背景介绍
阿尔茨海默病(AD)是最常见的老年痴呆症,其特征是进行性失忆和严重认知障碍。淀粉样蛋白级联假说(Amyloid cascade hypothesis)认为:淀粉样蛋白-β(Aβ)是Aβ蛋白前体(APP)经过β-和γ-分泌酶连续切割后释放的,随后它在大脑中持续积累。Tau蛋白异常磷酸化假说认为:Tau蛋白是神经元中的一种可溶性微管结合蛋白,其主要功能是微管组装、物质运输和细胞形态维持等。在AD病理状况下,Tau蛋白发生异常翻译后修饰,如过度磷酸化,进而失去稳定微管结构的功能,造成神经元损伤。另一方面,过度磷酸化还会促进Tau蛋白聚集形成神经纤维缠结(Neurofibrillary tangles,NFTs),造成神经毒性。二者共同导致AD相关痴呆症。然而,仅针对Aβ或tau神经毒性的AD疗法并未展现出显著疗效,提示Aβ和tau之间存在相互作用,从根本上推动了疾病的发展。这一相互作用具体表现在:(1)聚集的Aβ通过增强GSK-3β和CDK-5的活性来诱导tau过度磷酸化,进一步驱动NFT的形成;(2)Aβ还可以激活caspase-3和钙蛋白酶 1,将Tau蛋白从C端裂解,截短的tau比全长tau更能快速组装成细丝;(3)Tau介导Aβ 毒性,由Aβ介导的过度磷酸化的tau通过作用于Drp1诱导线粒体的融合和裂变,从而诱导线粒体动力学功能障碍,最终导致ROS过量产生和细胞凋亡。因此Aβ类似于枪的“扳机”,而Tau蛋白类似于“子弹”,二者发挥协同作用,共同介导了AD患者的认知功能障碍。因此,预防AD的有效治疗方法可能是在早期就减少大脑中的Aβ负担。
在动物模型中,体育锻炼已被证明能改善AD病理学的各个方面,包括脑Aβ水平、淀粉样蛋白沉积和神经炎症,从而改善认知功能障碍。然而,运动减少Aβ水平的机制尚不清楚。先前已有研究表明,运动会增加AD小鼠大脑中降解Aβ的内肽酶——脑啡肽酶(NEP)的酶活性和水平,从而导致淀粉样蛋白减少。但是运动如何导致NEP活性/水平的增加仍是未解之谜。
Irisin是一种肌细胞因子,由其前体Ⅲ型纤连蛋白域蛋白5(FNDC5)裂解而来,可调节脂肪组织中的葡萄糖和脂质代谢,并通过加速白色脂肪组织的棕色化来增加能量消耗。研究表明,FNDC5/Irisin(小编注:在许多关于Irisin的研究中,针对FNDC5抗体的WB显示有多条条带,一方面是Irisin本身的条带(和重组Irisin分子量一致),还存在着Irisin二聚体或糖基化,以及FNDC5本身(2022年发表在Eur Heart J上的文章表明FNDC5还可能通过外泌体分泌,作用到外周组织),因此无法分辨所检测的蛋白到底是FNDC5还是Irisin,故而用FNDC5/Irisin指代)存在于人类和小鼠的大脑中,尤其是海马区。最近有报道称,AD患者的海马和脑脊液(CSF)中以及AD小鼠模型大脑中的Irisin水平降低。此外,据报道,在AD患者的脑脊液中,Irisin水平与Aβ42含量(小编注:Aβ是含有39-43个氨基酸的多肽,它可由多种细胞产生,循环于血液、脑脊液和脑间质液中,其中最常见的亚型为Aβ40和Aβ42。并且Aβ42更容易聚集,因此能够引发更强的神经毒性。Aβ蛋白除了沉积在中枢神经,还被发现在外周组织中沉积,包括脂肪组织、心脏、肌肉、肾脏、肝脏、脾脏、皮肤和肠道,在表达水平上,人类星形胶质细胞产生的β-淀粉样蛋白水平高于任何其他细胞类型,提示胶质细胞是大脑中Aβ的主要来源。研究发现,在脂肪组织中,Aβ会通过PKA和ERK1/2依赖性信号通路诱导培养的人脂肪组织中的脂肪分解,并且减少脂联素分泌,同时增加瘦素和IL-6的分泌)以及小型精神状态检查(小编注:MMSE又称作简易精神状态检查,是一种用于评估老年人认知功能障碍等级的量表)评分呈正相关。此外,运动还能促进人体循环中的Irisin水平、野生型小鼠海马中的Fndc5基因表达以及AD转基因小鼠海马中的FNDC5蛋白表达。
