单细胞尺度解析结直肠癌发生发展中肿瘤细胞与微环境的动态交互作用及其调控机制.docx

学术   2024-11-01 19:27   上海  

单细胞尺度解析结直肠癌发生发展中肿瘤细胞与微环境的动态交互作用及其调控机制

在探讨结直肠癌(Colorectal Cancer, CRC)的发生、发展及其与微环境之间的相互作用时,单细胞测序技术提供了一种强大的工具,能够揭示肿瘤微环境(Tumor Microenvironment, TME)中细胞的异质性和复杂性。通过分析单细胞水平的数据,研究者能够更深入地理解肿瘤细胞与周围细胞之间的相互作用,以及这些相互作用如何影响肿瘤的生物学行为和治疗反应。

  1. 肿瘤相关巨噬细胞(Tumor-Associated Macrophages, TAMs)的作用:TAMs是TME中的主要免疫细胞之一,它们在CRC的发展中扮演着重要角色。研究表明,TAMs通过分泌IL6调节STAT3/miR-506-3p/FoxQ1信号通路诱导CRC细胞的上皮-间质转化(Epithelial-Mesenchymal Transition, EMT),从而促进肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭[20]。此外,TAMs还能通过分泌其他因子如CCL2促进巨噬细胞的募集,进一步加剧肿瘤的进展[20]。

  2. 缺氧微环境的影响:缺氧是TME的一个重要特征,它能够影响肿瘤细胞的行为,包括促进EMT过程。研究发现,缺氧条件下CRC细胞分泌的外泌体miR-1255b-5p减少,而miR-1255b-5p在细胞间的传递作用减弱。干扰miR-1255b-5p可促进EMT、CRC进展和肝转移[19]。这表明缺氧微环境通过影响miR-1255b-5p的表达和功能,进而影响CRC细胞的EMT过程和肿瘤的转移能力。

  3. TGF-β1的作用:TGF-β1是一种多功能的细胞因子,它在CRC的发展中具有双重作用。一方面,TGF-β1在肿瘤早期具有抑癌作用,而在肿瘤晚期则发挥促癌作用。TGF-β1能够诱导癌相关成纤维细胞(Cancer-Associated Fibroblasts, CAFs)表达PGP9.5,从而促进CRC细胞的增殖和侵袭[18]。这一过程涉及到TGF-β信号通路,其中TGF-β通过Smad、ERK1/2和P13K通路调控CAFs中PGP9.5的表达[18]。

  4. 单细胞测序技术的应用:单细胞测序技术为研究CRC提供了新的视角。通过分析单细胞水平的数据,研究者能够揭示TME中细胞的异质性和复杂性。例如,单细胞转录组测序技术揭示了结直肠癌肿瘤相关巨噬细胞的图谱,为理解巨噬细胞在TME中的分布以及创建相关免疫疗法提供了参考[15]。此外,单细胞全外显子组测序技术在转移性结直肠癌克隆进化中的应用,为理解肿瘤的异质性和肿瘤转移的深层机制提供了新的见解[17]。

结直肠癌的发生和发展是一个复杂的多步骤过程,涉及到肿瘤细胞与TME中多种细胞之间的相互作用。通过单细胞测序技术的应用,研究者能够更深入地理解这些相互作用及其背后的分子机制,为开发新的治疗策略提供了重要的信息。

单细胞测序技术在结直肠癌研究中的最新进展是什么?

单细胞测序技术在结直肠癌研究中的最新进展主要体现在以下几个方面:

  1. 预后预测模型的建立:利用单细胞RNA测序技术,研究人员能够构建更为精确的结直肠癌预后预测模型。例如,通过筛选与结直肠癌转移相关的差异基因,并运用统计学方法如套索回归算法和Logistic回归,研究人员能够在TCGA数据库中验证这些基因与结直肠癌预后的相关性,从而建立更为稳定的预后预测模型[31]。

