案例分析 | T细胞大颗粒淋巴细胞白血病的临床表现与实验室诊断

健康   2024-12-13 15:45   山东  


作者:陶敏[1]
指导:罗燕飞[2]
单位:[1]福建省人民医院检验科  [2]广东省人民医院检验科


T细胞大颗粒淋巴细胞白血病(T cell large granular lymphocyte leukemia, T-LGLL)是一种罕见的异质性的细胞毒淋巴细胞克隆性增殖性疾病[1]。T-LGLL的发病率低,临床表现不一,多数患者临床上呈惰性过程,诊断较困难。

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案例经过




患者女,60岁,气促1年,加重7月,2023年2月10日就诊。患者于1年前出现日常活动后气促,无咳嗽、咳痰。2022年7月,气促症状加重,静息时即可出现,就诊于当地医院,行呼吸系统及心血管疾病检查未明确病因,具体治疗不详,气促症状未缓解。2022年11月17日外院就诊,检查白细胞减少、血红蛋白减少,未明确诊断,建议上级医院进一步检查。


  • 体格检查


T 36.2℃、P 75次/分、R 20次/分、BP 108/69mmHg,神志清楚,发育正常,营养良好,面容与表情安静,体位自主,检查合作。



案例分析



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检验案例分析

  • 血常规

白细胞计数 3.37×109/L↓、中性粒细胞计数 1.04×109/L↓、红细胞计数 2.59×1012/L↓、血红蛋白量 90g/L↓。


  • 骨髓形态学检测

骨髓片中骨髓增生活跃,粒系增生为主,血小板易见,淋巴细胞占15.5%,不典型淋巴细胞占12.0%,部分淋巴细胞胞浆内可见嗜天青颗粒,为成熟细胞。

外周血片白细胞不少,分类淋巴及单核细胞比例增高,其中不典型淋巴细胞占35.0%,部分淋巴细胞胞浆内可见嗜天青颗粒。


  • 病理结果

骨髓增生大致正常,造血细胞约占骨髓腔面积的60%;粒红比例大致正常,均以中晚幼阶段细胞为主;巨核细胞数量和形态未见明显异常;少量淋巴细胞散在,但未见明显聚集灶。


  • 免疫组化结果


  • 淋巴细胞亚群绝对计数结果


  • 流式免疫分型结果

外周血标本中淋巴细胞比例增高,检测到约58.19%淋巴细胞。淋巴细胞中,T淋巴细胞比例增高,CD3细胞96.10%,NK细胞2.02%。标本中检测到36.20%CD7和CD5表达减弱的成熟的CD8+T淋巴细胞,此细胞群同时表达CD38、HLA-DR、CD4SRA、CD69(部分)、CD57(小部分)、CD56(少量),不表达CD45RO、CD28、CD25、CD71,请结合临床和其它相关检查排除T-LGLL。


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  • TCR基因重排结果


TCRB基因可见克隆性重排,TCRG基因可见克隆性重排。



  • 基因测序结果


STAT3一级变异(Tyr640Phe 1.16%);ABL2/ARID1B/RUNX2/TTN二级变异;RAD21/RARA变异。



临床案例分析 


患者因气促就诊,白细胞计数 3.37×109/L↓、中性粒细胞计数 1.04×109/L↓、红细胞计数 2.59×1012/L↓、血红蛋白量 90g/L↓。外周血片分类淋巴比例增高,其中不典型淋巴细胞占35.0%,部分淋巴细胞胞浆内可见嗜天青颗粒。骨髓片中淋巴细胞占15.5%,不典型淋巴细胞占12.0%,部分淋巴细胞胞浆内可见嗜天青颗粒,为成熟细胞。