前面提到AD的两个病理标志是细胞外淀粉样斑块和细胞内神经纤维缠结。于是学界推测二者存在一定关联。然而在2014年之前,尚未有研究在任何动物模型中证明这一点,于是本文通讯作者便在Nature上以第一作者身份开发了一种三维(3D)人类神经细胞AD培养模型(3D-AD模型)。该AD模型围绕着两项核心技术:人类神经祖细胞(hNPCs)可产生高浓度的致病性Aβ,以及基于Matrix的3D培养系统,该系统提供了一个有利于Aβ沉积的环境。首先,作者选择永生化的hNPC细胞系ReNcell VM(ReN)作为平台的基础,这些细胞可表现出显着的淀粉样蛋白病理学,多次传代中仍可存活,还容易分化为神经元和神经胶质细胞。作者利用装载有家族性 AD(FAD)基因的慢病毒感染ReN细胞(具体基因已在正文第一小节描述),使其在3D基质胶中分化并维持表达高水平FAD 基因,以促进Aβ。相比于2D培养系统,3D基质胶可阻止Aβ 扩散到培养基中,仅维持高浓度的Aβ。同时,他们选择的3D基质胶还包含了一个富含结构蛋白(如层粘连蛋白、胶原蛋白和硫酸乙酰肝素蛋白聚糖等)的大脑样微环境。总之,该模型表现出Aβ的大量生成,随后出现了p-Tau病理变化,首次在疾病模型上发现了Aβ通过GSK3诱导p-Tau病理的分子机制。
在本篇文章中,研究人员对Irisin是否会影响3D-AD 培养系统中的Aβ病理学展开了研究。他们发现,Irisin通过提高星形胶质细胞(astrocytes)分泌的可溶性NEP水平,进而降低Aβ的含量。他们还发现,Irisin诱导的NEP活性/水平增强是通过下调细胞外信号调节激酶(ERK)-转录激活因子 3(STAT3)信号通路介导的,其中ERK信号通路是胞外刺激信号传导至细胞内的中心调节因子,调控着细胞增殖、分化、迁移和血管生成相关等生理过程,而STAT3是星形胶质细胞增殖的关键调节因子。最后,研究人员发现星形胶质细胞上的整合素αV/β5受体是介导Irisin对NEP水平产生影响并进而降低Aβ水平的必要条件。
2、整合素αV/β5是星形胶质细胞上的Irisin受体,可诱导 NEP 分泌;
3、Irisin通过下调 ERK-STAT3 信号介导 NEP 分泌。
研究结果
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Irisin能缓解3D-AD模型中Aβ的病理变化
ReNcell VM 人源神经干细胞(ReN)表达与家族性 AD(FAD)相关的 APPSwedish/London突变蛋白,称为 ReN-GA 细胞,同时该细胞系表达 APPSwedish/London和突变的早老蛋白(presenilin-1)(PS1)ΔE9则称为 ReN-mGAP 细胞,研究人员按照之前的方法将这两种细胞在三维培养系统中进行分化(图 1A 和 1B)。为了测试Irisin对Aβ病理学的影响,用 5ng/mL 和 500 ng/mL的重组Irisin蛋白处理分化了0.5或3.5周的 ReN-GA和 ReN-mGAP 细胞1.5 周(图 1B)。研究人员选择了5ng/mL和500ng/mL的Irisin含量是因为前者属于人体血浆中的正常生理水平,而后者已被证明在阻断骨细胞死亡方面具有最大效果。研究人员对2周或5周后的 3D-AD 培养物中的条件培养基和细胞进行分析后发现,培养 2 周和 5 周的 ReN-GA 和 ReN-mGAP 培养物条件培养基中的内源性Irisin水平没有差异(图 S1A)。与培养2周的 ReN-GA 相比,培养5周的 ReN-GA 的基质胶中Irisin减少了,而培养2周和5周的 ReN-mGAP 之间Irisin水平则没有变化(图 S1A)(小编注:研究人员将细胞培养在基质胶中,再添加用于细胞增殖的培养基和营养组分;当进行分化时,先将细胞重悬在基质胶中,然后再接种到孔板中,加入分化培养基进行分化。条件培养基指细胞上清组分,基质胶指细胞组分)。
