乐斯福诺斯推出LANDKIND®红景天苷，可通过干扰HSP90活性促进人类健康长寿！

红景天（rosea 或crenulata）因其对能量水平、情绪和精神表现的影响而闻名，数百年来一直是一种用于天然产品的植物，其中红景天苷是红景天中研究最多的生物活性成分，在其功效中发挥着重要作用。

由于需求不断增加，红景天物种受到过度采伐的威胁，并被列入 CITES（濒危野生动植物种国际贸易公约）濒危物种名单，以确保其可持续采伐和贸易。

乐斯福诺斯创新的发酵工艺无需采伐濒危红景天物种，仅生产纯红景天苷。LANDKIND ®纯红景天苷通过发酵制成，提供可持续且方便的优质红景天来源，且纯度始终如一，为营养保健品和运动营养补充剂的创新配方提供了空间，同时符合 CITES 标准。

虽然已从红景天属植物的根中分离出超过 140 种化合物，但有 8 种活性化合物有助于区分各个物种：

总罗塞维（rosavin、rosin、rosarin），一组肉桂醇苷(CA)[5] 

红景天苷，有时称为红景天苷[5] 多种酚类成分（酪醇、儿茶素、没食子酸）[5] 

草质素苷，一种黄酮类化合物[5]

在主要成分中，玫瑰维和红景天苷是核心生物活性化合物。玫瑰红素是红景天区别所在，而红景天苷含量则是红景天的区别所在。

尽管红景天苷存在于所有红景天植物中，但玫瑰维素是红景天所独有的。[1,5]

在红景天的天然样品中，这两种化合物通常以 3:1 的比例存在——三份松香素和一份红景天苷。[5] 

这种共存对于红景天的潜力至关重要，[6]但科学开始依赖红景天苷作为关键驱动力。

在孤立的研究中，红景天苷本身具有多种益处，[7]但单独使用时，总罗塞维未能产生任何决定性的优势。[7]然而，这两种化合物 一起被证明非常有效。[6]

研究发现，两种生物活性物质的天然比例可以非常有效地刺激大脑，[6]但红景天苷似乎推动了最成功的研究，这一事实促使科学家们更深入地研究其方向。

在 2018 年发表在《药理学前沿》上的一项研究中，一组研究人员评估了各种红景天提取物在记忆突触模型中的功效。获得并研究了七种不同的红景天提取物，每种提取物都含有不同浓度的松香素和红景天苷。

LTP 的工作原理。由 Amazon ClassConnection 提供

所有变体都在小鼠海马体中测试了突触传递的长期增强（LTP）。科学家们分析了单次刺激和突发刺激的影响，然后测量了锥体细胞活动的群体峰值。这种刺激表明 LTP，与记忆和认知的改善有关。[7]

通过简单地比较红景天苷和罗塞文，研究小组发现红景天苷在较低浓度下更有效，而罗塞文在较高浓度下更有效。

虽然这表明任何一种成分本身都可以产生一些效果，但测试七种红景天提取物使他们能够将最初的发现更进一步，回答了这个问题：“这两种生物活性物质的哪种平衡更好？”

通过比较 5 mg/L 剂量的提取物，研究作者发现同时含有红景天苷和络塞维的红景天提取物的性能优于竞争对手。[7]不仅如此，他们还发现两种生物活性物质浓度最高（各约 3%）的提取物对细胞的刺激最大。[7]

虽然这个比例比通常使用的 3:1 更平衡，但它强调了一个重要的一点——3:1 的玫瑰香素与红景天苷的比例才是效益开始显现的地方。

然而，为了获得更高的功效，有必要使用具有更多生物活性的提取物，特别是红景天苷，并且此类提取物现已上市。

刺激锥体细胞活动可导致 LTP，这被认为是记忆和学习根源的主要细胞机制。[7]

这种关系强调了红景天补充剂的目标——认知——但没有讨论该草药进入体内后发挥作用的主要方式。红景天作为一种适应原，对抗体内的化学和生物应激源。该药物专门针对中枢神经系统 (CNS)中的压力源。