  2. 肿瘤内异质性的揭示:单细胞测序技术能够揭示结直肠癌中的肿瘤内异质性,这对于理解肿瘤的生物学特性和发展个性化治疗方案至关重要。例如,通过单细胞测序,研究人员能够鉴定出结直肠癌肿瘤中的不同癌细胞组成及邻近的非癌细胞,这对于肿瘤靶向诊断和治疗具有重要意义[34]。

  3. 细胞异质性的深入研究:单细胞转录组测序技术的应用使得研究人员能够更深入地研究结直肠癌中的细胞异质性。通过生物信息学分析,研究人员能够鉴定出结直肠癌中的不同细胞类型和亚型,进而找到与疾病相关的信号通路,这对于临床诊断和预后检测具有重要意义[35]。

  4. 治疗效果的分子机制研究:单细胞测序技术还被用于研究结直肠癌治疗效果的分子机制。例如,通过结合单细胞转录组学和全外显子组测序技术,研究人员能够揭示mXELIRI疗法在临床上应用中的新潜在靶点,如KRAS突变的肿瘤上皮细胞簇和与WNT信号通路活性呈负相关的LCN2基因[36]。

肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)在结直肠癌微环境中的具体作用机制有哪些?

肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)在结直肠癌(CRC)微环境中的具体作用机制主要包括以下几个方面:

  1. 促进肿瘤生长和转移:TAMs通过分泌多种细胞因子、趋化因子和蛋白酶,促进肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭。这些细胞因子和趋化因子包括但不限于IL-10、VEGF等,它们能够促进肿瘤细胞的生长、血管生成和免疫抑制[42][44][47]。

  2. 免疫抑制:TAMs通过分泌免疫抑制因子如IL-10、TGF-β等,抑制抗肿瘤免疫反应,从而为肿瘤细胞提供一个有利的微环境,促进肿瘤的生长和转移[42][44]。

  3. 促进血管生成:TAMs通过分泌血管生成相关的因子如VEGF等,促进肿瘤内血管的生成,为肿瘤细胞提供必要的氧气和营养物质,从而促进肿瘤的生长和转移[42][44]。

  4. 化疗耐药:TAMs通过分泌一些能够抑制化疗药物效果的因子,如P-glycoprotein等,增加肿瘤细胞对化疗药物的耐药性,从而降低化疗的效果[44]。

  5. Wnt5a信号通路的调控作用:Wnt5a信号通路在TAMs的M2极化中起着重要作用,通过调控Ca2+-ERK1/2-STAT3通路介导的IL-10分泌,诱导TAM向M2极化,进而促进结直肠肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭[47]。

  6. 靶向治疗策略:针对TAMs的靶向治疗策略包括使用小分子抑制剂或抗体直接作用于TAMs,或者通过改变TAMs的极化状态来减少其促肿瘤作用。此外,还可以通过靶向TAMs相关的信号通路如NFKB1、STAT3、WNT5A和PI3K等来调控TAMs的功能[41][43]。

缺氧微环境如何通过影响miR-1255b-5p的表达和功能促进结直肠癌的EMT过程和肿瘤转移?

缺氧微环境通过影响miR-1255b-5p的表达和功能,促进结直肠癌的EMT过程和肿瘤转移的机制可以从以下几个方面进行解析:

  1. 缺氧对miR-1255b-5p表达的影响:缺氧条件下,结直肠癌细胞中miR-1255b-5p的分泌受到抑制,导致其在细胞外的含量减少[50]。这种减少的miR-1255b-5p通过靶向人端粒酶逆转录酶(hTERT),抑制Wnt/β-catenin信号通路的激活,从而抑制EMT过程[50]。这表明缺氧通过降低miR-1255b-5p的表达,间接促进了EMT的发生。

  2. miR-1255b-5p在EMT中的作用:miR-1255b-5p通过抑制hTERT表达,进而抑制Wnt/β-catenin信号通路的激活,从而抑制EMT过程[50]。这一作用机制揭示了miR-1255b-5p在调节结直肠癌细胞EMT过程中的重要作用。