5ng/mL和500ng/mL剂量的Irisin可以显著降低培养5周后ReN-GA条件培养基中Aβ40和Aβ42的水平,但是在基质胶中只有500ng/mL的Irisin抑制了Aβ水平(图1C)。相比于ReN-GA培养模型,ReN-mGAP 培养模型的AD病理更显著。在分化5周时,500 ng/mL的Irisin可降低条件培养基中的 Aβ40 和 Aβ42 水平,但在3D基质胶中,该剂量的Irisin仅降低了Aβ42 水平(图 1C)。与此同时,分化2周的Irisin的抑制效果较为轻微(图 S1B)。
乳酸脱氢酶(LDH)是细胞死亡/细胞毒性的指标(小编注:LDH是一种稳定存在于胞浆中的酶,在正常状态下,仅存在于细胞内,但是当细胞受到刺激死亡时,质膜发生破裂,LDH被迅速释放至细胞外,因此LDH释放是细胞毒性研究中使用较广泛的标记物),在为期5周的 3D-AD 培养模型中,Irisin没有增加LDH的释放(图 S1C),这表明5ng/mL和500ng/mL的Irisin不会导致细胞死亡,且Irisin降低Aβ含量并不是由于细胞死亡引起的。事实上,在5周3D-AD培养模型中,500 ng/mL剂量的Irisin还减少了LDH的释放,这表明Irisin具有神经保护作用。有研究表明,FNDC5的过表达会增加小鼠海马中脑源性神经营养因子(Bdnf)基因的表达,而BDNF可通过增强APP的α-分泌酶活性,促进分泌性APP(sAPPα)的生成,从而来减少Aβ的生成。结果显示,BDNF 水平大多低于可检测范围,同时Irisin也不会改变分化5周 3D-AD 模型培养基中的 BDNF 水平(图 S1D)(小编注:文献使用的是从小鼠大脑中提取的原代皮质神经元和海马神经元,是终末细胞,irisin诱导后会增加BDNF的水平。但是本文中用到的细胞是hNPCs,即人源神经祖细胞,是由人胚胎干细胞和诱导性多能干细胞(hiPCS)分化而来的,而hiPCS是利用各种方法从成纤维细胞等成体细胞类型中衍生而来的,其来源不一定是大脑,这是3D模型存在的较大局限性),这表明Irisin降低3D-AD细胞中Aβ的含量并非由BDNF介导。
使用G12A(APP-C末端)或6E10抗体进行的Western印迹分析表明,Irisin并没有显著改变5周3D-AD培养模型中全长APP(fl-APP)、APP-CTFα和APP-CTFβ的水平(小编注:背景介绍中提到APP是经过β-和γ-剪切酶连续切割后释放的,具体而言,APP的N端首先在β-剪切酶作用下,蛋白被分为APPSβ和C端的β-CTF,后者然后通过γ-剪切酶作用分为Aβ和AICD,这两个过程称为淀粉样蛋白剪切。如果APP在第一步是通过α-剪切酶作用则最终产生不具有毒性的非淀粉样蛋白)(图S2A和S2B),这表明Irisin并不影响APP的加工。
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Irisin能减少萎缩性神经突和过度兴奋性
从病理学角度看,萎缩性神经突起与Aβ和tau病变都有关联(小编注:神经突:神经突起是由神经元的细胞体延伸出来的细长部分,又可分为树突和轴突,用于细胞间的信息传输)。虽然Irisin没有改变淀粉样蛋白斑块的水平(利用3D6抗体检测),这可能是由于培养5周的3D-AD模型中斑块的水平较低(图 S2C),但Irisin处理显著减少了培养5周ReN-GA和ReN-mGAP模型中萎缩神经突的面积以及ReN-mGAP模型中萎缩神经突的数量(图1D和1E)。
