NGS 检测 EGFR TKI 耐药后 MET 扩增表现如何?最新证据来了

学术   2024-12-10 22:00   浙江  



MET 扩增不仅是多种肿瘤的原发驱动基因异常,也是 EGFR 突变非小细胞肺癌(NSCLC)患者靶向治疗耐药的重要机制。荧光原位杂交(FISH)是检测 MET 扩增的金标准,而中国患者中关于二代测序(NGS)检测 MET 扩增表现的数据有限。近日,Lung Cancer 发表一项四川大学华西医院的研究,以 FISH 为参照,评估了 EGFR TKI 耐药患者中 NGS 检测组织和血浆样本 MET 扩增的表现[1],为临床实践带来重要启示。


01
研究解读





研究背景


MET 扩增和 MET 14 外显子跳跃突变等 MET 基因异常已经被视为原发癌基因驱动因素和有效治疗靶点。MET 扩增发生于 1% ~ 5% 的 NSCLC 患者[2]。MET 扩增定义具有不同标准,包括每个细胞中 MET 信号绝对数量界值和基于平均 MET 标准差的界值,MET 和 CEP7 信号比通常作为鉴别局灶扩增和多倍体的方法。

MET 扩增在 NSCLC 中具有特殊临床意义。MET 扩增是包括 EGFR TKI 等 TKI 的常见获得性耐药机制。EGFR TKIs 耐药患者中,5%~50% 具有 MET 扩增[3]。目前多种 MET TKI 已经可及,因此检测 MET 扩增对于耐药后治疗具有重要意义。

FISH 是 MET 扩增检测金标准,但是需要有创操作,且无法检测其他肿瘤基因。NGS 可同时检测多种基因异常,因此在临床实践中应用日益广泛。但是中国患者中对比 NGS 和 FISH 检测 MET 扩增的全面数据有限,特别是 EGFR TKI 耐药后患者中。临床实践中,NGS 是否 FISH 的合适替代依旧需要更为坚实的证据。由于非侵入性和可重复性,液体活检成为早期诊断和预后预测的热点,但是也需要更多研究探索特定基因如 MET 扩增的检测一致率。



研究方法


这是一项多中心临床研究,纳入之前 EGFR TKI 治疗进展的晚期 NSCLC 患者。前瞻性收集患者组织和血液配对标本,行 NGS 和 FISH 检测,评估二者一致性。FISH 检测中,MET 拷贝数(CN)≥ 5 或 MET/CEP7 ≥ 2.0 为 MET 扩增阳性,MET 多倍体定义为 MET CN ≥ 5 或 MET/CEP7 < 2.0,MET 局灶扩增需要 MET/CEP7 ≥ 2.0。

研究目的是分析 NGS 和 FISH 检测以及组织和血浆样本检测的敏感性,特异性和一致性。研究还使用生物信息学方法发现 NGS 检测 MET 扩增的最佳界值,以达到理想敏感性和特异性。



研究结果


2021 年 11 月~2023 年 10 月,共入组 116 例患者。大多数患者具有临床常见 EGFR 突变(19del,46.6%;L858R,39.7%)。29.3% 的患者对一二代 EGFR TKI 耐药,70.7% 患者对三代 TKI 耐药。

  • 不同治疗队列的 MET 扩增阳性率

所有患者的 FISH 检测 MET 阳性率为 37%(43/116)。三代 EGFR TKI 耐药患者的阳性率是 42.7%(35/82),高于一二代 EGFR TKI 耐药后(23.5%,8/34)。三代 EGFR TKI 耐药组中,22.0%(18/82)患者 MET CN ≥ 10 拷贝。

  • NGS 诊断表现评估和优化

116 例组织可行 FISH 和 NGS 检测。除外多倍体病例,检测 MET 局灶病例的一致性,敏感性,特异性分别是 90.72%,66.67% 和 98.63%。之后除外局灶病例,诊断多倍体的表现分别是 78.26%,31.58% 和 90.41%。将多倍体和局灶均视为阳性,结果分别是 77.59%,58.14% 和 89.04%(表 1)。

表 1.  组织样本中 FISH 和 NGS 结果比较

通过评估 NGS 标本的肿瘤细胞比例,将初始 MET CN 数据转化为调整 MET GCN。同时使用评分方法确定多倍体病例。为增加特异性,控制假阳性病例,最终设定最佳阈值是 GCN = 6.55,此时具有 ≥ 90% 的特异性和最佳敏感性。局灶扩增的一致率,敏感性和特异性分别是 90.72%,66.67% 和 98.63%;多倍体分别是 79.35%,0.00%,100.00%;全部病例分别是 76.72%,39.53%,98.63%。

血浆样本检测的计算界值是 MET CN ≥ 2.19,而研究显示的最佳界值是 MET GCN ≥ 2.36。去除多倍体病例,MET 局灶病例的一致率,敏感性,特异性分别是 78.35%,29.17%,94.52%。去除局灶病例,分别是 80.43%,5.26%,100.00%。多倍体和局灶均视为阳性,结果分别是 67.24%,20.93%,94.52%(表 2)。

表 2.  血浆样本中 FISH 和 NGS 结果比较

组织中,调整方法后进行 NGS 检测可将总特异性增加 10%,但总敏感性降低。局灶病例诊断表现几乎不变。血浆 NGS 敏感性增加 10%,但是特异性表现中等。

由于不同 TKI 的生物基因特征不同,调整 FISH CN 界值以优化 NGS 发现阳性病例的表现。一二代 EGFR TKI 中,当 FISH CN ≥ 5 被设为阳性界值,共有 7 例阳性和 27 例阴性病例。三代 EGFR TKI 中,FISH CN ≥ 10 为阳性,可见 19 例阳性病例,63 例阴性病例(图 1a)。对于组织样本,通过应用 ROC 曲线,使用 GCN ≥ 4.0 作为一二代药界值,GCN ≥ 7.535 作为三代药界值。最佳界值选择使特异性高于 90%,最高一致率成为可能(图 1b)。各组一致率均增加约 15%,敏感性增加 30%~45%(图 1c)。

