2023年6月,来自江南大学的Shixia Xi等人在Food Chemistry上发表了一篇题为Conserved residues Glu and Phe at substrate binding groove of α-1,6-glucanases modulate branch of the product的研究性论文。
Abstract
了解α-1,6-葡聚糖酶中哪些氨基酸作用于多糖的α-1,6糖苷键,对于生产具有分支结构的产物具有重要意义。为此,研究了来自7个亚科的330个序列,以挖掘识别或催化α-1,6糖苷键的氨基酸。计算分析表明,E343和W521两个氨基酸是酶的α-1,6糖苷键特异性的触发因子。为了探索E343和W521对产物结构的影响,研究了几个工程突变体。产物结构分析表明,直链淀粉和支链淀粉的比例有明显差异。催化机理揭示了大体积芳香侧链是控制分支葡聚糖比例的触发器。在葡聚糖分支酶(GBE)的转糖苷作用过程中,E148作为质子供体调控产物中分支结构的生成。
01
简介
使用来自糖苷水解酶家族13(GH 13)的α-1,6-葡聚糖酶产生的具有α-1,6-连接分支的α-葡聚糖在营养和医药方面的应用特别有吸引力。先前的一项研究报告称,具有分支的α-葡聚糖在小肠中抵抗消化,这对于预防和管理饮食相关疾病是理想的。此外,支化程度限定了每个样品的物理化学和生物学性质以及应用范围。α-1,6-葡聚糖酶中催化α-1,6糖苷键的残基的提取对于生产具有分支度的产物至关重要。
α-1,6-葡聚糖酶催化底物中的α-1,6糖苷键,并涉及七个GH 13亚家族。在α-1,6糖苷键上具有活性的GH 13亚家族包括GH13_8、GH13_9、GH13_11、GH13_12、GH13_13、GH13_14和GH13_41亚家族。GH13_8和GH13_9亚家族中的酶是一种1,4-α-葡聚糖分支酶(GBE,EC2.4.1.18)。
GBE是负责转糖基化和形成α-1,6糖苷键的酶。GH13_11、GH13_12、GH13_13、GH13_14和GH13_41亚家族中的酶是葡聚糖去支化酶(GDE,EC 3.2.1.68和3.2.1.33)、异淀粉酶(ISO,EC3.2.1.68)和支链淀粉酶(PUL,EC3.2.1.41)。这些酶(GDE、ISO和PUL)裂解底物的α-1,6糖苷键。上述所有催化α-1,6糖苷键的酶在底物和产物方面形成相对异质的基团。因此,发掘了α-1,6-葡聚糖酶中催化α-1,6糖苷键的氨基酸残基,涵盖了对α-1,6糖苷键有活性的GH 13亚家族。
文献中报道了一些催化α-1,6糖苷键的残基,Val和Trp。与催化亲核试剂相邻的缬氨酸(V195)对于链球菌GH13_31酶的α-1,6活性是重要的。变异株(PDB ID:2 ZIC),因为V195 A突变体改变了对α-1,4-活性的特异性。交替蔗糖酶的3D结构显示,亚位点+ 2处的残基W675定向受体结合,只倾向于α-1,6连接合成。此外,α-岩藻糖苷酶还在活性位点附近形成一个芳香亚位点,在α-1,6键中容纳N-乙酰葡糖胺。尽管已经报道了许多调节酶的α-1,6-连接特异性的氨基酸残基,但这些残基是否适用于α-1,6-葡聚糖酶还不清楚。
基于上述结果,在α-1,6-葡聚糖酶中挖掘出了催化α-1,6糖苷键的氨基酸残基,涵盖了对α-1,6糖苷键有活性的GH 13亚家族。研究了
α-1,6-葡聚糖酶的结构-功能关系和控制键特异性的残基位置。以Rhodothermusobamensis STB 05(RoGBE)的GBE为例,探讨了残留物对产物结构的影响。此外,催化α-1,6糖苷键的氨基酸残基的突变揭示了它们对产物结构的影响。02
结果与讨论
1.亚家族内保守位点的鉴定
