TOLO智库 | 基于CRISPR/Cas12快速、现场检测非洲猪瘟

学术   科学   2024-02-02 16:05   上海  

核酸检测金标准PCR具有较高的检测灵敏度,NGS实现了高通量,但它们均依赖于复杂仪器和专业的人员……CRISPR-Dx作为全新的下一代分子诊断技术,要解决的正是简便和快速,以满足即时、现场的检测需求。未来,甚至田间地头的农民、畜牧养殖厂的一线工作人员均可以操作,颠覆核酸检测传统,更有利于病原的有效控制,助力农业、畜牧业、宠物和人类健康!

非洲猪瘟是世界动物卫生组织认定的A类动物疫病,我国将其列为一类动物疫病,非洲猪瘟的病原是非洲猪瘟病毒(Africa Swine Fevervirus,ASFV),自2018年传入我国以来,ASFV以极快的速度在国内传播,给中国生猪养殖业造成了数千亿元的经济损失。且ASFV的生存能力很强,一旦在一个区域出现,将会难以根除,因此即时、快速、准确的检测手段是非洲猪瘟疫情防控的重中之重。武汉大学中南医院医学研究所免疫与代谢前沿科学中心的研究者们在Cell Discovery上发表了题为“Rapid detection of African swine fever virus using Cas12a-based portable paper diagnostics”的文章,报道了一种基于CRISPR/Cas12即时快速检测ASFV的新方案。

01
基于CRISPR/Cas12的ASFV检测体系构建


crRNA的设计在基于CRISPR/Cas12的靶向检测体系中发挥了重要作用。因此,作者首先针对ASFV的多聚蛋白pp220编码基因、DNA聚合酶编码基因(DNA Pol)的保守区域设计了6条crRNA。为了检测不同crRNA的靶向效率,作者分别在Cas12a顺式剪切体系(图1)和反式剪切体系(图2)中检测了各条crRNA的表现。当DNA Pol或pp220 dsDNA靶标序列出现时,crRNA1靶向的DNA Pol和crRNA5靶向的pp220在剪切效率上优于其他crRNA。因此,作者选择以DNA Pol为靶点的crRNA1和靶向pp220的crRNA5进行体系搭建。

图1.LbCas12a顺式剪切体系筛选crRNA


图2.LbCas12a反式剪切体系筛选crRNA
02
基于CRISPR/Cas12的ASFV检测体系性能


为了确定基于CRISPR/Cas12a检测体系的特异性,作者引入了一系列的双核苷酸突变。结果表明,在DNA Pol或pp220 dsDNA的靶向体系中,PAM和PAM近端的突变几乎使荧光信号降低到本底水平,而PAM-远端17-20 nt出现的突变仍会产生部分的荧光信号(图3),证明基于CRISPR/Cas12a的ASFV序列检测具有较高的特异性。

图3.LbCas12a检测体系的序列特异性


为了进一步确定CRISPR/Cas12a检测体系对ASFV的特异性,作者引入了常见猪病原体,包括伪狂犬病毒(PRV)、猪环状病毒(PCV)、猪链球菌(SS)、猪鼻支原体(MH)和副猪嗜血杆菌(HPS)等,并提取其基因组DNA进行检测。DNA pol crRNA1和pp220 crRNA5均表现出较高的针对ASFV的特定荧光信号,而对上述其它病原体无非特异信号(图4)。

图4.LbCas12a检测体系对ASFV的特异性


03
基于CRISPR/Cas12检测实际ASFV样本


为了探索该检测方案的实际样本检测性能,作者从ASFV感染猪的血液和肛门拭子中提取DNA。通过PCR富集靶标,在Cas12a/crRNA复合物和ssDNA-FQ报告探针存在的情况下,所有阳性样本,包括血液样本5例(血液样本1-5)和拭子样本1例(拭子样本1),使用crRNA1或crRNA5均显示出强烈的荧光信号;所有阴性样本,包括血液样本3例(血液样本6-8)和拭子样本2例(拭子样本2-3)的荧光信号与NC比没有差异。以上结果表明,基于CRISPR/Cas12a可对ASFV实际样本进行较高精度的检测(图5)

