重磅！Aura Scientific®推出ProtoTest®膳食补充剂原料，含 50%的原薯蓣皂苷!

当新兴的新型补充剂成分开发商Aura Scientific出现时，每个人都对他们的前四种成分感到兴奋，其中包括一种名为NeuroRush的新型咖啡果提取物和一种名为EndoFlo的泵成分，可以在Magnum Nutraceuticals Limitless X16锻炼前补充剂等产品中找到。

但在幕后，Aura 的荷尔蒙和活力支持成分实际上最受关注。这并不奇怪，因为“天然睾酮增强剂”类别已经相当陈旧，需要进行改革。

在研究了这种成分后，我们认为 Aura Scientific 的ProtoTest能够带来改变，它是一种标准化的薯蓣提取物，其中原薯蓣皂苷含量为50%。

故事其实始于蒺藜，这是一种让人感觉良好的成分，以增强性欲而闻名，但在激素优化方面，研究结果并不可靠。

尽管研究结果不一致，但某些形式的蒺藜显然具有生物学意义——可以感觉到。然而，研究并不总是成功。

蒺藜有时被称为刺蒺藜，几个世纪以来，因其增强活力和男子气概的功效而在世界各地的传统医学体系中备受推崇。[1]它是一种流行的天然补剂，据称可以增强性能力，改善男性整体生殖健康，有时还能提高睾丸激素水平。

然而，对蒺藜的科学研究得出的结果并不一致。[2]虽然一些研究（尤其是对动物进行的研究）显示出令人鼓舞的结果，但其对人类的应用却不那么明确。这导致科学界和消费者之间持续存在争论和怀疑。

但是那些有效的研究结果如何呢？为什么蒺藜对性欲和活力如此有益？有人能找到真正有效的方法，并从更好的来源获得它吗？！

如果您回顾一下蒺藜研究，您会注意到现有研究中有一个特别引人注目的不受控制的变量，这个变量就是所用提取物中的原薯蓣皂苷含量。

原薯蓣皂苷是一种甾体皂苷，天然存在于蒺藜和日本薯蓣等植物中，许多研究人员认为它是蒺藜影响性功能的主要生物活性成分。 [3]

人们认为它可以通过充当DHEA （脱氢表雄酮）前体来影响性功能，[4]而 DHEA 又可以转化为睾酮和其他雄激素。

在审查了相关研究后，Aura Scientific 原本想将原薯蓣皂苷作为研究目标，但后来明智地决定彻底解决蒺藜问题 — — ProtoTest 是从日本薯蓣根中提取的，而日本薯蓣根是该成分更可靠的来源！[6-12]

大量研究表明，穿山龙具有抗炎、抗肿瘤、抗利尿、镇痛、镇咳和祛痰的功效[13]，而且研究显示它能改善血脂[14]和促进运动后恢复[15] ，但 Aura 真正提取它是因为它含有原薯蓣皂苷。

然而，要了解原薯蓣皂苷对活力、性欲、脱氢表雄酮 (DHEA) 和其他激素的影响，我们需要回顾一下原薯蓣皂苷含量丰富的蒺藜提取物：

蒺藜的动物研究更一致地证明了其对性功能和激素水平的积极影响。在对大鼠和灵长类动物的研究中，含有高含量原薯蓣皂苷的蒺藜提取物已被证明可以显著提高雄激素水平、改善精子质量并增强性行为。我们认为，这是因为这些研究通常使用高原薯蓣皂苷提取物。

在一项值得注意的研究中，雄性大鼠在接受高原薯蓣皂苷提取物（重量百分比为 45% 的原薯蓣皂苷 -远远超出了典型的市售提取物）治疗后，睾酮、促黄体激素 (LH) 和双氢睾酮 (DHT) 水平有所提高，性欲和性能力也有所提高。[16]

在灵长类动物研究中也观察到了类似的结果，其中高原薯蓣皂苷提取物的施用导致睾酮和 DHT 显著增加，以及性功能得到改善。[4]