在AD小鼠、体外模型和人体中,Aβ已被证明与神经元的过度活跃有关,在APP/PS1小鼠中,Aβ也与星形胶质细胞的过度活跃有关。因此,研究人员对分化5周的3D-AD培养模型中细胞自发活性进行检测,他们利用钙成像技术分析了捕获的视频中所有活跃细胞(>0个瞬时变化次数,每50帧/4.5分钟)中钙离子浓度,并将每50帧/4.5分钟瞬变次数大于6次(高于活跃细胞的平均频率)的细胞定义为超活跃细胞(图 1F)。研究人员观察到,在3D-AD培养模型中,Irisin略微降低了过度活跃细胞的百分比(图 1G)。与ReN-GA培养模型相比,在培养5周的ReN-mGAP模型中,在所有绿色荧光蛋白(GFP)细胞中,过度活跃细胞的比例明显更高(图1H)。重要的是,研究人员发现在ReN-mGAP模型中,Irisin显著降低了GFP细胞总数中过度活跃细胞的比例,但对活跃细胞的平均频率没有影响;而在ReN-GA模型中,Irisin处理没有观察到任何变化(图 1H)。这些结果表明,Irisin降低了Aβ和Aβ相关的萎缩性神经突以及3D-AD培养模型中细胞的过度兴奋性。
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图2 | Irisin能增加星形胶质细胞中的secNEP水平
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研究人员之前在骨细胞和脂肪组织中发现整合素复合物αV/β5是一种Irisin受体。在中枢神经系统(CNS)中,整合素β5(ITGB5)亚基在星形胶质细胞中高度表达,可作为星形胶质细胞特异性基因,适用于分离星形胶质细胞。整合素αV亚基是ITGB5的专属伴侣。研究人员通过质谱法(MS)检测了培养5周的ReN-mGAP模型中整合素αV和β5亚基的表达,并通过Western印迹检测了ReN-GA模型中整合素αV和β5亚基的蛋白表达水平(图3A)。在培养5周的ReN-mGAP模型中,研究人员用星形胶质细胞选择性毒素L-α-氨基己二酸盐(L-AAA)清除星形胶质细胞后发现, ITGB5和S100β(星形胶质细胞标记物)的蛋白水平显著降低(图 3B),表明ITGB5主要在3D-AD模型中的星形胶质细胞中表达。
配体结合后,异二聚体整合素受体通过磷酸化黏着斑激酶(p-FAK)和环磷酸腺苷(cAMP)反应元件结合蛋白(CREB)触发典型信号传导。在ReN-mGAP和 hiPSC-Astro 模型中,Irisin处理增加了p-FAK和CREB磷酸化(p-CREB)水平,表明Irisin诱导了整合素受体的快速活化(图3C和3D),说明在3D-AD和hiPSC-Astro模型中存在整合素信号并被Irisin激活。
为了确定整合素αV/β5受体是否是Irisin降低Aβ水平的必要条件,研究人员在ReN-mGAP模型中通过药物抑制ITGB5活性,在ReN-GA模型中抑制ITGB5基因表达(小编注:文中并没有提到为什么对这两种细胞进行不同处理,我们猜测一方面可能是因为本身就具有两种AD模型细胞,为了减少工作量,所以使用了不同的策略在两种模型中均证明了irisin是通过是其受体αV/β5来降低Aβ含量。另一方面可能是他们在两种模型都做了药物和基因操纵,但在文中展示了不同的数据)。为了从药理学角度抑制整合素αV/β5的活性,他们用拮抗整合素αV/β5抗体或整合素αV/β5抑制剂(SB273005)处理培养3.5周的ReN-mGAP模型1.5周。结果表明,培养5周ReN-mGAP细胞中,整合素αV/β5抗体或SB273005的处理完全消除了Irisin降低Aβ42水平的作用(图 3E)。SB273005处理也消除了Irisin增加ReN-mGAP培养基中secNEP活性的能力(图 3F)。为了从基因上阻断ITGB5 的活性,研究人员通过过表达诱导性慢病毒ITGB5短发夹RNA(shRNA)生成了 ITGB5敲减(KD)-ReN-GA株系,其表达受多西环素(Dox)控制(图 3G)。他们发现,在培养5周的ReN-GA模型中敲减ITGB5后,Irisin失去了ReN-GA模型中降低Aβ40和Aβ42水平的能力(图 3H)。此外,Dox不会影响Aβ 水平(图 S3A)。这些结果表明,整合素αV/β5在星形胶质细胞中作为Irisin的受体,并介导Irisin降低3D-AD模型中Aβ水平的能力。此外,研究人员还观察到,在没有Irisin处理的情况下,单独对整合素αV/β5进行药物抑制会降低3D-AD模型中Aβ40和Aβ42水平(图S3B和S3C)。