红景天有许多潜在的好处，其中大部分是由其红景天苷含量驱动的。我们很快就会讲到它们，但为了讨论它的用途，我们首先需要了解红景天苷的基本机制。

红景天苷通过SGLT1 转运蛋白被肠道吸收后[8]影响体内的各种代谢途径和酶。 

真正的适应原：纠正 mTOR 通路 哺乳动物雷帕霉素靶标 (mTOR)是运动补充剂领域经常讨论的话题。

它是一种蛋白激酶，可调节许多细胞功能，包括细胞增殖和细胞代谢。较高水平的 mTOR 往往与较高程度的细胞生长和存活相关。[9]

这种效应在构建肌肉时特别有用，因为 mTOR 在调节骨骼肌的构建、修复和维护方面发挥着重要作用。[10] 然而，与大多数事情一样，需要取得平衡。mTOR 活性过多并不一定是件好事，这取决于它帮助增殖的细胞类型。

“mTOR 信号转导概览”，图片由《细胞科学》提供

研究表明，mTOR 通路在细胞生长过程中受到刺激。这是一个棘手的话题，因为一些研究人员认为 mTOR 与癌症、神经退行性疾病和糖尿病等疾病有关。[11]

它不支持“好”或“坏”，而是支持细胞生长或凋亡。它所处的光线取决于当前的问题。如果您想促进肌肉生长，激活 mTOR 是值得努力的事情。

但如果您担心肿瘤生长或认知疾病恶化，那么减弱 mTOR 活性应该是重点。

这种“情况依赖性”完美地概括了红景天苷如何影响 mTOR 通路，并且准确地体现了我们谈论适应原时的含义。

研究表明，红景天苷可刺激 5' 单磷酸腺苷激活蛋白激酶 (AMPK)，有效抑制失控的 mTOR 活性。[12]

在测试膀胱癌和结直肠癌的模型中，这种效应导致癌细胞凋亡。[13]通过纠正促进细胞生长的引擎，红景天苷促进了有害细胞的死亡。另外，这种化合物也可以扭转局面。

2013年，中国兰州大学公共卫生学院发表的一项研究发现，红景天苷能够刺激mTOR活性，促进骨髓间充质干细胞向神经细胞分化。[14] 

2014年，福建中医药大学的一组研究人员发现红景天苷可以保护神经细胞免受活性氧（ROS）引起的损伤，从而进一步证明了积极增殖的证据。[15]这两项发现都表明该化合物具有神经保护剂的功能，主要是通过激活mTOR。

红景天苷明显影响 mTOR 通路，且影响方式似乎与环境相关。研究表明，它会激活健康细胞的 mTOR，同时抑制危险细胞的 mTOR。[6]这正是它被归类为“适应原”的原因——它帮助我们适应各种情况，根据需要“向上”和“向下”。

2023 年发表的新研究表明，红景天苷具有大刺激区的毒效作用。[16]毒物兴奋效应是指小剂量有益而大剂量则效果较差的情况。[17]

我们题为“新红景天苷研究：神经保护性毒物兴奋与肠道健康”的文章对此进行了更详细的介绍，但它提供了额外的证据表明红景天确实具有适应性。下面我们就来具体了解一下红景天苷的研究。

缺氧诱导因子 -1 (HIF-1)是身体对缺氧条件（当身体缺氧时）做出反应的关键调节因子。它是一种有助于激活众多调节氧气输送和代谢功能的转录因子的基因。[18]

缺氧是危险的，可能导致长期的健康损害。缺氧会导致脑损伤、心脏骤停和许多其他危及生命的情况。[19]然而，与 mTOR 类似，HIF-1 有两种作用——它也有助于癌细胞增殖。[20]

红景天苷还具有促进 HIF-1 积累的能力，有助于防止缺氧引起的细胞损伤。

香港科技大学 2012 年的一项研究发现，红景天苷可刺激肝细胞和肾细胞中 HIF-1 的积累，研究小组声称，红景天成分具有抗缺氧功效，通常摄入红景天会产生这种功效。[21] 

2017年，重庆大学研究人员发现红景天苷不仅能增加HIF-1，还能促进新生血管形成。这一过程形成新的血细胞，促进血液灌注，运输含氧血液，以对抗缺氧状态，例如缺氧和缺血。[22]

• 三种儿茶酚胺——多巴胺、去甲肾上腺素和肾上腺素——调节情绪以及身体的“战斗或逃跑”反应以及所有相关机制。[23]

• 组胺在人体的过敏和炎症反应中起着重要作用。[24]

