作用中的作用。然而,也有证据表明RNF213在抗菌防御中具有独立于异养作用的独立功能。在Stm感染期间启动异噬作用的另一个信号涉及对含细菌液泡的破坏。这是由液泡ATP酶(V-ATPase)检测到的,该酶招募ATG16L1启动异噬作用,并由Stm效应子SopF139对抗。另一个Stm效应子(SteA)阻止溶酶体与自噬体的融合,这进一步证明了异噬作用在抵御Stm中的重要性。巨噬细胞的自身吞噬能力可用于抵御多种细菌病原体,因此为使用HDT调节这一途径提供了机会(表1)。
一氧化氮
除了ROS,iNOS产生的NO为巨噬细胞提供了另一种自由基攻击机制(图1i)。早期研究表明,促炎性刺激可上调小鼠巨噬细胞中的iNOS表达,从而从底物l-精氨酸中产生NO和l-瓜氨酸(图2d)。使用Nos2缺陷小鼠和/或药物方法证明了体内iNOS对抗结核分枝杆菌、Stm和肺炎克雷伯菌的抗菌防御作用。尽管大量文献记载了iNOS在啮齿动物对抗细菌病原体中的重要性,但人类单核细胞和巨噬细胞的比较研究表明,它们的iNOS表达和NO产生大大降低。尽管如此,在某些条件下,人类巨噬细胞仍可表达低水平的iNOS并产生NO,特别是炎症或感染患者的巨噬细胞。框2讨论了iNOS和其他抗菌效应物表达的物种特异性差异。
NO可与ROS相互作用,生成活性氮(RNS),如强效氧化剂过氧化亚硝酸盐,后者具有强大的抗菌活性。RNS可能通过作用于一系列大分子来发挥其抗菌作用,但DNA复制和呼吸作用所需的金属蛋白失活被认为尤为重要。与iNOS和NO在巨噬细胞抗菌反应中的核心作用一致,包括Mtb、Stm和S. aureus在内的几种细菌病原体具有解毒RNS和/或破坏iNOS运输的机制。关于iNOS和NO介导的抗菌反应的新见解不断涌现。例如,最近一项关于锌转运蛋白SLC30A1的预印本研究表明,活化巨噬细胞产生NO需要调控锌的转运,这凸显了NO和锌毒性反应之间的潜在相互作用。此外,由于代谢途径深刻地影响着巨噬细胞的抗菌反应(图2),且NO会破坏活化巨噬细胞中的TCA循环(方框1),因此NO也可能通过代谢控制间接影响巨噬细胞的抗菌防御。
Box1 巨噬细胞代谢和炎症反应
过去十年中,有关受调控巨噬细胞代谢的文献大多关注炎症控制,而非直接的抗菌反应。活化巨噬细胞中糖酵解和通过三羧酸(TCA)循环的通量的快速增加,使得ATP柠檬酸合成酶依赖性乙酰辅酶A的产生成为可能,从而介导组蛋白乙酰化和炎症基因的可诱导表达。随后,一氧化氮通过抑制TCA循环酶(如乙酰辅酶A合酶2)来破坏线粒体代谢,导致琥珀酸和富马酸等中间产物堆积,从而维持或加剧炎症反应。相比之下,在炎症性巨噬细胞活化过程中,通过将丙酮酸从TCA循环中转移而生成的衣康酸,对巨噬细胞和体内具有明确的抗炎和免疫调节作用。活化巨噬细胞产生的代谢物在促进或抑制炎症方面具有不同的作用机制。例如,衣康酸可能通过抑制琥珀酸脱氢酶以及通过亲电应激反应诱导抗炎转录因子ATF3和NRF2来发挥抗炎作用。据报道,衣康酸衍生物4-辛基衣康酸还可以通过半胱氨酸烷基化KEAP1来激活NRF2。然而,值得注意的是,衣康酸和衣康酸衍生物对巨噬细胞炎症反应的影响是不同的,衣康酸调节巨噬细胞功能的精确机制尚不清楚。尽管如此,代谢产物可以促进蛋白质的非常规翻译后修饰是显而易见的。例如,乳酸是糖酵解的最终产物,被细胞用于组蛋白的乳酸化,这被认为可以恢复活化巨噬细胞中的稳态。也有证据表明,现有的抗炎药物通过改变代谢酶发挥部分作用。例如,富马酸二甲酯是一种用于治疗多发性硬化症和牛皮癣的药物,它能够使糖酵解酶GAPDH琥珀化并失去活性,而GAPDH具有促炎作用。
Box2 不同物种在抗菌防御方面的差异