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Irisin通过整合素αV/β5抑制 STAT3 信号传导
有研究表明,在APP/PS1小鼠的星形胶质细胞中特异性敲除STAT3可减少 Aβ负荷,同时增加NEP蛋白水平,尽管NEP的细胞来源尚未明确。研究人员评估了用Irisin处理培养5周的ReN-GA模型中Stat3基因表达水平以及部分反应性星形胶质细胞标记物,包括Gfap、Cp、Cd44、C3、Serping1、Amigo2和Emp152(图 4A)。结果表明,当用单因素方差分析时,500 ng/mL剂量的Irisin处理ReN-GA模型后,C3(p = 0.086)和 Stat3(p = 0.094)基因表达呈下降趋势(图 4A)。然而,当用t检验进行分析时,这两种基因表达减少具有统计学差异(图 S3D)。Irisin处理培养5周ReN-GA细胞后,C3和C3aR以及它们上游的核因子κB(NF-κB)p65蛋白和STAT3水平下降(图4B)。同时使用整合素αV/β5抗体处理会削弱Irisin减少STAT3、C3aR和NF-κB p65的能力,而不添加Irisin,仅使用αV/β5抗体处理不会改变它们的水平(图 4B、S3E 和 S3F),这表明Irisin诱导的这些蛋白的减少是由星形胶质细胞通过整合素αV/β5受体介导的。在hiPSC-Astro模型中,Irisin能降低NF-κB p65、C3、C3aR和STAT3 的蛋白水平,进一步证实了这些发现(图 S3G)。接下来,MS和Western印迹分析表明,在培养5周的ReN-mGAP和ReN-GA以及hiPSC-Astro模型中,Irisin降低了脂蛋白E (APOE) 的水平,APOE是STAT3在星形胶质细胞中的下游,只在胶质细胞中表达,这进一步证明了Irisin降低STAT3的作用(图4C、S3H和S3I)。用整合素αV/β5抗体或拮抗剂SB273005联合处理ReN-mGAP模型后,Irisin诱导的APOE水平降低再次消失(图4C和S3F)。
STAT3已被证明可调节星形胶质细胞的反应性。为了检验Irisin介导的 STAT3减少是否会改变星形胶质细胞的反应性,研究人员在用Irisin处理培养2周和 5周ReN-mGAP模型中检测了反应性星形胶质细胞标记物神经胶质纤维酸性蛋白(GFAP)和S100β的蛋白水平。Western印迹分析表明,Irisin处理可显著降低5周ReN-mGAP模型细胞中的GFAP和S100β蛋白水平(图4D和S3J)。即使在5ng/mL的Irisin浓度下也能观察到这一现象,而在培养2周的ReN-mGAP 模型中,Irisin不能减少Aβ的病理变化(图S1B和S3K)。这些数据表明,Irisin引起的GFAP减少并不是由于Irisin诱导的NEP分泌增加导致Aβ减少的继发效应。
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Irisin能抑制反应性星形胶质细胞基因和蛋白质的表达
