色氨酸合酶催化多种非经典氨基酸的合成，是定向进化的有吸引力的靶标。液滴微流体提供了一种超高通量的定向进化方法，能够在序列空间的更广泛区域搜索生物催化剂，并将试剂消耗量降至皮升体积，本篇文章色氨酸合酶需要一种新的检测方法。色氨酸在可见光谱中不发荧光，因此不属于传统液滴微流体读数的范围，后者与高通量的紫外光检测不兼容。在这里，我们将色氨酸DNA适体设计到传感器中，以定量报告液滴中色氨酸的产生。
从现有的L-色氨酸（Trp） DNA适体中开发了一种适配体传感器，用于色氨酸合酶β-亚基的超高通量进化（uHTS）进化,简称TrpB。它浓缩L-丝氨酸（Ser）和吲哚以产生Trp。
首先，表达TrpB的细胞与适配体传感器和裂解试剂进行封装在单个液滴中，接下来裂解试剂将细胞裂解，释放TrpB，同时催化底物形成最终产物Trp，在产物存在时，适配体传感器就会荧光激活。而后再次将其封装在液滴中，与荧光激活细胞流式进行分选，最后回收高催化活性的变体(图1)。
随后，实验研究了最优互补链的长度，通过图2可以看出，互补9 nt时，荧光降低一半，表明有50%的适配体并没有结合，对于互补15 nt，它的结构过于紧密，并不能破坏其二级结构，所以通过荧光信号变化量得出互补10 nt时效果最好。
随后对特异性和其TrpB纯化后的变体进行实验验证，发现其可以对同类型的氨基酸识别，而对于三种突变体分别在微孔和液滴中进行对于K82A突变体，他自身突变为丙氨酸，所以荧光降低，通过图3也能观察到7E6突变体相比于另外两种荧光值更高。
最后通过2步筛选，第一步通过微滴板进行筛选，目的是为了去除活性低的突变体。第二步是通过流式进行分选，选择最终的突变体A9，它比野生型的催化效率高2.5倍。