  3. 缺氧与EMT的关系:缺氧是肿瘤微环境的一个重要特征,能够诱导EMT的发生[56]。EMT是肿瘤细胞获得侵袭和转移能力的关键过程。缺氧通过激活HIF-1α等转录因子,影响多种信号通路,包括TGF-β、Notch、Wnt/β-catenin等,从而促进EMT的发生[56]。

  4. miR-1255b-5p与HIF-1α的关系:虽然直接证据不足,但考虑到HIF-1α在缺氧条件下的高表达与EMT的发生密切相关[58],以及miR-1255b-5p在调节EMT过程中的作用[50],可以推测miR-1255b-5p可能通过影响HIF-1α的表达或活性,间接参与了缺氧条件下EMT的调控。

缺氧微环境通过降低miR-1255b-5p的表达,减少其对hTERT的抑制作用,从而促进Wnt/β-catenin信号通路的激活,进而促进结直肠癌细胞的EMT过程和肿瘤转移[50]。

TGF-β1在结直肠癌发展中的双重作用及其调控机制是什么?

转化生长因子β1(TGF-β1)在结直肠癌(CRC)发展中的作用具有双重性,既表现为肿瘤抑制因子,也表现为肿瘤促进因子。这种双重作用的调控机制涉及多个信号通路和分子机制。

  1. 肿瘤抑制作用

  • TGF-β1通常被认为是一种肿瘤抑制因子,能够通过诱导细胞周期停滞、促进细胞凋亡和抑制细胞增殖来抑制肿瘤的发展[68]。

  • 在正常情况下,TGF-β1通过激活SMAD4依赖的信号通路,抑制细胞增殖和促进细胞分化[66]。

  1. 肿瘤促进作用

  • 当SMAD4基因发生突变或表达缺失时,TGF-β1的功能从抑制转变为促进肿瘤发展。在这种情况下,TGF-β1通过激活其他信号通路如ERK1/2 MAPK信号通路,促进细胞增殖和肿瘤生长[68]。

  • TGF-β1还能通过增加血管内皮生长因子(VEGF)的表达,促进肿瘤血管形成,从而支持肿瘤的生长和转移[69]。

  • 在某些情况下,TGF-β1还能通过降低E-钙黏蛋白(E-cadherin)的表达,增加细胞的侵袭性和迁移能力,进一步促进肿瘤的转移[60]。

  1. 调控机制

  • TGF-β1的作用受到多种因素的调控,包括基因多态性、信号通路的激活状态以及与其他分子的相互作用。例如,TGF-β1基因-509C/T多态性与结直肠癌的发病具有相关性,携带T等位基因的个体可能通过促进TGF-β1的高度表达进而增加了结直肠癌的发病风险[63][67]。

  • TGF-β1与VEGF的表达呈正相关,而Smad4与TβRⅡ的表达呈正相关,Smad4与VEGF的表达呈负相关,这表明TGF-β1在调控肿瘤微环境中扮演着复杂的角色[66]。

总结来说,TGF-β1在结直肠癌中的作用是复杂的,其功能取决于多种因素,包括SMAD4的状态、基因多态性以及其他信号通路的激活状态。

结直肠癌中肿瘤细胞与微环境细胞之间的相互作用如何影响肿瘤的生物学行为和治疗反应?

结直肠癌(Colorectal Cancer, CRC)中肿瘤细胞与微环境细胞之间的相互作用对肿瘤的生物学行为和治疗反应具有深远的影响。这种相互作用不仅影响肿瘤的生长、侵袭和转移,还决定了肿瘤对治疗的反应。