• 血清素是情绪、情绪、运动技能和其他生物过程的关键调节剂。[25]

“去甲肾上腺素是由蓝斑神经元中的多巴胺β-羟化酶从多巴胺合成的。在最终的 β-氧化之前，去甲肾上腺素通过囊泡单胺转运蛋白转运到突触囊泡中。然后，囊泡沿着包含去甲肾上腺素能束的轴突运输至释放位点。在突触处，去甲肾上腺素被释放到突触间隙，在那里它与各种突触前和突触后肾上腺素能受体结合，随后激活不同的 G 蛋白偶联信号级联。”

一旦神经递质激活信号，就会发生以下两种情况之一：信号要么被释放信号的神经元收回，要么被降解。多种酶催化降解反应，但最常见的两种是单胺氧化酶 (MAO)和儿茶酚-O-甲基转移酶 (COMT)。[26]

 MAO有两种底物，MAOA和MAOB。前者通常处理肠道和肝脏中的信号，而后者则在大脑中运作。[27]尽管这些酶在神经递质的生命周期中确实占有一席之地，但过度的活性可能会产生问题。

红景天苷剂量依赖性地增加神经肽表达[38]

适应原是可以改善身体对压力的反应的物质，其中红景天是最有效的类型之一。在英国萨里大学研究人员 2015 年的一项研究中，八名患有轻度焦虑和自我报告压力的受试者自愿测试这种草药的效果。

受试者被分为两组——一组每天两次服用 200 毫克红景天，另一组则服用安慰剂。治疗进行了 14 天，以自我报告的情绪和认知评分作为成功的衡量标准。科学家发现，服用红景天的参与者的焦虑、压力、愤怒、困惑和抑郁显着减少，并报告说，在测试期结束时，他们感觉情绪总体改善。[43]

另一项研究发表在2012 年《植物疗法研究》上，在一项开放标签试验中，向 101 名受试者施用了标准化的红景天提取物。提取物的剂量为 200 毫克，每天两次，持续四个星期。

治疗结束时，研究小组使用多项测试和问卷评估分数。受试者不仅报告了有关压力症状的所有方面的改善，[42]而且研究人员报告说提取物在初次治疗后三天内有效。[42]

因为它是一种单胺氧化酶抑制剂，研究支持使用红景天提取物来减轻抑郁症状。前面提到的日内瓦大学研究人员的研究（发现红景天治疗后 MAO 活性受到 80% 至 90% 的抑制）直接引用了潜在的抗抑郁应用。[32] 

大约两年前， 2007 年《北欧精神病学杂志》发表的一项研究就提出了这种潜力。在这项双盲、安慰剂对照研究中，研究人员评估了每日剂量 340 毫克或 680 毫克标准化红景天提取物的效果。患有抑郁症的人。

42 天后比较贝克抑郁量表 (BDI) 和汉密尔顿抑郁量表 (HAMD) 的分数变化，其中分数越高表明症状恶化。他们发现两组的HAMD 评分均下降了 65% 至 70%，其中较高剂量组的BDI评分下降幅度略大于 340mg 组。[47]总体而言，与安慰剂相比，补充红景天的志愿者的病情有显着改善。[47]

红景天显著降低抑郁评分[47]

我们都曾与疲劳作过斗争，无论是结束一天漫长的工作、艰苦的训练之后，还是应对压力大的情况。然而，在应对慢性压力和抑郁时，疲劳可能会升级，不仅仅是一个间接问题——因为昏昏欲睡的感觉和倾向变得越来越难以应对。[49]

尽管与疲劳相关的问题并不总是共存，但研究表明它们密切相关，并且如果您正在处理其中一个问题，则可能会增加与其他问题发生问题的可能性。[50] 

100毫克，20天

正如针对红景天补充剂的研究表明的那样，这种相互关系也适用于潜在的治疗方法。2000 年 4 月，俄罗斯伏尔加格勒医学院的研究人员发表了一项研究，分析了标准化红景天提取物对大学生在紧张的考试期间的影响。

以双盲、安慰剂对照、重复低剂量的方式进行，学生每天服用 100 毫克提取物，持续 20 天。研究人员发现，各种疲劳指标——认知、思维清晰度、身体健康，以及最重要的是总体幸福感——都有显着改善。[51]