这些发现表明，原薯蓣皂苷确实是蒺藜具有性健康益处的关键成分。

原薯蓣皂苷在人体研究中的矛盾之处在于，虽然它似乎是释放蒺藜全部潜力的关键，但其在所用提取物中的含量通常太低或不一致，无法产生显著影响。

显示蒺藜补充剂有积极作用的人体研究通常使用原薯蓣皂苷含量较高的提取物。

例如，一项针对患有勃起功能障碍 (ED) 的男性进行的研究发现，标准化含有45% 原薯蓣皂苷的蒺藜提取物可显著改善性功能并提高脱氢表雄酮 (DHEA)水平。[17]

原薯蓣皂苷分子。ProtoTest 含有 50% 的原薯蓣皂苷，其结构分析如下

原薯蓣皂苷的作用机制被认为是它刺激人体自然产生脱氢表雄酮 (DHEA)，脱氢表雄酮是一种激素，是睾酮和其他雄激素的前体。[17-19]脱氢表雄酮可以进一步代谢为睾酮和二氢睾酮 (DHT)，[17,19,20]这两种激素在男性性功能中发挥着至关重要的作用，影响从性欲和勃起功能到精子生成和整体生殖健康等各个方面。

除了影响激素水平外，原薯蓣皂苷还被证实对生殖系统有直接影响。动物研究表明，原薯蓣皂苷可以增加睾丸间质细胞的密度，而睾丸间质细胞负责在睾丸中产生睾酮。

它似乎还能增强这些细胞对促黄体激素 (LH) 的敏感性，从而进一步促进睾酮的产生。[17,19,20]

此外，原薯蓣皂苷已被证实能提高精子质量和活力，而精子质量和活力是男性生育能力的关键因素。通过增加睾丸塞托利细胞中雄激素结合蛋白 (ABP) 的产生，原薯蓣皂苷有助于确保睾酮被输送到最需要的部位，例如产生精子的曲细精管。[17,19,20]

这些作用机制表明，原薯蓣皂苷是释放蒺藜作为男性性健康补充剂全部潜力的关键。然而，蒺藜提取物中原薯蓣皂苷含量的不一致使得这种潜力难以在人体研究和消费者应用中实现，因此下一代产品：使用日本薯蓣。

之前含有45%原薯蓣皂苷的补充剂表现出了一些令人极其的最终效果，从我们的经验来看，ProtoTest 产生了类似的效果。[21]

薯蓣皂苷是一种大分子，但如果你观察它的内部，你会发现它的核心类似于类固醇核心，即由四个相互连接的碳环组成的结构。

这种核心在所有类固醇激素中都很常见，包括睾酮和脱氢表雄酮。睾酮的结构基于相同的类固醇核心（环戊烷多氢菲环系统），所有类固醇激素都共享该核心。

薯蓣皂苷原具有与脱氢表雄酮和睾酮相同的类固醇核心（环戊烷全氢菲环系统），但附着有复杂的糖分子（糖苷），使其更易溶于水。它通过酶促反应转化为脱氢表雄酮，脱氢表雄酮再转化为睾酮。

薯蓣皂苷的核心上附着有额外的复合糖分子（糖苷）。这些糖苷位于分子的“左侧”和“右侧”，睾酮或脱氢表雄酮中不存在这些糖苷。这些侧链使薯蓣皂苷更易溶于水，并影响其生物活性。

当然，睾酮的侧链更简单，主要是第 17 个碳原子上的羟基和第 3 个碳原子上的酮。这些更简单的结构使睾酮更具亲脂性（脂溶性），这对于其作为激素的作用至关重要。

但就补充而言，像原薯蓣皂苷这样的植物类固醇是卓越的前体，这就是我们今天在这里探索它的原因。

当时，上述研究中使用的高原薯蓣皂苷提取物成本过高，无法大规模生产用于消费补充剂。市场不断面临廉价、无效的蒺藜。请记住，“高皂苷含量”并不一定意味着高原薯蓣皂苷含量。

Aura Scientific 的方法是绕道而行——选择更容易提取的穿山龙，同时避免消费者在看到“睾酮增强剂”标签上的蒺藜后翻白眼。

毋庸置疑，人们显然需要一种标准化的成分，以提供一致且有效的薯蓣皂苷剂量。为了满足这一尚未满足的市场需求，Aura Scientific 开发了ProtoTest。

