冰冻切片(Cryostat sectioning)

学术   2024-10-02 20:46   浙江  

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初稿:朱娴瑢(23级药学专业 硕士)、朱若彤(24级药学专业 硕士)
审核:兰馨馨(温州医科大学 博士后)
定稿:陶美元(23级药学学术 硕士)


简介

冰冻切片(Cryostat sectioning)是一种在低温条件下使组织快速冷却到一定硬度然后切片的组织学技术,以获得薄片用于显微镜观察。由于此法不需要经过脱水、透明和浸蜡等步骤,能够完好的保存多种抗原的免疫活性,尤其是细胞表面抗原,因此比较适合手术中快速病理、显示组织中的脂质、显示酶活性和免疫荧光等方面的研究,并作为快速切片的方法应用在临床诊断。这种方法通常用于病理学、组织学以及生物医学研究。主要有直接冰冻切片法、明胶冰冻切片法、冰冻切片粘片法及冰冻包埋液(OCT compound)包埋切片法。

 

原理

冰冻切片是将组织进行冰冻至坚硬后切片的特殊切片,其基本原理是利用低温环境将组织样本迅速冷冻。被冷冻时,组织中的水变成冰而使组织变得坚硬,使细胞和组织结构保持较好的形态和抗原性,其硬度可通过改变温度加以调节。降温会使组织块更加坚硬,反之,提高温度则可使组织变软。大多数非脂肪不固定组织切片时最好控制在在-20~-25 ºC。切割时使用专门的切片机(冰冻切片机),可以得到薄至几微米的切片。

 

特点

1.快速性:相较于常规的石蜡切片,冰冻切片能够在较短时间内完成,制片快速时间短。

2.保持活性:冰冻切片在一定程度上保持了组织内的抗原活性及酶的活性,适用于免疫组化实验。

3.无化学固定剂:由于不使用化学固定剂,可以避免对某些抗原的损伤。

4.步骤简单:相较于石蜡切片操作步骤简单。

 

步骤

(1)取材:用滤纸吸干新鲜组织自身的水或血液,所用器械保持干燥,取材时尽量避开出血坏死区域及脂肪区域;根据所取组织大小选择包埋盒,一般不宜过大;

2包埋:将样本放入冷冻机(如液氮冷冻或使用低温冷冻机)中,迅速冷冻。将包埋块放入冰冻切片机中30 min左右调节温度后即可切片,若不需要立即制片,则放入-80℃冰箱长期保存。(冰冻的温度与时间需要根据组织的种类、厚度和大小来调节);

(3)切片:将冷冻样本放入冰冻切片机调节温度后,调整切割厚度(一般为5~10 μm,应根据组织进行调整)。切片前先进行粗修,修至组织最大面后,调整刀片切割样本,收集切片;

4处理切片:将切片放置在载玻片上,可以进行染色或其他分析。

 

常见问题与建议

1.切片不均匀:检查刀片是否锋利,样本是否足够冷冻。

2.切片破损:调整切片机的参数,保持样本的完整性和稳定性。

3.抗原性下降:确保在冷冻前处理得当,并使用适合的冷冻保护剂。

4.染色效果差:注意染色时间和条件,使用适合冰冻切片的染色剂。

5.操作时尽量保持低温,避免样本回温。

6.定期维护切片机和刀片,确保切割质量。

7.熟悉各种抗原的特性,合理选择冷冻和染色方法。

8.冰冻切片的组织要尽可能新鲜,用滤纸吸取水、血等液体,动作要迅速。

9.取材大小要厚薄适中,在确保取到主要病变的前提下,尽量避开钙化、坏死、脂肪等。

10.冰冻切片机的温度和厚度要根据不同组织进行调节。

11.切片时速度不宜过快,否则易形成冰晶,破坏组织。

 

应用示例

1. 免疫荧光染色确认LC-MM在动脉粥样硬化斑块中的靶向积累及对VCAM-1的依赖性

构建巨噬细胞膜(MM)伪装活性氧(ROS)敏感纳米治疗平台(LC-MM),以提高动脉粥样硬化(AS)靶诊断和治疗效果。

静脉注射LC-MM 2 h后,分离整个主动脉进行离体成像。LC-MM组主动脉内荧光(FL)信号明显高于LC(由草酰氯OC与洛伐他汀LVTCDs进行酯化和酰胺化反应合成)组和碳基荧光纳米材料(碳点)CDs组。主动脉根部冰冻切片的免疫荧光染色分析进一步证实了血管细胞粘附蛋白1VCAM-1)对AS斑块中LC-MM靶积累的关键作用。斑块区域横切面免疫荧光图像证实LC-MM在斑块病变处具有明显的渗透和滞留,具有非常高的FL强度,证实了LC-MM在斑块中的目标积聚,促进了FL的精确成像。

<静脉注射LC-MM 2 h后,载脂蛋白E缺乏(ApoE−/−)小鼠主动脉根部冷冻后VCAM-1免疫荧光染色的CLSM图像>[1]