• 增加海马突触传递的长时程增强[5]
• 纠正哺乳动物雷帕霉素 (mTOR) 通路[6]
• 调节缺氧诱导因子 -1 (HIF-1) [7]
• 影响神经递质（多巴胺、去甲肾上腺素、肾上腺素、组胺和血清素）的释放和摄取[1]
• 抑制单胺氧化酶 (MOA) [8]
• 增加神经肽 Y 活性[9]
• 改善肠道微生物群，对抗肥胖[10]
• 它还被证明具有大刺激区的毒物兴奋效应。 [11]

• 改善记忆、学习和认知[5]

• 减轻压力和焦虑[12]

• 提升整体情绪[12]

• 减少抑郁症状[13]

• 对抗身心疲劳[14,15]

• 提高运动表现[16]

• 调节食欲[17]

• 改善血糖水平[18]

• 器官保护——通过减少有害氧化剂和防止缺氧，[65]这种草药已被证明可以有效保护心脏和肝脏。[66,67]

• 减少雌激素——美国癌症研究协会的一项研究发现，在小鼠体内，红景天能有效抑制雌激素的结合，甚至会增加卵巢切除小鼠体内的雌二醇水平。[68]

• 癌症的补充治疗——我们不会深入探讨这一点，但研究人员发现红景天可能具有抗癌特性。[69,70]这些研究绝大多数是在体外进行的，但科学界的研究仍在进行中。

红景天通常表现出非常有限的副作用以及与药物和其他成分的相互作用，[1]这表明它通常可以安全使用。

1985 年的研究表明，3360 毫克/千克体重的剂量对小鼠有潜在毒性。[71]推断到人类身上，这相当于超过 20,000 毫克，具体取决于体重。建议每日剂量为 200 至 600 毫克，[1,71]达到这么高的剂量是极不可能的。

为了充分发挥红景天的功效，建议每天服用100毫克以上。[1,19]

研究表明，补充红景天非常安全，并且很少有不良反应的报道。[1,19]

由于红景天的许多益处都归功于其红景天苷含量，因此找到一种标准化的高质量提取物以含有一定量的这种生物活性化合物非常重要。这就是SalidroPure™发挥作用的地方！