研究人员收集了GH 13亚家族的蛋白质序列,以鉴定与α-1,6糖苷键的结合、形成或裂解相关的保守位点和氨基酸残基。共筛选出7个亚家族,包括3个与α-1,6糖苷键形成相关的亚家族和6个与α-1,6糖苷键降解相关的亚家族(图1A)。共筛选出330条序列,用于筛选7个亚家族的保守位点。每个亚家族至少有44个不同的实例。(图1A)。对蛋白质序列的所有残基进行比对,并使用Shannon熵方法计算熵,以识别高度保守的位置(图1B)。Shannon熵用于根据方程确定保守位点。H(X) = −∑xP(x)log2[P(x)]。
式中P是×事件的概率。根据定义,熵测量一系列事件中的变化或变。因此,不变的模式,例如在没有序列多样性的位置上的氨基酸残基,具有零熵。相反地,位置改变的氨基酸残基具有大于零的熵。具有零熵的位置被认为是保守位点。
图1.针对α-1,6糖苷键的七个亚家族中保守位点的预测。(A)GH 13亚科的系统发育树。紫色分支代表催化底物的α-1,6糖苷键的亚家族中的酶。右边的数字代表每个亚家族中选择用于保守热点研究的序列数量。(B)保守位点被定义为Shannon熵为零的位点。在序列比对后,使用窗口计算氨基酸残基的Shannon熵。每个位置的Shannon熵被筛选并投影到结构模型中。
2.保守位点靶向α-1,6糖苷键
期望在预测的保守位点发现富集的位点。在α-1,6糖苷键上有活性的亚家族中有一个保守位点,其熵值为零。通过对这7个亚家族α-1,6糖苷键保守位点的交叉分析,得到了11个共有的保守位点。11个保守位点分别是343、521、521、523、570、575、749、751、814、979和980。(图2A)。位于11个保守位点的氨基酸显示在图2B中。GH13_41在保守位点343和521处的氨基酸分别不同于GH13_8、GH13_9、GH13_11、GH13_12、GH13_13和GH13_14。这可能是因为由酶和GH13_41催化的糖苷键的类型不同于其他亚家族中的糖苷键。例如,GH13_41中的酶可以水解α-1,4糖苷键和α-1,6糖苷键。因此,在下面的实验中忽略了GH13_41的保守位点。
RoGBE中11个保守位点的对应位置为148、198、199、200、235、240、303、305、356、423和424。RoGBE中的保守位点199、200、235、240、303、305、356、423和424在所有亚家族中是保守的(图2C、图2D)。对应于RoGBE中的199、200、235、240、303、305、356、423和424的保守位点522、523、570、575、749、751、814、979和980在对多个糖苷键有活性的GH 13中是保守的。因此,这些保守位点不是酶催化α-1,6糖苷键的关键位点。忽略上述8个保守位点,保守位点343和521在α-1,6糖苷键活性亚家族中均是保守的。
图2.确认参与α-1,6糖苷键催化的酶的保守位点。(A)保守位点在α-1,6糖苷键上有活性的亚家族内重叠。(B)保守位点中的保守氨基酸残基。(C)从GH 13家族中的所有子家族生成的位置概率矩阵。矩阵显示为序列标志,其中字母高度对应于该区域的氨基酸概率。(D)从GH 13家族中所有亚家族的520至530个位点生成的位置概率矩阵。
3.保守位点的结构表征
对于每个亚家族,我们从最密集的结构中选择了一个代表。将来自所选结构模型的蛋白质序列添加到比对中,并且将总共11个保守位点映射到相应亚家族的3D模型中(图3)。所有保守位点均位于催化结构域的中心,催化结构域由八个螺旋和八条链组成(图3)。这一结果表明,保守位点具有优势的位置。
图3.GH13_8:3AML、GH13_9:5GQX、GH13_11:4OKD、GH13_12:3FAX、GH13_13:6J4H和GH13_14:3WDH等5个亚家族的保守热点的结构特征。在所有GH13亚家族中保守的保守位点522、523、570、575、749、751、814、979和980用紫色球体表示。保守位点343和521由红色球体表示响。