2. 在空间转录组学Spatial transcriptomics中定位基因表达于组织中的空间位置

使用低温恒温器从新鲜冷冻的组织中获得薄组织切片。将一个组织切片连接并固定在微阵列载玻片上的每个子阵列上,然后对组织进行固定、染色和成像,确定每个区域相对于空间斑点的形态和空间位置。组织被渗透,以促进RNA从细胞中释放,并使RNA与表面探针杂交。进行反转录,在载玻片上直接生成cDNA。这是随后的酶消化和去除组织切片。将探针/cDNA片段从表面释放,在试管中收集。cDNA被扩增并转化为完成的成对端文库。对文库进行测序和进一步处理,将表达的基因定位到它们在组织中的表达空间位置。

<空间转录组学的部分工作流程>[2]

 

3. 刚果红(CR)染色评估心肌活检样本中淀粉样蛋白沉积的相对量

使用从患者身上获得的新鲜冷冻心内膜心肌活检(EMB)。每个冷冻活检标本的直径约为1~2 mm,制备10 μm厚的低温恒温器切片并放置在载玻片上。将切片在碱性刚果红CR溶液(CR 3 g/LNaCl 3 g/L80% 乙醇、0.01% NaOH)中孵育15 min,用水冲洗,在 Mayer 血(Merck109249)中复染,用水冲洗,二甲苯脱水并封片。通过偏振光显微镜中的黄色到绿色双折射验证了CR阳性(红色)染色的特异性。随后使用Hamamatsu NanoZoomer S60全玻片扫描仪在常规明场照明下以60 倍放大倍率扫描样品,并使用 NDP.view2软件检查数字玻片确定淀粉样蛋白沉积量。通过目测估计心肌中 CR淀粉样蛋白沉积的相对量来对淀粉样蛋白沉积进行分级。

在明场显微镜下观察的CR染色切片(图A~D)。通过荧光显微镜和德克萨斯红滤光片(黄色)观察的CR染色切片(图E~H)。活检标本显示不同程度的淀粉样蛋白沉积(0=0%+=<5%++=5~20%+++=>20%

<刚果红染色后对新鲜冰冻EMB标本中淀粉样蛋白含量进行分级>[3]

4. 免疫组织化学分析蒺藜苜蓿(Medicago truncatula根组织中各个空间条形码体素的组织结构特征

蒺藜苜蓿组织快速冷冻以产生16 μm厚的冷冻切片,每个冷冻切片包含许多根横截面。冷冻切片固定到捕获区域,每个区域都配备了大约5000个分辨率为55 μm的空间条形码体素(图a)。明场组织图像和底层空间捕获体素的并排图像,捕获区域内单个根横截面的特写视图,突出了与组织相关的体素大小(图b

<捕获区域冰冻切片中蒺藜苜蓿根横截面的特写视图>[4]

5. 苏木精-伊红H&E染色鉴别基底细胞癌切片中表皮和真皮的组织特征

荧光寿命成像显微镜的相量方法用于H&E染色的基底细胞癌(BCC)切片中鉴别不同类型的组织。通过对H&E染色切片的荧光强度和荧光寿命进行分析,能够区分表皮和真皮的特征。τm分布的明显峰值:短τm峰(191.83± 7 ps)与表皮相关。长τm峰(363.63±4 ps)与真皮相关。

<H&E染色BCC切片的荧光寿命成像>[5]

总结

冰冻切片是一种组织学技术,通过快速冷冻组织样本并在低温下切割,以获得薄片用于显微镜观察。相较于常规的石蜡切片,这种方法制片快速操作简单,且在一定程度上保持了组织内的生物活性。通常用于病理学、组织学以及生物医学研究。

 

相关参考文献:

[1] Duan X, Yang X, Mou N, et al. Reactive Oxygen Species-Triggered Carbon Dots-Based Biomimetic Nanotheranostic Agents for Atherosclerosis Management[J]. Advanced Functional Materials, 2024, 2405629.

[2] Salmén F, Ståhl P L, Mollbrink A, et al. Barcoded solid-phase RNA capture for Spatial Transcriptomics profiling in mammalian tissue sections[J]. Nature Protocols, 2018, 13(11): 2501-2534.

[3] Noborn F, Thomsen C, Vorontsov E, et al. Subtyping of cardiac amyloidosis by mass spectrometry-based proteomics of endomyocardial biopsies[J]. Amyloid, 2023, 30(1): 96-108.

[4] Serrano K, Bezrutczyk M, Goudeau D, et al. Spatial co-transcriptomics reveals discrete stages of the arbuscular mycorrhizal symbiosis[J]. NatPlants, 2024, 10(4): 673-688.

[5] Luo T, Lu Y, Liu S, et al. Enhanced Visualization of Hematoxylin and Eosin Stained Pathological Characteristics by Phasor Approach[J]. Analytical Chemistry, 2017, 89(17): 9224-9231.

 


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