根据研究文献，为了从红景天中获得最大益处，您应该尝试找到红景天苷含量最高的提取物。

参考文献：

1. Panossian, A et al. “Rosenroot (Rhodiola rosea): traditional use, chemical composition, pharmacology and clinical efficacy.” Phytomedicine : international journal of phytotherapy and phytopharmacology vol. 17,7. (2010): 481-93. doi:10.1016/j.phymed.2010.02.002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20378318/
2. Jafari, Mahtab et al. “Rhodiola: a promising anti-aging Chinese herb.” Rejuvenation research vol. 10,4 (2007): 587-602. doi:10.1089/rej.2007.0560. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17990971/
3. Khaidaev Z, Menshikova TA. Medicinal plants in Mongolian medicine. Ulan-Bator, Mongolia; 1978.
4. Saratikov SA, Krasnov EA. Rhodiola rosea is a valuable medicinal plant (Golden Root) Tomsk State University Press, Tomsk, Russia; 1987.
5. Grech-Baran, Marta et al. “Biotechnological approaches to enhance salidroside, rosin and its derivatives production in selected Rhodiola spp. in vitro cultures.” Phytochemistry reviews : proceedings of the Phytochemical Society of Europe vol. 14,4 (2015): 657-674. doi:10.1007/s11101-014-9368-y. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4513219/
6. Li, Yonghong et al. “Rhodiola rosea L.: an herb with anti-stress, anti-aging, and immunostimulating properties for cancer chemoprevention.” Current pharmacology reports vol. 3,6 (2017): 384-395. doi:10.1007/s40495-017-0106-1. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6208354/
7. Dimpfel, Wilfried et al. “Assessing the Quality and Potential Efficacy of Commercial Extracts of Rhodiola rosea L. by Analyzing the Salidroside and Rosavin Content and the Electrophysiological Activity in Hippocampal Long-Term Potentiation, a Synaptic Model of Memory.” Frontiers in pharmacology vol. 9 425. 24 May. 2018, doi:10.3389/fphar.2018.00425. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5976749/
8. HE, Yu-Xian, et al. “Sodium-Dependent Glucose Transporter Was Involved in Salidroside Absorption in Intestine of Rats.” Chinese Journal of Natural Medicines vol. 7,6 (2009): 444-48. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1875536409600686
9. Laplante, Mathieu, and David M. Sabatini. “MTOR Signaling at a Glance.” Journal of Cell Science vol. 122 (2009): 3589-3594. doi:10.1242/jcs.051011. https://jcs.biologists.org/content/122/20/3589
10. Yoon, Mee-Sup. “mTOR as a Key Regulator in Maintaining Skeletal Muscle Mass.” Frontiers in physiology vol. 8 788. 17 Oct. 2017. doi:10.3389/fphys.2017.00788. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5650960/
11. Dazert, Eva, and Michael N Hall. “MTOR Signaling in Disease.” Current Opinion in Cell Biology vol 23,6 (2011): 744-755. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0955067411001116
12. Liu, Zhongbo et al. “Rhodiola rosea extracts and salidroside decrease the growth of bladder cancer cell lines via inhibition of the mTOR pathway and induction of autophagy.” Molecular carcinogenesis vol. 51,3 (2012): 257-67. doi:10.1002/mc.20780. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21520297/
13. Fan, Xiang-Jun et al. “Salidroside induces apoptosis and autophagy in human colorectal cancer cells through inhibition of PI3K/Akt/mTOR pathway.” Oncology reports vol. 36,6 (2016): 3559-3567. doi:10.3892/or.2016.5138. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27748934/
14. Chen, Ya-Nan et al. “Salidroside via ERK1/2 and PI3K/AKT/mTOR signal pathway induces mouse bone marrow mesenchymal stem cells differentiation into neural cells.” Yao xue xue bao = Acta pharmaceutica Sinica vol. 48,8 (2013): 1247-52. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24187831/
15. Zhong, Xiaoyong et al. “Effects of Salidroside on cobalt chloride-induced hypoxia damage and mTOR signaling repression in PC12 cells.” Biological & pharmaceutical bulletin vol. 37,7 (2014): 1199-206. doi:10.1248/bpb.b14-00100. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24989011/
16. Calabrese, Edward J et al. “Rhodiola rosea and salidroside commonly induce hormesis, with particular focus on longevity and neuroprotection.” Chemico-biological interactions, vol. 380 110540. 9 May. 2023, doi:10.1016/j.cbi.2023.110540; https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0009-2797(23)00207-7
17. Calabrese, E J, and L A Baldwin. “Defining Hormesis.” Human & Experimental Toxicology, vol. 21, no. 2, Feb. 2002, pp. 91–97, doi:10.1191/0960327102ht217oa; https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12102503/
18. “HIF1A Hypoxia Inducible Factor 1 Subunit Alpha [Homo Sapiens (Human)] – Gene – NCBI.” National Center for Biotechnology Information, U.S. National Library of Medicine. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/3091