免疫组化结果:CD2(+)、CD3(+)、CD5(+)、CD7(+)、CD4(少量+)、CD8(+)、GrB(少量+)、CD20(-)。流式免疫分型结果:在CD45/SSC散点图中发现淋巴细胞比例增高(58.19%),该细胞群位于成熟淋巴细胞的位置,淋巴细胞中有一群表达CD3+CD8+CD4-TCRαβ+的成熟T淋巴细胞,CD4/CD8比值为0.4,36.20%细胞CD7和CD5表达减弱,这群细胞同时表达CD57(小部分)、CD56(少量)、CD45RA+、CD45RO-、CD28-、活化指标CD69(部分)、CD25-、HLA-DR+、CD38+。


该患者无发热,病毒检测阴性(EBV、CMV),综合免疫表型流式结果,考虑T-LGLL。临床进一步检查后发现TCRB、TCRG基因克隆性重排,STAT3可见一级变异,最终诊断T细胞大颗粒淋巴细胞白血病T-LGLL。


该患者长期气促不缓解,贫血及中性粒细胞减少,临床给予甲氨喋呤治疗,经过治疗,患者血液学完全缓解(血常规中性粒细胞计数 3.72×109/L、淋巴细胞绝对计数 1.45×109/L、血红蛋白量 138g/L、血小板计数 323×109/L)。



知识拓展



大颗粒淋巴细胞(LGL)一般是胞体较大的细胞,直径15-18μm,具有丰富透亮的胞浆,因胞浆中含有多少不等的深蓝色嗜天青颗粒而得名。在健康个体中,LGL占外周血单个核细胞10%-15%。


LGL的功能是在循环血液中寻找感染细胞并诱导细胞凋亡,这些LGL在完成免疫过程后,会出现凋亡以维持机体稳态,但在疾病情况下,即大颗粒淋巴细胞白血病(Large Granular Lymphoid Leukemia, LGLL)情况下,这些大颗粒淋巴细胞会持续存活,从而致病。有研究倾向于淋巴细胞在免疫刺激和基因突变协同作用下,LGL失控地进行增殖,细胞凋亡动态平衡失调,导致LGL持续存活并发展为白血病。JAK-STAT通路的异常激活在T-LGLL的发生发展中起重要作用,STAT3基因的点突变是最常见的遗传学异常。


大颗粒淋巴细胞白血病的发病率约为0.2-0.72/百万[2-3],中位发病年龄66.5岁。2022年,WHO根据精确的细胞起源和临床特征将该病分为T细胞LGLL(T-LGLL)、NK细胞慢性淋巴增殖性疾病和侵袭性NK细胞白血病三种亚型[4]。T-LGLL是最常见的LGL白血病类型,约占病例数的85%[5]。T-LGLL根据TCR类型不同可分为αβT-LGLL和γδT-LGLL,临床上95%的为αβT-LGLL,γδT-LGLL非常少见。


T-LGLL中的克隆性T大颗粒淋巴细胞与普通的LGL细胞在形态学上是难以区别的。T-LGLL没有典型的LGL形态,但具有相对典型的免疫表型,常常表现为CD3+、CD8+、CD16+、TCRαβ+、CD45RA+、CD57+、CD122+、CD5dim、CD62Ldim、CD4-、CD27-、CD28-、CD45RO-[6-7]。因此,流式细胞术是诊断LGLL相对可靠且实用的检测方法。


由于T细胞系统的复杂性,临床上确定T细胞是否为恶性克隆往往比B细胞更加困难。T细胞克隆性分析是诊断T淋巴细胞增殖性疾病不可或缺的一部分,通常采用TCR基因重排来进行单克隆评估,包括PCR方法或未广泛开展的二代测序分析。


随着流式细胞技术的不断发展,利用流式细胞术检测TCR可变区亚家族,已被证明是一种分析TCL克隆性的可靠方法。目前普遍使用的TCRvβ受体库试剂盒共有24个亚基,覆盖了大概70%的T细胞克隆,TCRvβ总和>70%或<30%,提示单克隆表达。近年来,多种针对TCR链结构域的抗体研发使得不仅可以检测vβ,检测vγ、vδ恶性克隆也成为可能。


