•目的基因获取：可以通过从生物体的基因组中直接分离，比如从细胞中提取总DNA，利用特定的限制性内切酶切割后获得含有目的基因的片段；也可以通过化学合成的方法，根据已知的基因序列人工合成目的基因，这种方法适用于合成较小的基因片段；还可以利用反转录法，从生物体的mRNA反转录合成cDNA，从而获得目的基因。
•载体构建：选择合适的载体对于基因的转移和表达至关重要。常见的载体有质粒、病毒载体等。载体需要具备多个关键元件，如复制起始位点、多克隆位点、筛选标记基因等，以便能够携带目的基因进入宿主细胞并进行复制和表达。
•基因重组：将目的基因与载体通过连接酶进行连接，形成重组DNA分子。连接反应需要在一定的温度、缓冲液条件下进行，以确保目的基因与载体的正确连接。
•细胞系选择：根据生产的药物类型和需求选择合适的细胞系。例如，大肠杆菌常用于生产一些简单的蛋白质药物；哺乳动物细胞系如CHO细胞（中国仓鼠卵巢细胞）则常用于生产复杂的糖基化蛋白药物，因为它们能够进行更接近人体细胞的蛋白质修饰。
•培养基优化：培养基为细胞的生长和繁殖提供营养物质。需要根据细胞的需求优化培养基的成分，包括碳源（如葡萄糖）、氮源（如氨基酸、蛋白质水解物）、无机盐、维生素等。同时，还需要控制培养基的pH值、渗透压等参数，以满足细胞的生长要求。
•培养条件控制：包括温度、溶解氧、二氧化碳浓度等参数的控制。例如，哺乳动物细胞的培养温度一般在37℃左右，需要维持适宜的溶解氧浓度以保证细胞的正常呼吸，二氧化碳浓度的控制对于维持培养基的pH值稳定也非常重要。
•发酵罐设计与操作：发酵罐是细胞培养和产物发酵的关键设备。需要根据生产规模和工艺要求选择合适的发酵罐类型和规格，如搅拌式发酵罐、气升式发酵罐等。在发酵过程中，要控制搅拌速度、通气量、发酵时间等参数，以确保细胞的生长和产物的合成。
•过程监测与控制：利用在线监测设备实时监测发酵过程中的参数，如细胞密度、产物浓度、pH值、溶解氧等。通过反馈控制系统，根据监测结果自动调整发酵条件，以保证发酵过程的稳定性和产物的质量。
•离心分离：利用离心机产生的离心力，根据物质的密度差异将细胞、细胞碎片、沉淀物等与上清液分离。不同的离心速度和时间可以分离出不同的组分，常用于初步的分离和纯化。
•过滤分离：包括微滤、超滤、纳滤等。微滤主要用于去除细胞碎片、细菌等较大的颗粒；超滤可以根据分子大小分离蛋白质等生物大分子，去除小分子杂质和溶剂；纳滤则常用于分离和浓缩特定分子量范围的物质。
• 沉淀分离：通过加入沉淀剂，使目标产物从溶液中沉淀出来。常见的沉淀方法有盐析法，即在蛋白质溶液中加入高浓度的盐，使蛋白质的溶解度降低而沉淀；还有等电点沉淀法，利用蛋白质在等电点时溶解度最低的特性进行沉淀。
•凝胶过滤层析：也称为分子筛层析，根据分子大小进行分离。凝胶颗粒内部具有网状结构，分子大小不同的物质在层析柱中的移动速度不同，从而实现分离。
•离子交换层析：利用物质所带电荷的不同进行分离。层析柱中的离子交换剂带有可交换的离子，与溶液中的目标物质发生离子交换反应，通过改变洗脱液的离子强度和pH值，可以将目标物质洗脱下来。
• 亲和层析：基于生物分子之间的特异性相互作用进行分离，如抗原与抗体、酶与底物、受体与配体等。将与目标物质具有特异性结合能力的配体固定在层析柱上，当含有目标物质的溶液通过层析柱时，目标物质与配体结合而被吸附，其他杂质则被洗脱，然后通过改变条件将目标物质洗脱下来。
•膜分离技术：利用具有特殊选择性的膜，在压力、电场或温差等作用下，使某些物质能够透过膜，而其他物质则被截留，从而实现分离和纯化。例如，反渗透膜可以用于去除水中的盐分和其他小分子杂质，制备高纯度的水；超滤膜则常用于蛋白质的浓缩和脱盐。
• 色谱分析：如高效液相色谱（HPLC）、气相色谱（GC）等，用于分析和检测目标产物的纯度、含量、分子量等。HPLC是生物制药中常用的分析方法，可以对蛋白质、核酸等生物大分子进行分离和定量分析。
•电泳技术：如聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）、十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）等，用于分离和检测蛋白质的分子量、纯度等。SDS-PAGE可以根据蛋白质的分子量大小将其分离，是鉴定蛋白质纯度和分子量的常用方法。
• 光谱分析：如紫外-可见光谱、红外光谱、拉曼光谱等，用于分析物质的结构和成分。在生物制药中，可以利用光谱技术对蛋白质的结构、药物的纯度等进行分析和检测。
• 冻干技术：将含有药物的溶液在低温下冷冻，然后在真空条件下使冰直接升华，从而去除水分，得到干燥的药物制剂。冻干技术可以保持药物的稳定性，延长药物的保质期，常用于蛋白质药物、疫苗等的制剂生产。
• 无菌灌装技术：对于注射剂等无菌制剂，需要在无菌条件下进行灌装，以确保产品的无菌性和安全性。无菌灌装技术包括灌装设备的无菌设计、灌装环境的控制、灌装过程的验证等方面。
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