19. Sekhon, Mypinder S et al. “Clinical pathophysiology of hypoxic ischemic brain injury after cardiac arrest: a “two-hit” model.” Critical care (London, England) vol. 21,1 90. 13 Apr. 2017, doi:10.1186/s13054-017-1670-9. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5390465/
20. Ziello, Jennifer E et al. “Hypoxia-Inducible Factor (HIF)-1 regulatory pathway and its potential for therapeutic intervention in malignancy and ischemia.” The Yale journal of biology and medicine vol. 80,2 (2007): 51-60. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2140184/
21. Zheng, Ken Yu-Zhong et al. “Salidroside stimulates the accumulation of HIF-1α protein resulted in the induction of EPO expression: a signaling via blocking the degradation pathway in kidney and liver cells.” European journal of pharmacology vol. 679,1-3 (2012): 34-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22309741/
22. Zhang, Jing et al. “Inhibition of PHD3 by salidroside promotes neovascularization through cell-cell communications mediated by muscle-secreted angiogenic factors.” Scientific reports vol. 7 43935. 7 Mar. 2017, doi:10.1038/srep43935. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5339704/
23. Purves, Dale. “The Biogenic Amines.” Neuroscience. 2nd Edition., U.S. National Library of Medicine, 1 Jan. 1970. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK11035/
24. Thangam, Elden Berla et al. “The Role of Histamine and Histamine Receptors in Mast Cell-Mediated Allergy and Inflammation: The Hunt for New Therapeutic Targets.” Frontiers in immunology vol. 9 1873. 13 Aug. 2018, doi:10.3389/fimmu.2018.01873. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6099187/
25. Berger, Miles et al. “The expanded biology of serotonin.” Annual review of medicine vol. 60 (2009): 355-66. doi:10.1146/annurev.med.60.042307.110802. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5864293/
26. Paravati, Stephen. “Physiology, Catecholamines.” StatPearls [Internet]., U.S. National Library of Medicine, 26 July 2020. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK507716/
27. Laban, Tahrier Sub. “Monoamine Oxidase Inhibitors (MAOI).” StatPearls [Internet]., U.S. National Library of Medicine, 22 Aug. 2020. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK539848/
28. Dunleavy, D L. “Mood and sleep changes with monoamine-oxidase inhibitors.” Proceedings of the Royal Society of Medicine vol. 66,9 (1973): 951. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1645427/
29. Shabbir, Faisal et al. “Effect of diet on serotonergic neurotransmission in depression.” Neurochemistry international vol. 62,3 (2013): 324-9. doi:10.1016/j.neuint.2012.12.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23306210/
30. Merikangas, K R, and J R Merikangas. “Combination monoamine oxidase inhibitor and beta-blocker treatment of migraine, with anxiety and depression.” Biological psychiatry vol. 38,9 (1995): 603-10. doi:10.1016/0006-3223(95)00077-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8573662/
31. Huang, Ling et al. “Multitarget-directed benzylideneindanone derivatives: anti-β-amyloid (Aβ) aggregation, antioxidant, metal chelation, and monoamine oxidase B (MAO-B) inhibition properties against Alzheimer’s disease.” Journal of medicinal chemistry vol. 55,19 (2012): 8483-92. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22978824/
32. van Diermen, Daphne et al. “Monoamine oxidase inhibition by Rhodiola rosea L. roots.” Journal of ethnopharmacology vol. 122,2 (2009): 397-401. doi:10.1016/j.jep.2009.01.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19168123/
33. Zhong, Zhi-feng, et al. “Neuroprotective Effects of Salidroside on Cerebral Ischemia/Reperfusion-Induced Behavioral Impairment Involves the Dopaminergic System.” Frontiers in Pharmacology, 13 Dec. 2019. https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fphar.2019.01433/full
34. Beck, B. “Neuropeptide Y in normal eating and in genetic and dietary-induced obesity.” Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences vol. 361,1471 (2006): 1159-85. doi:10.1098/rstb.2006.1855. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1642692/
35. Reichmann, Florian, and Peter Holzer. “Neuropeptide Y: A stressful review.” Neuropeptides vol. 55 (2016): 99-109. doi:10.1016/j.npep.2015.09.008. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4830398/
36. Yau, Y H C, and M N Potenza. “Stress and eating behaviors.” Minerva endocrinologica vol. 38,3 (2013): 255-67. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4214609/
37. Ans, Armghan H., et al. “Neurohormonal Regulation of Appetite and Its Relationship with Stress: A Mini Literature Review.” Cureus, 23 July 2018. https://www.cureus.com/articles/13630-neurohormonal-regulation-of-appetite-and-its-relationship-with-stress-a-mini-literature-review