在检测TCL克隆性方面,流式细胞术检测TCR可变区亚家族与TCR基因扫描技术的敏感度和特异度差异无统计学意义,2种诊断方法一致度较高[8]。但是分子学方法无法区分T细胞谱系,绝大多数αβ型TCL会出现TCRγ基因克隆性重排,同样大部分γδ型TCL也会发生TCRβ链基因重排,检测TCRβ或TCRγ基因重排并不能区分肿瘤细胞是αβ型还是γδ型。流式细胞术检测TCR可变区亚家族能够准确区分T细胞谱系。


近几年,Natasha ND[9]等专家将TRBC1应用于单克隆T淋巴细胞的诊断及鉴别诊断中。TRBC1的加入使得流式细胞术在检测成熟T细胞肿瘤方面有了很大的进展。研究发现,非肿瘤性αβT细胞的β链恒定区同时表达TRBC1和TRBC2,而淋巴瘤T细胞只表达一个β链恒定区,即TRBC1或TRBC2中的一个。目前,TRBC2还在研发。TRBC1的阳性率>85%或者<15%提示克隆性。


有文献报道,TRBC1抗体对成熟T细胞肿瘤的敏感性和特异性分别为97%和91%;国内研究中,TRBC1检测克隆性αβTCR亚群的敏感性甚至达到100%。因此,运用流式细胞术检测TRBC1结合T细胞标记,是诊断T细胞克隆性疾病的一种准确、简便、快速、可靠且成本低廉的替代方法,对T细胞淋巴瘤的早期诊断、疗效评估、预后判断及靶向药物治疗均有重要的意义。



总结




随着医疗技术的提高,对于疑似T-LGLL患者,采用流式细胞术免疫表型分析及TRBC1检测、TCRvβ分析,结合临床症状、TCR基因重排及分子生物学的检测可以有效的帮助T-LGLL的诊断。

参考文献】

[1] 王兰兰,范文霞,秦玉婷,等.CD4-CD8-TCRγδ+T细胞大颗粒淋巴细胞白血病合并纯红细胞再生障碍性贫血1例报告[J].现代肿瘤医学,2024,32(08):1519-1522.

[2] SHAH M V, HOOK C C, CALL T G, et al. A population-based study of large granular lymphocyte leukemia[J]. Blood Cancer J, 2016, 6(8): e455.

[3] DINMOHAMED A G, BRINK M, VISSER O, et al. Population-based analyses among 184 patients diagnosed with large granular lymphocyte leukemia in the Netherlands between 2001 and 2013[J]. Leukemia, 2016, 30(6): 1449-1451.

[4] ALAGGIO R, AMADO C, ANAGNOSTOPOULOS I, et al. The 5th edition of the world health organization classification of haematolymphoid tumours: lymphoid neoplasms[J]. Leukemia, 2022, 36(7): 1720-1748.

[5] CHEON H, DZIEWULSKA K H, MOOSIC K B, et al. Advances in the diagnosis and treatment of large granular lymphocytic leukemia[J]. Curr Hematol Malig Rep, 2020, 15(2): 103-112.

[6] MOIGNET A, LAMY T. Latest advances in the diagnosis and treatment of large granular lymphocytic leukemia[J]. Am Soc Clin Oncol Educ Book, 2018, 38: 616-625.

[7] LAMY T, MOIGNET A, LOUGHRAN T P, Jr. LGL leukemia: from pathogenesis to treatment[J]. Blood, 2017, 129(9): 1082-1094.

[8] 陈肖,赵四书,刘露,et al.T细胞受体可变区亚家族检测在成熟T细胞淋巴瘤中的诊断价值[J].中华检验医学杂志,2021, 44(12):7.

[9] Novikov ND, Griffin GK, Dudley G, et al. Utility of a Simple and Robust Flow Cytometry Assay for Rapid Clonality Testing in Mature Peripheral T-Cell Lymphomas. Am J Clin Pathol. 2019 Jan 31.


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编辑:yeah  审校:小冉

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