病原体的进化选择压力通过基因库和/或基因调控的变化来塑造各个物种的免疫反应。例如,在灵长类动物中,多达40%的白血细胞脂多糖(LPS)调节基因受到差异调节,其中差异最大的通路与干扰素α(IFNα)和IFNγ反应有关。 毫不奇怪,啮齿动物和大型哺乳动物之间的先天免疫反应也存在一些差异。 小鼠通常被用来模拟人类免疫反应,但与所有模型一样,它们也存在一些局限性。例如,人类和老鼠巨噬细胞中LPS调节的基因表达具有广泛的一致性,但LPS调节的基因子集存在差异,这些基因具有特定的启动子特征。编码诱导型一氧化氮合成酶(iNOS;也称为NOS2)的基因体现了老鼠和人类之间先天免疫反应的物种特异性差异。LPS和IFNγ在小鼠巨噬细胞中诱导iNOS的强烈表达和一氧化氮(NO)的产生,而在人类巨噬细胞中,这些反应大大减弱。补充四氢生物蝶呤(iNOS酶活性所需的辅助因子)并不能恢复人类巨噬细胞中NO的强烈产生,这种表型反映了人类和老鼠Nos2基因调控元件的差异。人类NOS2确实编码一种功能性酶,因此它仍有可能参与宿主防御,可能是响应不同的信号和/或不同的细胞类型,如肝细胞。相反,具有关键抗菌功能的吲哚胺2,3-双加氧酶1在人类骨髓细胞中由病原体相关分子模式和细菌感染诱导,但在小鼠骨髓细胞中则不会。巨噬细胞抗菌反应的物种特异性差异提醒我们,有必要将小鼠的重要发现验证在人类巨噬细胞中,但也可以让我们了解不同物种之间抗菌反应的调节控制机制,这些机制可能被用于设计宿主定向疗法。
抗菌防御信号
巨噬细胞的危险感应与复杂的信号网络相结合,从而引发一系列抗菌反应(图3)。例如,TLR通过MYD88和TRIF等适配蛋白发出信号,这些适配蛋白与IRAK一起形成大型大分子信号复合物。这些复合物协调信号模块的激活,如促分裂原活化蛋白激酶(ERK、JNK和p38)和转录因子(核因子-κB和IRFs),它们与表观遗传调节因子和非编码RNA共同诱导抗菌效应基因的表达。多个信号传导模块在巨噬细胞的抗菌反应中发挥着核心作用。例如,STAT1介导IFNγ依赖性抗菌效应基因的表达,如编码iNOS和GBPs的基因,小鼠中Stat1靶向会削弱抗菌防御。在受体近端信号级联的下游,多个转录因子在巨噬细胞中形成特定的抗菌转录程序。例如,氧化应激反应转录因子NRF2(也称为NFE2L2)是巨噬细胞和体内有效抗菌防御所必需的,而TFEB控制巨噬细胞中的溶酶体生物发生、自噬和抗菌防御。根据染色质修饰,TLR诱导基因可分为两大类,分别广泛编码炎症介质或抗菌效应基因。这表明,对诱导抗菌反应的转录网络有更全面的了解,可以为HDT的设计提供机会,例如针对NRF2激活的抗菌和抗炎作用的方法(表1)。
抗菌反应中的可塑性
转录和表观遗传研究揭示了巨噬细胞的异质性和可塑性,肺泡巨噬细胞的研究就是很好的例证。异质性由巨噬细胞个体发育和巨噬细胞所处的组织微环境共同决定,而巨噬细胞功能的可塑性则由信号诱导的变化决定。例如,外源性信号可影响肺部的细胞微环境,在小鼠体内,肺部的细胞微环境在稳态下至少包含三种巨噬细胞——肺泡巨噬细胞(SIGLECF hi LYVE1– CD11c+ MHCII lo)和两种间质巨噬细胞 (SIGLECF–LYVE1 hi MHCII lo和SIGLECF–LYVE1lo MHCII hi)——每个都有独特的转录、表观遗传和解剖学标识。肺泡巨噬细胞是肺部的“守门员”,负责协调肺部抗菌防御,与间质巨噬细胞相比,肺泡巨噬细胞具有更强的吞噬和抗菌能力。因此,小鼠肺泡巨噬细胞减少会增加对呼吸道病原体(如肺炎链球菌)的易感性。然而,在结核分枝杆菌呼吸道感染期间,肺泡巨噬细胞对病原体呈宽容性,而间质巨噬细胞则对病原体呈限制性。这可能与该研究中观察到的肺泡巨噬细胞与间质巨噬细胞不同的代谢特征有关,也可能与结核分枝杆菌独特的代谢特征有关。与肺泡巨噬细胞类似,肝脏的库普弗细胞可抵御从肠道逃逸的细菌,防止其全身扩散。库普弗细胞表达吞噬受体CRIg,可识别革兰氏阳性细菌细胞壁中的脂多糖。这种抗菌防御机制为抵御危险的血液传播感染提供了额外的安全保障。在肠道中,微生物代谢产物丁酸通过抑制赖氨酸脱乙酰酶HDAC3,使巨噬细胞偏向于抗菌表型,从而增强宿主的防御反应。这些例子强调了组织特异性微环境如何促进组织特异性巨噬细胞的有效抗菌反应。组织巨噬细胞的发展和功能还受到它们与基质细胞和其他免疫细胞相互作用的影响(方框3)。