38. Panossian, Alexander et al. “Adaptogens stimulate neuropeptide y and hsp72 expression and release in neuroglia cells.” Frontiers in neuroscience vol. 6 6. 1 Feb. 2012, doi:10.3389/fnins.2012.00006. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3269752/
39. Liu, Jiuxi et al. “Salidroside protects mice from high-fat diet-induced obesity by modulating the gut microbiota.” International immunopharmacology, vol. 120 110278. 14 May. 2023, doi:10.1016/j.intimp.2023.110278; https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1567576923006008
40. Salari, Nader et al. “Prevalence of stress, anxiety, depression among the general population during the COVID-19 pandemic: a systematic review and meta-analysis.” Globalization and health vol. 16,1 57. 6 Jul. 2020, doi:10.1186/s12992-020-00589-w. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC7338126/
41. Mariotti, Agnese. “The effects of chronic stress on health: new insights into the molecular mechanisms of brain-body communication.” Future science OA vol. 1,3 FSO23. 1 Nov. 2015, doi:10.4155/fso.15.21. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5137920/
42. Edwards, D et al. “Therapeutic effects and safety of Rhodiola rosea extract WS 1375 in subjects with life-stress symptoms–results of an open-label study.” Phytotherapy research : PTR vol. 26,8 (2012): 1220-5. doi:10.1002/ptr.3712. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22228617/
43. Cropley, Mark et al. “The Effects of Rhodiola rosea L. Extract on Anxiety, Stress, Cognition and Other Mood Symptoms.” Phytotherapy research : PTR vol. 29,12 (2015): 1934-9. doi:10.1002/ptr.5486. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26502953/
44. Yang, Longfei et al. “The Effects of Psychological Stress on Depression.” Current neuropharmacology vol. 13,4 (2015): 494-504. doi:10.2174/1570159×1304150831150507. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4790405/
45. Kumar, Anil et al. “Stress: Neurobiology, consequences and management.” Journal of pharmacy & bioallied sciences vol. 5,2 (2013): 91-7. doi:10.4103/0975-7406.111818. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3697199/
46. Nutt, David J. “Relationship of neurotransmitters to the symptoms of major depressive disorder.” The Journal of clinical psychiatry vol. 69 Suppl E1 (2008): 4-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18494537/
47. Darbinyan, V et al. “Clinical trial of Rhodiola rosea L. extract SHR-5 in the treatment of mild to moderate depression.” Nordic journal of psychiatry vol. 61,5 (2007): 343-8. doi:10.1080/08039480701643290. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17990195/
48. “Rhodiola Rosea Therapy of Major Depressive Disorder.” ClinicalTrials.gov. https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT01098318
49. Rose, D M et al. “Associations of fatigue to work-related stress, mental and physical health in an employed community sample.” BMC psychiatry vol. 17,1 167. 5 May. 2017, doi:10.1186/s12888-017-1237-y. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5420158/
50. van Dam, Arno. “Subgroup Analysis in Burnout: Relations Between Fatigue, Anxiety, and Depression.” Frontiers in psychology vol. 7 90. 4 Feb. 2016, doi:10.3389/fpsyg.2016.00090. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4740380/
51. Spasov, A A et al. “A double-blind, placebo-controlled pilot study of the stimulating and adaptogenic effect of Rhodiola rosea SHR-5 extract on the fatigue of students caused by stress during an examination period with a repeated low-dose regimen.” Phytomedicine : international journal of phytotherapy and phytopharmacology vol. 7,2 (2000): 85-9. doi:10.1016/S0944-7113(00)80078-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10839209/
52. Shevtsov, V A et al. “A randomized trial of two different doses of a SHR-5 Rhodiola rosea extract versus placebo and control of capacity for mental work.” Phytomedicine : international journal of phytotherapy and phytopharmacology vol. 10,2-3 (2003): 95-105. doi:10.1078/094471103321659780. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12725561/
53. De Bock, Katrien et al. “Acute Rhodiola rosea intake can improve endurance exercise performance.” International journal of sport nutrition and exercise metabolism vol. 14,3 (2004): 298-307. doi:10.1123/ijsnem.14.3.298. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15256690/
54. Mannucci, C et al. “Serotonin involvement in Rhodiola rosea attenuation of nicotine withdrawal signs in rats.” Phytomedicine : international journal of phytotherapy and phytopharmacology vol. 19,12 (2012): 1117-24. doi:10.1016/j.phymed.2012.07.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22921986/
55. Panossian, Alexander et al. “Synergy and Antagonism of Active Constituents of ADAPT-232 on Transcriptional Level of Metabolic Regulation of Isolated Neuroglial Cells.” Frontiers in neuroscience vol. 7 16. 20 Feb. 2013, doi:10.3389/fnins.2013.00016. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3576868/