ProtoTest 是一种新型的 Dioscorea nipponica 提取物，其标准化含量为50% 的原薯蓣皂苷，使其比市场上的任何蒺藜都更有效、更稳定。通过确保原薯蓣皂苷含量高且均匀，ProtoTest 解决了困扰先前研究和消费产品的关键问题。

有了 ProtoTest，消费者可以确信他们收到的产品能够提供我们曾经希望的蒺藜的全部益处，而不会出现历史上困扰该类别产品的多变性和不一致性。

这是一项使用原薯蓣皂苷的研究，我们希望在某个时候使用 ProtoTest[21] 来重复这一研究。

这种高水平的标准化也使 ProtoTest 成为未来人类研究的理想候选，在这些研究中，一致的原薯蓣皂苷剂量对于获得有意义且可重复的结果至关重要。

通过提供这种一致性，ProtoTest 可以帮助解决以前人类研究中观察到的差异，并为使用原薯蓣皂苷来增强男性性健康制定明确的、基于证据的指导方针。

ProtoTest 并不是第一个高原薯蓣皂苷含量的提取物。几十年前，市场上有两种名为Libilov和Tribestan 的成分，它们在商业和研究方面都取得了成功。

这两种成分都含有原薯蓣皂苷（Tribestan 中至少含有 45%），但由于上述蒺藜的不一致性，它们无法可靠地在市场上销售。

虽然这些成分已不复存在，但它们的主页和研究页面仍在网络档案中，并提供更多信息。[22-25]

他们的研究确实表明，这些提取物能够显著提高睾酮水平[21]和性能力。[17] Tribestan 在灵长类动物研究中也被提及，可以提高血清睾酮水平。[4]

这两种成分虽然很有趣，但却受到蒺藜供应链问题（通过改用日本薯蓣得到解决）和科学界缺乏现代化的影响——Aura Scientific 承诺将解决这个问题，通过同行评审和期刊发表的研究，其范围远远超出了您在上面引用的档案页面上看到的内容。

ProtoTest 标志着激素优化补充剂类别的重大进步，这一进步早就应该实现了。我们一直在等待真正可以感受到的东西，而 ProtoTest 正是如此。

通过提供含有 50% 原薯蓣皂苷的标准化提取物，品牌配方师和消费者终于可以获得几十年前我们都希望蒺藜能够提供的益处。

想象一下这些可能性：考虑将这种成分添加到“男士综合维生素”中，让您活力十足，或者将其添加到天然睾酮增强剂中，并添加临床支持的成分，这样您就可以感受到它并得到可靠的证明。或者，将其添加到一些合成代谢肌肉增强产品中，以获得活力的同时获得收益。

可能性是无穷无尽的，但在消费者需要体验式成分的市场中，ProtoTest 将在每个类别中名列前茅。

1. Chhatre, Saurabh et al. “Phytopharmacological overview of Tribulus terrestris.” Pharmacognosy reviews vol. 8,15 (2014): 45-51. doi:10.4103/0973-7847.125530. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3931200/

2. Ștefănescu, Ruxandra, et al. “A Comprehensive Review of the Phytochemical, Pharmacological, and Toxicological Properties of Tribulus Terrestris L.” Biomolecules, vol. 10, no. 5, 12 May 2020, p. 752, doi:10.3390/biom10050752. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC7277861/

3. Petropoulos, S.A., et al. “Edible Halophytes of the Mediterranean Basin: Potential Candidates for Novel Food Products.” Trends in Food Science & Technology, vol. 74, Apr. 2018, pp. 69–84. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0924224417308178

4. Adaikan, P. G., et al. “History of Herbal Medicines with an Insight on the Pharmacological Properties Of Tribulus Terrestris.” The Aging Male, vol. 4, no. 3, Jan. 2001, pp. 163–169, https://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/tam.4.3.163.169

5. Dinchev, Dragomir, et al. “Distribution of Steroidal Saponins in Tribulus Terrestris from Different Geographical Regions.” Phytochemistry, vol. 69, no. 1, Jan. 2008, pp. 176–186, doi:10.1016/j.phytochem.2007.07.003; https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0031942207004657