为了描述Irisin处理诱导的细胞类型特异性转录组变化,研究人员在Irisin和抗整合素αV/β5抗体联合处理后,对培养5周的3D-AD模型进行了单细胞RNA测序(scRNA-seq)分析。在ReN-GA模型中,他们根据标记物的表达(星形胶质细胞:Gfap、Aqp4和Id4;神经元:Wsb1、Kcnq1ot1、Syt1和Kcnj6)从完整数据集中提取了2671个星形胶质细胞和1207个神经元(图S4A 和S4B)。Irisin处理使神经元和星形胶质细胞的基因表达发生了显著变化(图 S4C)。在星形胶质细胞中,基因本体分析显示Irisin上调了参与基因表达、RNA核输出、细胞质翻译、RNA代谢过程、蛋白质靶向ER和白介素-1产生的调控基因([FDR] < 0.1)(图S4D)。在神经元中,Irisin下调了参与应激诱导早衰、淀粉样纤维形成、ERK1和ERK2级联正向调控、细胞蛋白代谢过程负向调控和Aβ形成调控的基因,而上调了参与细胞蛋白代谢过程、端粒延长对端粒维持的正向调控、神经元生成、RNA代谢过程和神经元发育的基因(FDR < 0.1)(图 S4E),说明Irisin可以延缓衰老,抑制淀粉样纤维形成,以及Aβ形成。其中,抑制ERK信号通路,促进神经元发育与生成,说明Irisin可以减轻Aβ病理变化。
与ReN-GA模型相比,ReN-mGAP模型的神经元损害更为严重,研究人员在其中提取了1821个星形胶质细胞和695个神经元(图4E和4F)。Irisin处理可显著改变神经元的基因表达,尤其是星形胶质细胞的基因表达(图 4G)。在星形胶质细胞中,基因本体分析表明,Irisin下调了参与细胞过程负调控、细胞凋亡过程调控、细胞金属离子平衡、向细胞内导入和细胞代谢过程负调控的基因(FDR < 0.1)(图4H)。在神经元中,Irisin下调了参与侵袭吞噬、p53类介质信号转导正调控、泛素蛋白连接酶活性负调控、翻译和信号识别颗粒(SRP)依赖的共翻译蛋白靶向膜的基因(FDR < 0.05)(图4I)。
重要的是,Irisin能明显降低星形胶质细胞反应性标记物,如波形蛋白(Vimentin,Vim)、S100b、Hspb1、Camk2d、Gpx1、Lgals1、Lgals3、Flna、Vcan 和Nes的基因表达水平,而抑制整合素αV/β5后这一现象就消失了(图4J和S4F)。此外,在星形胶质细胞中,Irisin减少了表皮生长因子受体(Egfr)基因及其下游效应基因(包括白细胞介素(IL)-6 通路(Mapk1/Erk,Il6st))和Apoe基因的表达,这些基因在反应性星形胶质细胞中通过整合素αV/β5受体上调(图 4K)。
质谱MS结果进一步证明,在培养5周的ReN-mGAP模型中,Irisin抑制了EGFR和其下游通路的蛋白水平,其对星形胶质细胞反应至关重要(图 S4G)。Irisin改变了培养5周ReN-mGAP 模型中反应性星形胶质细胞基因的蛋白水平(图S4H)。研究人员观察到CAMK2D 和GPX1蛋白表达呈下降趋势(与scRNA-seq分析一致)(图 S4H)。尽管没有观察到"A1"和"A2"活化状态之间的明显转变,但Irisin处理后 "pan"-星形胶质细胞标志基因(小编注:星形胶质细胞“泛”标志物,标记由炎症和缺血诱导的反应性星形胶质细胞的类型)有下调的趋势(图S4H)。根据基因本体对反应性星形胶质细胞相关基因进行分类,他们发现在ReN-mGAP模型中,与细胞外基质(ECM)重塑(CD44)、IL-6信号转导(RRAS2)和 GAP43(神经调节蛋白)相关的基因的蛋白表达在Irisin的作用下显著下降(图S4H)。
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阻断STAT3信号传递可提高secNEP水平