56. Kennett, G A et al. “Anxiolytic-like actions of the selective 5-HT4 receptor antagonists SB 204070A and SB 207266A in rats.” Neuropharmacology vol. 36,4-5 (1997): 707-12. doi:10.1016/s0028-3908(97)00037-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9225297/
57. Curzon, G. “Serotonin and appetite.” Annals of the New York Academy of Sciences vol. 600 (1990): 521-30; discussion 530-1. doi:10.1111/j.1749-6632.1990.tb16907.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/2252331/
58. Cifani, Carlo et al. “Effect of salidroside, active principle of Rhodiola rosea extract, on binge eating.” Physiology & behavior vol. 101,5 (2010): 555-62. doi:10.1016/j.physbeh.2010.09.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20837037/
59. Campos, Carlos. “Chronic hyperglycemia and glucose toxicity: pathology and clinical sequelae.” Postgraduate medicine vol. 124,6 (2012): 90-7. doi:10.3810/pgm.2012.11.2615. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23322142/
60. Mouri, MIchelle. “Hyperglycemia.” U.S. National Library of Medicine. 10 Sept. 2020. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK430900/
61. Uribarri, Jaime et al. “Advanced glycation end products in foods and a practical guide to their reduction in the diet.” Journal of the American Dietetic Association vol. 110,6 (2010): 911-16.e12. doi:10.1016/j.jada.2010.03.018. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3704564/
62. Mao, Gen-Xiang et al. “Protective role of salidroside against aging in a mouse model induced by D-galactose.” Biomedical and environmental sciences : BES vol. 23,2 (2010): 161-6. doi:10.1016/s0895-3988(10)60047-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20514993/
63. Li, Fenglin et al. “Protective effect of salidroside from Rhodiolae Radix on diabetes-induced oxidative stress in mice.” Molecules (Basel, Switzerland) vol. 16,12 9912-24. 1 Dec. 2011, doi:10.3390/molecules16129912. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6264537/
64. Li, Han-Bing et al. “Salidroside stimulated glucose uptake in skeletal muscle cells by activating AMP-activated protein kinase.” European journal of pharmacology vol. 588,2-3 (2008): 165-9. doi:10.1016/j.ejphar.2008.04.036. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18501890/
65. Li, Xue et al. “Salidroside stimulates DNA repair enzyme Parp-1 activity in mouse HSC maintenance.” Blood vol. 119,18 (2012): 4162-73. doi:10.1182/blood-2011-10-387332. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3359737/
66. Zhu, Ye et al. “Salidroside protects against hydrogen peroxide-induced injury in cardiac H9c2 cells via PI3K-Akt dependent pathway.” DNA and cell biology vol. 30,10 (2011): 809-19. doi:10.1089/dna.2010.1183. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21563965/
67. Ouyang, Jing-Feng et al. “In-vitro promoted differentiation of mesenchymal stem cells towards hepatocytes induced by salidroside.” The Journal of pharmacy and pharmacology vol. 62,4 (2010): 530-8. doi:10.1211/jpp.62.04.0017. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20604844/
68. Eagon, Patricia K., et al. “Evaluation of the Medicinal Botanical Rhodiola Rosea for Estrogenicity.” Cancer Research, American Association for Cancer Research. 1 Apr. 2004. https://cancerres.aacrjournals.org/content/64/7_Supplement/663.3
69. Liu, Zhongbo et al. “Rhodiola rosea extracts and salidroside decrease the growth of bladder cancer cell lines via inhibition of the mTOR pathway and induction of autophagy.” Molecular carcinogenesis vol. 51,3 (2012): 257-67. doi:10.1002/mc.20780. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3144985/
70. Hu, Xiaolan et al. “A preliminary study: the anti-proliferation effect of salidroside on different human cancer cell lines.” Cell biology and toxicology vol. 26,6 (2010): 499-507. doi:10.1007/s10565-010-9159-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20309622/
71. Khanum, Farhath, et al. “Rhodiola Rosea: A Versatile Adaptogen.” Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. John Wiley & Sons, Ltd, 20 Nov. 2006. https://onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.1111/j.1541-4337.2005.tb00073.x
72. Booker, Anthony, et al. “The Authenticity and Quality of Rhodiola Rosea Products.” Phytomedicine vol. 23,7 (2016): 754-762. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0944711315003189
73. NNB Nutrition; “RhodioPrime 6X：Powered Adaptogen of the Vikings”; March 14, 2021; https://blog.priceplow.com/wp-content/uploads/rhodioprime-6x-whitepaper-20200314.pdf
74. United Natural Products Alliance; “Old Dietary Ingredient List”; 1999; https://blog.priceplow.com/wp-content/uploads/unpa-old_dietary_ingredients_list-1999.