肿瘤细胞与微环境细胞之间的相互作用通过多种机制影响肿瘤的生物学行为。例如,肿瘤细胞通过分泌细胞因子、生长因子和外泌体等可溶性因子,以及通过直接细胞-细胞接触,与周围的肿瘤相关成纤维细胞(Cancer-Associated Fibroblasts, CAFs)、肿瘤相关巨噬细胞(Tumor-Associated Macrophages, TAMs)、肿瘤相关中性粒细胞(Tumor-Associated Neutrophils, TANs)、髓样抑制细胞(Myeloid-Derived Suppressor Cells, MDSCs)、调节性T细胞(Regulatory T cells, Tregs)、间充质干细胞(Mesenchymal Stem Cells, MSCs)、肿瘤相关脂肪细胞(Cancer-Associated Adipocytes, CAAs)和肿瘤内皮细胞(Tumor Endothelial Cells, TECs)等进行复杂的信号交流[72]。这些相互作用可以促进肿瘤细胞的代谢重编程,如Warburg效应,即在有氧条件下优先进行糖酵解而非氧化磷酸化,从而为肿瘤细胞提供能量并支持其生存和增殖[70]。

此外,肿瘤微环境中的低氧和酸性环境也对肿瘤细胞的生物学行为产生重要影响。低氧环境可以促进肿瘤细胞的血管生成和侵袭能力,而酸性环境则有助于肿瘤细胞的转移和耐药性[73]。这些改变不仅影响肿瘤细胞本身的特性,还通过重塑微环境来促进肿瘤的进展和转移[76]。

在治疗反应方面,肿瘤微环境中的各种细胞和因子也起着关键作用。例如,CD8+T细胞是结直肠癌中主要的效应细胞,但常常因为肿瘤微环境中各种抑制性因子的作用而处于功能失活状态[78]。这种功能失活限制了免疫治疗的效果,因此了解CD8+T细胞与肿瘤微环境中的相互作用对于开发更有效的治疗策略至关重要。

此外,肿瘤微环境中的微生物群落也通过分泌代谢产物影响肿瘤免疫微环境。这些代谢产物可以增强宿主免疫系统的功能,从而提高癌症免疫治疗的效果[74]。这表明,通过调节肿瘤微环境中的微生物群落,可能为癌症治疗提供新的策略。

总之,结直肠癌中肿瘤细胞与微环境细胞之间的相互作用通过多种机制影响肿瘤的生物学行为和治疗反应。

脑图

相关事件

事件名称

事件时间

事件概述

类型

结直肠癌上皮组织与微环境细胞相互作用模式研究

2022-05-01

通过激光捕获显微切割技术获取结直肠癌的TME组分和上皮实质,发现肿瘤细胞、TAM与CAF存在协调促进作用,提示在CRC治疗上开发药物靶点时可关注在此作用网络。

科研进展

肿瘤微环境与结直肠癌干性调节相互作用的研究进展

2019-11-19

提出TME参与CRC复发、转移的根源,并探讨了TME如何参与CCSC干性调节及肿瘤细胞去分化过程中的作用。

科研进展

慢性酸性微环境下结直肠癌细胞代谢重塑及机制研究

2022-06-01

研究揭示了慢性酸性微环境下结直肠癌细胞的代谢重塑,包括谷氨酰胺代谢、脂肪酸合成等多个方面,以及线粒体功能对肿瘤细胞生存的影响。

科研进展

结肠癌细胞对酸性微环境的适应及其机制研究

2016-05-19

研究表明肿瘤细胞在酸性微环境中存活的具体机制,以及TGF-β1和PGP9.5在促进或抑制结直肠癌细胞增殖、侵袭中的作用。

科研进展

相关组织

组织名称

概述

类型

Gene Expression Omnibus (GEO)

一个存储和分析基因表达数据的数据库,用于生物信息学研究。

科学研究/生物信息学

欧洲分子生物学实验室 (EMBL)

一个致力于生命科学研究的国际性科研机构,提供单细胞ATAC测序数据。

科学研究/生物技术

世界卫生组织 (WHO)

一个负责国际公共卫生的联合国专门机构,发布《世界癌症报告》。

国际组织/公共卫生

参考文献

1. Dominique C. Hinshaw, L. Shevde. “The Tumor Microenvironment Innately Modulates Cancer Progression..” Cancer research(2019).

2. 徐琪,禹雷,潘涛等.基于单细胞多组学数据解析结直肠癌动态调控扰动[J].海南医学,2024.

3. L. Ermini, S. Taurone et al. “Cancer progression: a single cell perspective..” European review for medical and pharmacological sciences(2023).