接下来,研究人员探究了Irisin是否通过下调STAT3来增加secNEP水平。因此,研究人员构建了携带可由Dox调节的shRNA转基因的ReN-GA细胞,该转基因可沉默STAT3基因的表达(图5A)。STAT3 KD能显著提高培养5周的STAT3 KD-ReN-GA模型条件培养基中secNEP的水平及其活性,而降低secIDE 的水平(图5B和5C)。在没有用Irisin处理时,STAT3 KD降低了培养5周ReN-GA模型条件培养基和细胞中的Aβ40和Aβ42水平(图5D),而仅用Dox处理不会降低Aβ水平(图S3A)。由于在3D-AD模型中STAT3的缺失并非星形胶质细胞特异性的,因此需要进一步证实星形胶质细胞特异性STAT3缺失的效果。总之,这些结果表明,降低星形胶质细胞中STAT3的表达是Irisin诱导NEP释放增加从而减少3D-AD模型中Aβ水平的分子机制中的一个关键事件。
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Irisin通过抑制IL-6/ERK信号转导来降低STAT3水平,从而增加secNEP的释放量
有丝分裂原激活蛋白激酶(MAPK)/ERK信号通路在人类反应性星形胶质细胞和AD大脑中长期激活,而IL-6是ERK和STAT3信号通路的上游激活剂。FNDC5/Irisin可调节MAPK/ERK信号通路。之前的scRNA-seq和MS结果表明Irisin抑制了IL-6/MEK-ERK/STAT3 通路(图4K、S4E和S4G)并减弱了星形胶质细胞的反应性(图4和S4),因此研究人员检测了Irisin是否改变了培养5周3D-AD模型中促炎细胞因子包括IL-6、磷酸化ERK1/2(Thr202/Tyr204处磷酸化)和总ERK的水平。
研究人员测量了培养5周的3D-AD模型条件培养基中的干扰素-γ (IFN-γ)、IL-1β、IL-2、IL-4、IL-6、IL-8、IL-10、IL-12p70、IL-13和肿瘤坏死因子-α (TNF-α),发现5ng/mL和500 ng/mL的Irisin能显著降低IL-6水平(图6A)。此外,500 ng/mL的Irisin还能提高IL-2的水平(图S5A)。Western 印迹分析表明,Irisin处理24小时后,ReN-GA和ReN-mGAP模型中p-ERK的水平明显降低(图6B和S5B)。
接下来,研究人员想知道Irisin对ERK的抑制是否会降低STAT3的水平,从而促进NEP活性/水平的提高。因此,研究人员用U0126(一种高选择性的丝裂原活化蛋白激酶激酶(MEK)1/2(MAPK/ERK 激酶的一种)抑制剂)处理了培养3.5周的ReN-GA模型1.5周。在培养5周的ReN-GA模型中,U0126(25 μM)显著降低了总STAT3及其磷酸化形式(Tyr705处的磷酸化)的蛋白表达水平(图 6C),证明ERK活性调控STAT3蛋白表达。重要的是,U0126处理显著提高了 ReN-GA模型条件培养基中的secNEP活性和secNEP 蛋白水平,导致其培养基和细胞中的Aβ40和Aβ42水平降低(图6D、6E和S5C)。当同时用sacubitril处理来阻断NEP活性时,U0126降低条件培养基和细胞中Aβ42水平的作用就消失了(图6E)。这些发现表明,U0126降低Aβ水平需要增加secNEP活性。与Irisin相似,U0126处理并没有改变ReN-GA模型细胞中Nep的mRNA水平(图S5D)。研究人员进一步发现,U0126处理会增加hiPSC-Astro模型条件培养基中secNEP蛋白的水平,而会降低其胞裂解物中NEP的水平,这表明ERK抑制可能会促进星形胶质细胞分泌NEP(图S5E和S5F)。
值得注意的是,IL-6是NF-κB依赖性最强的细胞因子之一。研究人员发现在培养5周的3D-AD模型中抑制ERK导致其细胞中NF-κB p65蛋白表达减少和条件培养基中IL-6水平下调(图S5G和S5H)。这些结果表明,Irisin抑制了ERK-STAT3/NF-κB通路,提高了NEP的活性/水平,从而缓解3D-AD模型中Aβ病理变化(图7)。
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A1诱导剂可降低hiPSC-Astro模型细胞裂解物中的NEP水平