为了更好地理解酶中的保守位点如何调节连接特异性,详细地研究了在底物的α-1,6糖苷键上活性的亚家族内重叠的位点。如图4所示,W521位于柔性催化环,而E343位于α/β折叠桶的一条链。E343位于β链的起始处,具有非常低的B因子。W521热点位于ɑ7和ɑ8之间的环上,具有很高的B因子(图5)。此外,W521与基底之间的距离小于4 Å。E343与基底之间的距离大于6 μm。343的位置和距离表明它不太可能折叠并移动到更靠近底物的位置,而具有高B因子的W521更可能参与底物结合。
图4.相应亚家族中保守位点343(Glu)和521(Trp)的结构特征。4.W521决定酶的α-1,6键并改变产物结构
RoGBE中的两个保守位点E343和W/F521对应于位点E148和W198。将E148突变为Asp(D)、Lys(K)、Gln(Q)、Arg(R)和Trp(W),并将保守的热点W198突变为Ala(A)、Asp(D)、Phe(F)、His(H)和Tyr(Y)。突变体的转苷和水解活性分别用于评估其切割α-1,4糖苷键和形成α-1,6糖苷键的能力。突变体W198 A、W198 F、W198 H和W198 Y显示出低转糖苷活性,并且W198 D显示出转糖苷活性的丧失(图6A)。突变体W198F、W198H和W198Y的水解活性增加,如图6B所示。转糖苷和水解活性的变化表明产物结构的改变。
5.E343决定酶的α-1,6键并改变产物结构
保守热点E343(对应于RoGBE中的位点E148)突变为Asp(D)、Lys(K)、Gln(Q)、Arg(R)和Trp(W)。E148 D、E148 K、E148 Q和E148 R显示出急剧降低的转糖苷活性(图8A),并且E148 W显示出转糖苷活性的完全丧失。然而,保守的热点148突变诱导对水解活性的轻微影响(图8A,图8B)。活性结果与148位突变的分子大小分布一致。直链淀粉和支链淀粉的分子量分别取决于GBE水解α-1,4糖苷键和反式β-糖苷酶形成新分支点的过程。在WT和突变体修饰后,直链淀粉的Mw转变为较低值(图8C)。这表明突变体的水解能力仍然保留。支链淀粉的Mw也转移到比WT产品更低的值,表明转糖基化能力降低。此外,还测定了淀粉-碘的吸收光谱,这表明单突变体的产物是不同的。单一突变体E148 W和对照的产物在约610 nm处显示出强吸收峰(吸光度= 2.82),表明形成了直链淀粉-碘复合物(图8D)。然而,E148 K、E148 Q和E148 R的产物分别在约510 nm、530 nm和560 nm处显示出强吸收峰。这些产物在λmax上显示出明显的红移,表明突变体将淀粉改性成具有较低聚合度的较短链。
03
结论
酶是否能作用于底物的分支点,限制了它的应用,影响产物结构,从而限制了产物的应用。选择对α-1,6糖苷键有活性的7个亚家族的成员来探索控制α-1,6糖苷键的识别、形成或切割的氨基酸残基。根据这两种α-1,6糖苷键模式,确定了RoGBE的两个保守位点E343和W521,分别对应于RoGBE的E148和W198。活性分析表明,保守的热点突变体显著降低了α-1,6糖苷键的活性。当保守热点E148为带电荷的氨基酸残基和保守热点W198为带芳香环的氨基酸残基时,产物发生轻微变化。3D结构显示,Phe,His和Tyr的庞大芳香侧链是控制分支葡聚糖比例的触发器。。E148作为质子供体调节GBE转糖苷作用过程中产物支链结构的生成。
DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2023.135510
END
前期回顾