4. Nao Nishida-Aoki, Taranjit S. Gujral. “Emerging approaches to study cell–cell interactions in tumor microenvironment.” Oncotarget(2019).

5. 沈容芳.结直肠癌上皮组织与微环境细胞相互作用模式研究[D].北京协和医学院,2022.

6. 祖玥,戴玲玲,孟鹏等.肿瘤微环境在结直肠癌转移中的动态演变过程                                                                                                            附视频[J].中国临床研究,2024.

7. 周彦彤,李春晓,王劲松等.单细胞转录组测序分析结肠癌微环境中免疫细胞亚群与癌症进程的关系[J].解放军医学杂志,2021.

8. 牟兰兰,高璐,朱蓉等.肿瘤微环境与结直肠癌干性调节相互作用的研究进展[J].中国全科医学,2019.

9. 刘晓洁.慢性酸性微环境下结直肠癌细胞代谢重塑及机制研究[D].苏州大学,2022.

10. C. Mierke. “The matrix environmental and cell mechanical properties regulate cell migration and contribute to the invasive phenotype of cancer cells.” Reports on Progress in Physics(2019).

11. Sabina Sanegre, Federico Lucantoni et al. “Integrating the Tumor Microenvironment into Cancer Therapy.” Cancers(2020).

12. Ji-Yong Sung, J. Cheong. “Single Cell Analysis Reveals Reciprocal Tumor-Macrophage Intercellular Communications Related with Metabolic Reprogramming in Stem-like Gastric Cancer.” Cells(2022).

13. John Metzcar, Yafei Wang et al. “A Review of Cell-Based Computational Modeling in Cancer Biology.” JCO Clinical Cancer Informatics(2019).

14. 赵敏楠.结肠癌细胞对酸性微环境的适应及其机制研究[D].山东大学,2016.

15. 颜培东.基于单细胞转录组构建结直肠癌肿瘤相关巨噬细胞图谱[D].哈尔滨工业大学,2020.

16. A. Sathe, Susan M. Grimes et al. “Single-Cell Genomic Characterization Reveals the Cellular Reprogramming of the Gastric Tumor Microenvironment.” Clinical Cancer Research(2019).

17. 王智锋.单细胞全外显子组测序在转移性结直肠癌克隆进化中的初步应用[D].华南理工大学,2019.

18. 温伟.TGF-β1诱导CAFs表达PGP9.5促进结直肠癌细胞增殖侵袭的研究[D].大连医科大学,2016.

19. 张雪.缺氧微环境结直肠癌分泌外泌体miRNA对肿瘤侵袭转移及端粒酶的影响及机制研究[D].武汉大学,2020.

20. 魏辰.肿瘤相关巨噬细胞在间质型循环肿瘤细胞介导结直肠癌转移中的临床意义及具体机制研究[D].武汉大学,2019.

21. Vikrant Kumar, Kalpana Ramnarayanan et al. “Single-Cell Atlas of Lineage States, Tumor Microenvironment, and Subtype-Specific Expression Programs in Gastric Cancer.” Cancer Discovery(2021).

22. 王华阳.CSF1对结肠癌细胞与肿瘤浸润巨噬细胞相互作用的影响及瘦素对人绒毛外滋养细胞侵袭活性的调节及相关机制研究[D].山东大学,2016.

23. 曾渝,陈磊.大规模单细胞测序数据揭示结直肠癌中肠道内分泌细胞生理机制的改变与潜在临床应用价值[J].现代免疫学,2023.

24. 徐丽怡.MicroRNA-1290在结直肠癌中的诊断意义及其参与免疫抑制性微环境形成的作用机制研究[D].浙江大学,2021.

25. 沈平,王欢,薛雨晴等.结直肠癌组织联合单细胞转录组测序筛选结直肠癌特异性细胞通讯[J].牡丹江医学院学报,2024.

26. 周娜.ISG15抑制微环境CD8细胞的聚集与结直肠癌的不良预后有关[D].南方医科大学,2016.