6. Tang, Yiqun, et al. “Quantitative Comparison of Multiple Components in Dioscorea Nipponica and D. Panthaica by Ultra-High Performance Liquid Chromatography Coupled with Quadrupole Time-of-Flight Mass Spectrometry.” Phytochemical Analysis, vol. 24, no. 4, 19 Mar. 2013, pp. 413–422, doi:10.1002/pca.2428. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23508854/

7. Liu, Tingqiang, et al. “Preparation of Progenin III from Total Steroidal Saponins of Dioscorea Nipponica Makino Using a Crude Enzyme from Aspergillus Oryzae Strain.” Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, vol. 40, no. 5, 1 May 2013, pp. 427–436, doi:10.1007/s10295-013-1246-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23471779/

8. Lin, Shuhai, et al. “Characterization of Steroidal Saponins in Crude Extract from Dioscorea Nipponica Makino by Liquid Chromatography Tandem Multi-Stage Mass Spectrometry.” Analytica Chimica Acta, vol. 599, no. 1, 1 Sept. 2007, pp. 98–106, doi:10.1016/j.aca.2007.07.070. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17765069/

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12. Feng, Bing, et al. “The microbiological transformation of steroidal saponins by Curvularia lunata”. Tetrahedron, Volume 61, Issue 49, 5 December 2005, Pages 11758-11763. doi:10.1016/j.tet.2005.08.115. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0040402005015140

13. Ou-yang, Si-hong, et al. “Dioscorea Nipponica Makino: A Systematic Review on Its Ethnobotany, Phytochemical and Pharmacological Profiles.” Chemistry Central Journal, vol. 12, no. 1, 11 May 2018, doi:10.1186/s13065-018-0423-4. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5945570/

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16. Gauthaman, Kalamegam, et al. “Sexual Effects of Puncturevine (Tribulus Terrestris) Extract (Protodioscin): An Evaluation Using a Rat Model.” The Journal of Alternative and Complementary Medicine, vol. 9, no. 2, Apr. 2003, pp. 257–265, doi:10.1089/10755530360623374; https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12804079/

17. Adimoelja, A., and P. Adaikan. “Protodioscin from Herbal Plant Tribulus Terrestris L Improves the Male Sexual Functions, Probably via DHEA.” Semantic Scholar, 1997; https://www.semanticscholar.org/paper/Protodioscin-from-herbal-plant-Tribulus-terrestris-Adimoelja-Adaikan/1355db896a86c6cff7b69e057b48bd5cea96f241 (full-text PDF, archive)

18. El-Sakka, Ahmed I. “Dehydroepiandrosterone and Erectile Function: A Review.” The World Journal of Men’s Health, vol. 36, no. 3, 2018, p. 183, doi:10.5534/wjmh.180005; https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6119841/

19. Gauthaman, Kalamegam, and Adaikan P Ganesan. “The Hormonal Effects of Tribulus Terrestris and Its Role in the Management of Male Erectile Dysfunction–an Evaluation Using Primates, Rabbit and Rat.” Phytomedicine : International Journal of Phytotherapy and Phytopharmacology, vol. 15, no. 1-2, 2008, pp. 44–54, www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18068966/

20. Chorosho, Saziini H., et al. “Phytochemicals: Alternative for Infertility Treatment and Associated Conditions.” Oxidative Medicine and Cellular Longevity, vol. 2023, 11 May 2023, p. 1327562, doi:10.1155/2023/1327562; https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC10195183/

21. Arsyad K. M. “Effect of protodioscin on the quantity and quality of sperms from males with moderate idiopathic oligozoospermia”. Medical Biology Division of Andrology, University of Sriwijaya, Indonesia. Medika 22 (8): 614-618 (1996a). (archive PDF, archive PDF 2, Libilov Archive)

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23. ‌Nutrica (Libilov). “Tribulus terrestris and Protodioscin Clinical Studies”. Libilov.com. Archived 17 Mar. 2016; https://web.archive.org/web/20160317055919/http://www.libilov.com/en/clinical_studies/tribulus_clinical_summaries_1.htm

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25. “Tribestan Clinical Studies”. Archived 01 May. 2018. https://web.archive.org/web/20080501164245/http://www.tribestan.com/tribestan-clinical-studies.phtml