Nature正刊 | 单细胞多组学染色质重塑研究:BRD4在Cx3cr1+巨噬细胞与纤维母细胞非细胞自主通讯中对心力衰竭的调控

文摘   2024-10-25 11:49   美国  

医学科研新动向

Chromatin remodelling drives immune cell–fibroblast communication in heart failure

Nature

<2024年10月23日>

心力衰竭是一种由慢性炎症组织纤维化共同作用引发的多器官功能障碍性疾病,涉及心脏、肾脏、肝脏和肺脏等多个器官的功能衰退。尽管其病理过程中的炎症与纤维化相互作用已被广泛关注,但其分子机制仍未完全阐明。先前的研究指出,纤维母细胞的慢性激活不仅加剧了器官功能的恶化,还与多种恶性肿瘤的进展相关。这一纤维母细胞的病理状态是由压力感应机制启动,并通过基因表达的转录重编程驱动病理进展。
本研究聚焦于溴结构域蛋白4(BRD4),这一关键转录共激活因子在多种压力相关病理状态中的作用已被证实。在心力衰竭中,BRD4的活性与纤维母细胞的激活密切相关,通过调节特定炎症基因的表达,促进了纤维化的病理进程。我们通过条件性敲除Cx3cr1+巨噬细胞中的BRD4,探讨其对心脏纤维化心力衰竭的影响,发现该操作显著减轻了心脏功能的恶化,并减少了纤维母细胞的活化
本研究旨在揭示Cx3cr1+巨噬细胞纤维母细胞之间通过染色质重塑实现的非细胞自主信号传导机制。这一机制可能为理解心力衰竭中炎症与纤维化的交叉调控提供新的分子见解,并为治疗干预提供潜在靶点。

研究设计

本研究通过体内和体外实验方法,结合高通量测序技术,深入探讨了BRD4在Cx3cr1+巨噬细胞中的条件性敲除对心脏纤维化和心力衰竭的影响。以下是研究的主要方法:

1. 小鼠模型的建立

  • 采用TAC(主动脉缩窄)手术诱导压力过载引发的心力衰竭小鼠模型

  • 使用Cx3cr1creERT2; Brd4flox/flox小鼠模型,通过注射他莫昔芬实现Cx3cr1+巨噬细胞中的BRD4条件性敲除

2. 药物处理

  • 小鼠在术后接受BET抑制剂JQ1(50 mg/kg,每日注射)的处理,以评估BRD4抑制对心脏功能和纤维化的影响。

3. 心脏功能评估

  • 使用超声心动图评估小鼠心脏功能,特别是左心室射血分数(LVEF),以测量心脏功能的改变。

4. 单细胞RNA测序(scRNA-seq)

  • 提取小鼠心脏中的非心肌细胞,使用10x Genomics平台进行单细胞RNA测序,分析不同细胞类型的基因表达变化。

  • 重点分析Cx3cr1+巨噬细胞纤维母细胞在压力过载和BRD4敲除条件下的转录组变化。

5. 单细胞染色质可及性测序(scATAC-seq)

  • 使用单细胞ATAC-seq技术评估Cx3cr1+巨噬细胞和纤维母细胞的染色质开放状态,探讨BRD4对染色质可及性的调控作用。

6. CRISPR-Cas9基因编辑

  • 利用CRISPR-Cas9技术靶向敲除Il1b基因上游增强子,验证其在压力条件下的调控功能。

  • 通过定量PCR荧光素酶报告实验评估这些增强子在Il1b转录激活中的作用。

7. 体外纤维母细胞活化实验

  • 使用人诱导多能干细胞来源的心脏纤维母细胞(iPSC-CFs),模拟体外纤维母细胞的活化过程。

  • 通过TGF-βIL-1β处理观察纤维母细胞的激活状态,并进行胶原收缩实验评估纤维化功能。

8. 流式细胞术与免疫组织化学

  • 使用流式细胞术对心脏组织中巨噬细胞的数量和表型进行定量分析。

  • 采用免疫组织化学染色检测心脏组织中的纤维化标志物。

9. 体内IL-1β中和实验

  • 小鼠在TAC模型下治疗,评估其对心脏功能和纤维化的改善效果。

核心结果

1. BRD4在Cx3cr1+巨噬细胞中介导心力衰竭进展

研究首先通过TAC(主动脉缩窄)模型模拟压力过载引发的心力衰竭,并结合JQ1(BET抑制剂)处理来评估BRD4在心力衰竭中的作用
  • 图1b显示,JQ1处理有效保护了心脏功能,显著提高了左心室射血分数。
  • 单细胞RNA测序(scRNA-seq)分析(图1c)表明,Cx3cr1+巨噬细胞是表达促炎症因子(如IL-1β)的主要细胞类型。
  • BRD4的作用通过调节Il1b和Cx3cr1的表达,与心脏功能恶化呈显著负相关(图1g),TAC诱导的这些基因在JQ1抑制后显著下降。
  • BRD4条件性敲除(图1n)进一步证明其对心脏功能保护的重要性,抑制Cx3cr1+巨噬细胞中的BRD4能显著改善心脏功能并减少纤维化。