此前已有研究表明,NEP在斑块周围的GFAP+反应性星形胶质细胞中强表达。然而,本篇研究结果表明,Irisin处理后,星形胶质细胞的GFAP表达减少,NEP分泌增强(图4、图5、图6和图7)。还应注意的是,运动会增加NEP的活性,从而减弱星形胶质细胞的反应性。为进一步了解星形胶质细胞NEP 分泌与星形胶质细胞反应性之间的关系,研究人员用A1诱导剂处理hiPSC-Astro模型,这些诱导剂包括IL-1α (3ng/mL)、TNF-α (30ng/mL) 和C1q (400ng/mL) 重组蛋白。IL-1α、TNF-α和C1q能显著提高促炎细胞因子的水平,但C3的水平却没有提高,这一现象导致条件培养基和细胞裂解物中NEP和IDE蛋白表达水平没有变化(图 S6A-S6D)(小编注:早期反应性星形胶质细胞可分为A1型毒性星形胶质细胞(表达补体C3)和A2型保护性星形胶质细胞(不表达补体C3)。这里作者使用A1诱导剂处理hiPSC-Astro模型诱导细胞,尽管提高了促炎因子的表达,但C3水平没有提高,提示星形胶质细胞的反应性没有变化。因为NEP在反应性星形胶质细胞中强表达,所以NEP表达水平没有变化,下面的结果中作者使用了另一中A1诱导剂,显著提高了C3的表达,说明星形胶质细胞的反应性发生变化,进而NEP蛋白表达减少,说明星形胶质细胞NEP 分泌与星形胶质细胞反应性之间存在关系)。
有趣的是,当研究人员用IL-1β(10 ng/mL)和IFN-γ(10 ng/mL)联合IL-1α、TNF-α和C1q共同处理以诱导 C3+ A1 星形胶质细胞时(图S6E),他们观察到细胞裂解物中NEP蛋白表达减少,但在hiPSC-Astro条件培养基中没有减少(图S6E-S6G)。这些发现表明,尽管神经毒性A1星形胶质细胞中的胞内NEP已耗竭,但NEP 的分泌并未受到影响。
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Irisin能降低磷酸化tau水平
为了研究Irisin对tau磷酸化的影响,研究人员用Irisin处理培养3.5周的ReN-mGAP模型1.5周。Irisin(500 ng/mL)显著降低了培养5周ReN-mGAP模型中可溶于/不可溶于十二烷基肌氨酸钠(sarkosyl)配对螺旋样纤维(PHF)-1+磷酸化Tau(pTau)(Ser396/Ser404)的水平(图S7A和S7B),而pTau/总tau比值没有变化,这是因为Irisin处理有降低总tau水平的趋势(图S7C和S7D)。Irisin能显著降低PHF-1+ pTau水平(图S7E)。这些结果表明,Irisin具有缓解tau病变的潜力。
总结
阿尔茨海默病(AD)的病理标志是淀粉样蛋白-β(Aβ)在大脑中的沉积。研究表明,体育锻炼可减少各种阿尔茨海默病小鼠模型中的Aβ积累,但其潜在机制尚未阐明。Irisin是一种运动诱导激素,是Ⅲ型纤连蛋白域蛋白(FNDC5)的分泌形式。在这里,研究人员利用三维(3D)细胞培养模型研究发现,Irisin能增加星形胶质细胞释放Aβ降解酶NEP(neprilysin),从而显著减轻Aβ病理变化。在机制上,Irisin下调了ERK-STAT3信号传导。最后,他们发现整合素αV/β5是星形胶质细胞上的Irisin受体,Irisin诱导星形胶质细胞释放NEP,从而清除Aβ。作者的研究结果首次揭示了运动诱导的Irisin减轻Aβ病理变化的细胞和分子机制,为预防和治疗AD的疗法提出了一个新的靶点途径。
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代谢学人 The metabolist
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