5. LbCas12a检测带有ASFV病毒的实际样本


04
基于CRISPR/Cas12即时、现场、快速检测ASFV


原始的基于荧光qPCR检测ASFV的一个最大缺点是需要特殊的实验室设备和专业人员,这是畜牧业和农业一线工作者难以获得的。鉴于ASFV的高传染性和快速传播的特性,开发一种能够监测现场ASFV病毒并能由非专业人员操作的实时检测方法至关重要。因此,作者结合RPA恒温扩增,CRISPR/Cas12a检测体系和试纸条读取,建立了能满足了现场检测需求的方案。试纸条的读取原理如下图(图6):与anti-FITC/FAM抗体结合的金纳米颗粒包埋在结合垫上,C线包被链霉亲和素,T线包被IgG二抗;双端分别标记FAM(或FITC和Biotin的ssDNA报告探针替代原本Cas12a/crRNA反式剪切体系中的FQ荧光探针。(备注:FAMFITC端用于结合anti-FITC/FAM的金纳米颗粒,因此两种标记二选一即可,可以采用FAM-Biotin-ssDNA探针或FITC-Biotin-ssDNA探针)。以FAM-Biotin-ssDNA探针为例,当探针未被Cas12a降解时,完整的探针与链霉亲和素结合,被捕获在C线上,FAM端结合anti-FITC/FAM标记的金纳米颗粒,导致仅C线显色,指示结果为阴性。当Cas12a/crRNA识别到靶标并被反式激活时,会剪切FAM-Biotin-ssDNA探针,因此FAM端碎片可以越过C线,FAM端结合的anti-FITC/FAM标记的金纳米颗粒被T线处的二抗IgG捕获,导致T线显色,指示结果为阳性。

图6. CRISPR/Cas12系统试纸条

当作者应用试纸条检测时,在无FAM-Biotin-ssDNA探针的空白对照中显示了一个明显的假阳性条带(图7a)。这是因为一部分纳米颗粒随着液体流动不断地前进,直接到达T线,从而产生假阳性结果,FAM-Biotin-ssDNA探针浓度提高可减少假阳性条带(图7a)。因此,在基于CRISPR的试纸条检测中,合适浓度的FAM-Biotin-ssDNA探针是必须的。在后续研究中,作者选择了1 μM FAM-Biotin-ssDNA探针浓度。为了明确Cas12a试纸条检测的最佳反应时间和温度,作者比较了反应时间1、2、5、10 min,反应温度4°C,室温37°C。结果表明,2 min的反应时间足以观察到清晰的测试带,且室温下的反应带比4°C和37°C下的反应带更清晰。在以上优化条件下,试纸条检测ASFV的灵敏度可以达到2×10copies(图7b);该方案的检测结果与传统qPCR具有一致性(图7c),且具有针对ASFV靶向检测的特异性(图7d)。

7. LbCas12a结合试纸条检测的灵敏度和特异性

该检测方法的灵敏度低至200个拷贝/样本,可适用于现场分析,检测方法灵敏准确(图8),该条带可在4°C的干燥环境中保存至少3个月。

图8.  LbCas12a结合试纸条检测的工作流程




总之,作者开发了一种可现场部署、成本可控、方法灵敏并准确的基于CRISPR/Cas12a的检测方法,可准确地检测ASFV。灵敏度与qPCR检测差不多,且不会对猪常见的其它病原存在非特异识别,检测特异性较高。而且基于等温扩增和CRISPR试纸条的检测方案不依赖复杂仪器和专业人员,非常适合于畜牧业一线工作者进行即时、现场、快速检测,特别有利于动物疫病防控。


参考文献:

[1].Lu S, Li F, Chen Q, Wu J, Duan J, Lei X, Zhang Y, Zhao D, Bu Z, Yin H. Rapid detection of African swine fever virus using Cas12a-based portable paper diagnostics. Cell Discov. 2020 Apr 7;6:18. doi: 10.1038/s41421-020-0151-5. PMID: 32284877; PMCID: PMC7136273.



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吐露港生物科技致力于提供基于CRISPR诊断技术的生命科学整体解决方案!公司首次鉴定Cas12蛋白具备高效的ssDNA反式切割活性,并自主研发了名为HOLMES的CRISPR诊断系统。公司目前正联合行业伙伴积极推动CRISPR诊断的产业化!
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