2. BRD4驱动Cx3cr1+巨噬细胞中的炎症反应

细胞亚群与炎症基因的关联Cx3cr1+巨噬细胞中BRD4对促炎症基因的调控作用。压力过载条件下,图2a中的单细胞分析显示,Cx3cr1+巨噬细胞在炎症反应中起核心作用,且TAC后一个特定的巨噬细胞亚群(cluster 4)显著扩张(图2e)。
  • Il1b和Ccr2等促炎基因在TAC诱导的Cx3cr1+巨噬细胞中高度表达,尤其是在cluster 4中(图2g),与心脏功能恶化显著负相关(图2f)。
  • BRD4敲除后,炎症相关基因表达显著降低,特别是Il1b(图2i,j),揭示了BRD4通过促进炎症反应驱动心力衰竭的作用。

3. BRD4在Cx3cr1+巨噬细胞中通过非细胞自主途径调控纤维母细胞活化

纤维母细胞的活化机制:尽管BRD4敲除并未直接影响纤维母细胞,但其在Cx3cr1+巨噬细胞中的敲除通过非细胞自主的途径抑制了纤维母细胞的活化。单细胞转录组分析表明,TAC诱导后纤维母细胞激活基因(如Postn、Meox1)的表达显著上升(图3g),但BRD4敲除后,这些基因表达显著下降。
  • 图3m-n中的染色质可及性分析表明,BRD4敲除不仅减少了这些纤维母细胞基因的表达,还降低了它们的染色质开放性。
  • BRD4通过在Cx3cr1+巨噬细胞中调控炎症信号,间接影响了纤维母细胞的活化状态。

4. BRD4结合在Il1b增强子上的作用

染色质重塑与基因调控:scATAC-seq分析展示了BRD4如何通过结合Il1b基因的增强子位点调控其表达。在TAC引发的心力衰竭模型中,Il1b上游的几个关键增强子位点染色质可及性显著增加(图4d),并通过BRD4直接结合调控Il1b的表达(图4f)。
  • CRISPR敲除实验(图4m)验证了Il1b上游增强子5和6是压力诱导下的功能性调控元件。删除这些增强子后,Il1b表达显著下降。
  • BRD4与RELA共同调控这些增强子的转录活性,证明了BRD4在炎症反应中的中心调控作用(图4n)。

5. IL-1β通过MEOX1驱动纤维母细胞纤维化反应

IL-1β信号与纤维母细胞活化IL-1β通过激活纤维母细胞中的MEOX1信号通路,推动纤维化的过程。体外实验(图5a-c)表明,IL-1β与TGF-β协同作用,显著增加了纤维母细胞的活化和胶原收缩能力。RNA-seq分析进一步表明,IL-1β与TGF-β共同作用时上调了一系列促纤维化基因,特别是MEOX1(图5d)。
  • RELA直接结合并激活MEOX1的增强子位点,BRD4和RELA共同调控MEOX1基因的转录(图5e-f)。这种机制揭示了IL-1β通过MEOX1推动纤维化的信号通路。
  • 体内实验表明,通过中和IL-1β,不仅显著降低了纤维母细胞的活化,还改善了心脏功能(图5h-m)。


本研究通过单细胞RNA测序(scRNA-seq)和空间转录组学技术,小结如下:
  • BRD4在Cx3cr1+巨噬细胞中驱动心脏纤维化:通过压力过载模型(TAC),研究揭示了BRD4在Cx3cr1+巨噬细胞中的表达促进了心脏纤维化和心力衰竭的进展。BRD4通过上调IL-1β等促炎基因的表达,推动了炎症反应。

  • BRD4通过非细胞自主途径激活纤维母细胞:尽管BRD4并未直接作用于纤维母细胞,但其在Cx3cr1+巨噬细胞中的作用通过IL-1β信号间接激活了纤维母细胞,增强了纤维化相关基因(如Postn和Meox1)的表达。

  • 染色质重塑机制揭示BRD4在Il1b基因调控中的核心作用:BRD4通过直接结合Il1b基因的上游增强子,调控其在压力条件下的表达。Il1b的表达与心脏功能恶化显著负相关,CRISPR实验进一步验证了这些增强子的关键作用。

  • IL-1β通过MEOX1信号通路驱动纤维化:IL-1β通过激活纤维母细胞中的MEOX1信号,促进了纤维化反应。IL-1β与TGF-β的协同作用显著增强了纤维母细胞的活化及胶原收缩能力。

  • IL-1β中和实验改善心脏功能:体内实验显示,阻断IL-1β信号可以显著降低纤维化,并改善心脏功能。这表明IL-1β是心力衰竭和纤维化的重要治疗靶点。

  • BRD4和IL-1β信号轴为治疗提供新靶点:研究揭示了BRD4通过染色质重塑调控炎症和纤维化的核心机制,IL-1β则通过跨细胞通讯推动纤维母细胞的活化。这一信号轴的干预为心力衰竭的治疗提供了潜在的药物靶点。


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