TCR是T细胞免疫的核心成员。“眼见为实”，看见TCR很重要...
| 技术 | 优势 | 劣势 | 应用场景 |
| 扫描电镜 | 超高分辨率（可达1nm） | 要求牢固固定 | T细胞微绒毛的可视化 |
| 透射电镜 | 截面超高分辨率（可达0.1nm） | 要求牢固固定和薄切片 | TCR纳米团簇的可视化；微绒毛中细胞骨架丝的可视化 |
| 共聚焦显微镜 | 荧光团的高对比度成像（横向250nm分辨率，轴向500nm） | 一次成像一个小面积，衍射受限，轴向分辨率差 | 细胞或大的超分子结构的成像，如免疫突触 |
| 全内反射荧光显微镜 | 有限的成像深度增加了对比度；可以与超分辨率技术相结合 | 要求表面贴装样品；靠近玻璃的荧光团的潜在成像偏差 | 基底细胞膜的成像，包括人工突触；对固定的和活的T细胞中的单个分子进行成像 |
| 光片荧光显微镜 | 有限的成像切面增加了轴向分辨率；可与超分辨率技术相结合；被成像的平面可以在z方向上移动 | 目前还不广泛使用；样品准备和客户定制的显微镜是限制因素 | 活T细胞和固定T细胞的膜蛋白和胞质蛋白的全细胞三维超分辨率成像和四维跟踪 |
| 结构化照明显微镜 | 超分辨率法（100 nm分辨率）；大的采集面积，提高三维分辨率 | 仅两倍分辨率的衍射限制技术；高度的光漂白（厚样品单处理不理想） | 观察静息T细胞TCR的分布和激活后TCR的运动 |
| 受激辐射损耗显微镜 | 超分辨率方法(20 nm分辨率）；适用于实时和三维成像 | 高度的光漂白；荧光团的选择有限 | 观察静息T细胞TCR的分布和激活后TCR的运动 |
| 双螺旋点扩散函数显微镜 | 超分辨率方法(20 nm分辨率）；适用于实时和三维成像(20 nm轴向分辨率）；单分子跟踪 | 扩展的PSF需要低密度标记/表达 | 可视化TCR在T细胞激活不同阶段的分布，TCR在膜内的动态跟踪 |
| 光活化定位显微镜（PALM），随机光学重建显微镜（STORM） | 超分辨率单分子定位方法(20 nm分辨率）；单分子跟踪（PALM） | 长时间的采集和处理时间；荧光团选择有限（特别是PALM）；难以应用于活细胞 | 观察静止T细胞中TCR与微绒毛的分布和激活后的TCR动态 |
| DNA-PAINT技术 | 超分辨率单分子定位法(20 nm分辨率），多通道检测，采集时间短，减少光漂白 | 高背景荧光（用TIRFM或LSM降低） | 测量CD45和TCR激活后的分子间距离和分子动力学 |
| 荧光共振能量转移 | 超精确和灵敏的近端定位方法（1.5 nm分辨率）；可以看到可视化的分子内构象变化；可以提供共定位和动力学信息 | 需要两个荧光团可能会扰乱蛋白质的功能；严格的成像条件 | 监测活细胞激活后TCR/CD3的动态；测量TCR复合物的化学计量；检测TCR的构象变化 |
| 荧光相关光谱 | 从不需要超分辨率获取的自相关函数推断分子行为的光谱学技术 | 需要低密度标记和小面积的获取；主要适用于活细胞，静息T细胞难以捕获 | 测定TCR复合物的化学计量；测量激活前后的TCR动态和集簇 |