图 1.  一二代和三代 EGFR TKI 的最佳界值(a)使用新界值的 FISH 结果;(b)不同 TKI 的 ROC 曲线;(c)使用最佳界值的 NGS 表现

血浆进行相同程序调整后,一致率增加 10%~18%,敏感性增加 10%~20%(图 1c)。

  • 探索 MET 状态分布特征

绘制双向对比堆叠柱状图,以显示不同性别年龄患者的 MET 和 EGFR 共发生率。每个 EGFR 和 MET 突变共存似乎具有独特性(图 2a),没有明显趋势。对比不同临床特征患者的 MET 状态分布,显示 MET 状态均匀分布。之后探索哪些因素和 MET 阳性相关,结果显示 MET 和各代 TKI 统计学相关(图 2b,c)。

图 2. MET 状态分布探索(a)不同年龄性别 MET 和 EGFR 分布;(b)不同亚组 MET 状态分布;(c)MET 阳性和不同因素的相关性

02
研究讨论





MET 扩增是 EGFR TKI 的重要耐药机制


EGFR TKI 的耐药机制可分为靶内耐药、靶外耐药和组织学转化 3 大类。MET 扩增是 EGFR TKI 最常见的靶外耐药机制,一二代 EGFR TKI 耐药后发生率为 5%~22%,三代 EGFR TKI 耐药后发生率可达到 16%~30%[4,5]。靶向 MET 扩增来克服 EGFR TKI 耐药是多年来的研究热点,并已经具有丰硕临床成果。因此,EGFR TKI 耐药后及时进行检测发现 MET 扩增患者,并给予及时的针对性治疗对于改善患者预后至关重要。



NGS 或为 FISH 检测的良好替代


NGS 可同时检出多种基因异常,因而是替代 FISH 的潜在工具。研究对比了 NGS 和 FISH 在组织和血液标本中表现,显示组织检测时 NGS 和 FISH 具有良好一致性。特别是通过生物信息学方法优化了 NGS 结果,使用生物信息学方法校正细胞百分比,调整 MET CN 读数成为 GCN,发现 NGS 检测的最佳界值。这一方法的优势是极大增加了敏感性,发现了额外 13 个 MET 阳性患者。

研究还计算了三代 EGFR TKI 中 MET CN ≥ 10 和一二代 EGFR TKI 中 CN ≥ 5 的 FISH 阳性标准下 NGS 的表现。结果表明 FISH MET CN ≥ 10 界值时 NGS 表现更佳。因此,根据临床情况调整一二代和三代 EGFR TKI 治疗患者界值可能可带来更好的临床决策。

既往有研究探索了血浆为基础 NGS 进行突变检测的应用,显示血浆检测具有良好敏感性、特异性和准确性[7,8]。但是本研究中血浆 NGS 表现中等,可能是由于部分患者血浆中肿瘤细胞含量较低,导致 ctDNA 含量低,降低了检测准确性。因此在临床实践中,应谨慎处理血液标本。

03
小结



MET 扩增是 EGFR TKI 的重要耐药机制,这项较大规模的临床研究探索了 NGS 检测 MET 扩增的表现,提示 NGS 是检测组织 MET 扩增有潜力的替代方法。同时,也应继续不断优化 MET 检测方法,从而为患者治疗策略的制定提供参考。

✩ 本文仅供医疗卫生等专业人士参考

审批编号:CN-149136
过期日期:2025-03-06
声明:本材料由阿斯利康提供支持,仅供医疗卫生专业人士参考。

内容策划:方程
项目审核:李婷
题图来源:图虫创意

参考文献:

[1]Zheng Q, et al. NGS and FISH for MET amplification detection in EGFR TKI resistant non-small cell lung cancer (NSCLC) patients: A prospective, multicenter study in China. Lung Cancer. 2024:194:107897.

[2]Guo R, et al. MET-dependent solid tumours - molecular diagnosis and targeted therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2020;17(9):569-587.

[3]Westover D, et al. Mechanisms of acquired resistance to first- and second-generation EGFR tyrosine kinase inhibitors. Ann Oncol. 2018;29(suppl_1):i10-i19.

[4]Califano R, et al. Role of mesenchymal-epithelial transition amplification in resistance to anti-epidermal growth factor receptor agents. Ann Transl Med. 2015;3(6):81.

[5]Chmielecki J, et al. Candidate mechanisms of acquired resistance to first-line osimertinib in EGFR-mutated advanced non-small cell lung cancer. Nat Commun. 2023;14(1):1070.

[6]Hartmaier RJ, et al. Osimertinib + Savolitinib to Overcome Acquired MET-Mediated Resistance in Epidermal Growth Factor Receptor-Mutated, MET-Amplified Non-Small Cell Lung Cancer: TATTON[J]. Cancer Discov. 2023;13(1):98-113.

[7]Aggarwal C, et al. Clinical Implications of Plasma-Based Genotyping With the Delivery of Personalized Therapy in Metastatic Non-Small Cell Lung Cancer. JAMA Oncol. 2019;5(2):173-180.

[8]Su JW, et al. Plasma ddPCR for the detection of MET amplification in advanced NSCLC patients: a comparative real-world study. Ther Adv Med Oncol. 2024:16:17588359241229435.



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