方框3 巨噬细胞与其他细胞类型之间的相互作用
组织驻留巨噬细胞的多样性、异质性和功能性受其与特定微环境中的其他免疫和非免疫(基质)细胞相互作用的影响。例如,新生儿肺泡巨噬细胞的发展取决于肺泡微环境中的II型肺泡上皮细胞产生的粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子。这种相互作用的重要性在粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子信号缺陷的个体中显而易见,这些个体肺泡巨噬细胞缺失,并患有肺泡蛋白沉着症综合征。此外,肺泡巨噬细胞的自我更新能力在新生儿阶段就由中性粒细胞衍生的12-羟基二十碳四烯酸所决定。这种印记对于保护肺免受脂多糖引起的肺损伤以及流感病毒或SARS-CoV-2感染至关重要。在博来霉素诱导的肺损伤模型中,使用单细胞RNA测序技术鉴定出肺部存在一种SIGLECF+CD11c+MHCIIhiCX3CR1+过渡性巨噬细胞群,可分泌血小板衍生生长因子AA(PDGFAA)。该因子可促进纤维化微环境中的PDGFRA+成纤维细胞的迁移和增殖。作者通过特发性肺纤维化患者样本中CX3CR1+过渡性巨噬细胞标志基因的表达增加,证明了其研究结果在转化医学中的相关性。在中枢神经系统和皮肤中,IL-34分别由神经元和角质形成细胞局部释放,支持中枢神经系统中驻留的巨噬细胞(称为小胶质细胞)和皮肤中驻留的朗格汉斯细胞的维持。在肝脏中,组织中的库普弗细胞排列在肝窦中,清除碎片,促进免疫耐受,并调节抗菌防御。为此,它们与星状细胞、肝细胞和内皮细胞相互作用,从而确定其身份。因此,组织特异性细胞和分子线索可能对每个组织中的巨噬细胞群进行编程,使其能够执行特定环境的功能。
增强抗菌防御
现已明确,氧化磷酸化、糖酵解和谷氨酰胺分解等代谢途径决定了巨噬细胞的命运和功能反应(图2)。使用HDTs调节巨噬细胞的代谢重编程和诱导性抗菌系统,可以增强宿主对细菌病原体的保护性免疫反应。HDTs可能具有多种潜在用途: (1)增强常规抗菌功效;(2)缩短对药物敏感和/或耐药感染的治疗方案;(3)减少与慢性感染相关的免疫病理学;(4)促进训练免疫和/或免疫记忆,以防止复发和再感染。表1提供了HDT的例子,这些HDT对多个细菌属具有已证实的疗效,包括针对代谢途径或下游转录因子的HDT。我们建议,促进宿主防御和抑制病理炎症的转录因子(如NRF2)可能适合通过HDT进行巨噬细胞重编程。基于mRNA的治疗手段的出现应该为这类靶标提供了新的可能性。所列出的HDT中,有些是临床使用的药物,有些正在细菌感染的临床试验中接受评估。然而,很难将这些试验的积极结果与对巨噬细胞的影响明确联系起来。因此,需要在相关动物模型中进行耗竭研究,以了解不同的巨噬细胞亚群如何促进HDT的抗菌作用。
总结
巨噬细胞针对细菌病原体进行一系列抗菌反应。这些反应通常分为两种:一种是使用自由基攻击(如ROS和NO),另一种是通过降解过程直接针对细菌(如溶酶体和AMP)。人们认识到,调节细胞代谢是巨噬细胞功能的核心,从而发现了新近描述的抗菌防御机制,例如脂滴、抗菌代谢产物和金属离子毒性。由此,巨噬细胞对细菌的代谢中毒作用的重要性日益凸显。激动人心的技术发展也被应用于抗菌防御系统的表征,例如细胞内抗菌复合物的高分辨率成像、使用细菌报告基因追踪和表征巨噬细胞的抗菌反应以及用于在单细胞水平上匹配巨噬细胞和细菌反应的双RNA测序方法。这些方法将继续为巨噬细胞抗菌防御机制提供令人着迷的见解,并在抗生素耐药性细菌感染时代为抗感染设计提供机会。