27. 陈琴,陈琦,罗鹏等.单细胞测序技术在结肠炎相关性肠癌中的应用研究进展                         附视频[J].医学研究杂志,2024.

28. 周文婧.肿瘤微环境中基质成纤维细胞与人结直肠癌细胞的相互作用及其机制研究[D].山东大学,2016.

29. 李佳鑫,孙燕.结直肠癌免疫微环境中肿瘤相关巨噬细胞的作用[J].中国肿瘤临床,2020.

30. 冯娜.初步探讨IFNβ/ISG15/B7H4在结直肠癌中的细胞免疫抑制机制[D].南方医科大学,2015.

31. 1. 上海交通大学医学院附属仁济医院消化科2. 上海交通大学医学院附属仁济医院胃肠外科.基于单细胞RNA测序的结直肠癌预后预测模型的建立和验证[J].上海交通大学学报(医学版),2021.

32. 1. 天津医科大学肿瘤医院,国家肿瘤临床医学研究中心,天津市“肿瘤防治”重点实验室,天津市恶性肿瘤临床医学研究中心结直肠肿瘤科2. 天津医科大学肿瘤医院,国家肿瘤临床医学研究中心,天津市“肿瘤防治”重点实验室,天津市恶性肿瘤临床医学研究中心感染管理科.单细胞测序技术及其在结直肠癌中的应用[J].天津医药,2021.

33. H. Sung, J. Ferlay et al. “Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries.” CA: A Cancer Journal for Clinicians(2021).

34. Nat Genet:单细胞分析解开结直肠癌细胞的神秘面纱[J].现代生物医学进展,2017.

35. 丁蕾.应用单细胞测序技术研究结直肠癌中的细胞异质性[D].上海交通大学,2020.

36. 王敏辉.单细胞测序揭示WNT信号通路对结直肠癌mXELIRI疗法的结局存在负面影响.2024中国肿瘤标志物学术大会暨CACA整合肿瘤学高峰论坛暨第十七届肿瘤标志物青年科学家论坛暨中国肿瘤标志物产业创新大会论文集,2024.

37. Xiaoyan Zhang, S. Marjani et al. “Single-Cell Sequencing for Precise Cancer Research: Progress and Prospects..” Cancer research(2016).

38. Zhenlian Xie, Jincheng Li et al. “Applications and Achievements of Single-Cell Sequencing in Gastrointestinal Cancer.” Frontiers in Oncology(2022).

39. Patrik L. Ståhl, Fredrik Salmén et al. “Visualization and analysis of gene expression in tissue sections by spatial transcriptomics.” Science(2016).

40. Theerawut Chanmee, Pawared Ontong et al. “Tumor-Associated Macrophages as Major Players in the Tumor Microenvironment.” Cancers(2014).

41. Yitong Li, Zhenmei Chen et al. “Functional and Therapeutic Significance of Tumor-Associated Macrophages in Colorectal Cancer.” Frontiers in Oncology(2022).

42. Shunyao Zhu, Ziyi Luo et al. “Tumor-associated macrophages: role in tumorigenesis and immunotherapy implications.” Journal of Cancer(2021).

43. A. J. Petty, D. Owen et al. “Targeting Tumor-Associated Macrophages in Cancer Immunotherapy.” Cancers(2021).

44. G. Aliev, Siva Dallavalasa et al. “The Role of Tumor Associated Macrophages (TAMs) in Cancer Progression, Chemoresistance, Angiogenesis and Metastasis - Current Status..” Current medicinal chemistry(2021).

45. 魏颖婷,赵逵.结直肠癌的治疗:以肿瘤相关巨噬细胞为靶点的新观点[J].海南医学,2021.

46. 张妍生,王雅楠,高峰.M1/M2型巨噬细胞在调控结直肠癌肿瘤微环境中的研究进展[J].现代医药卫生,2022.

47. 刘庆.Wnt5a调控肿瘤相关巨噬细胞的极化以及促进结直肠癌侵袭转移的机制研究[D].武汉大学,2020.

48. 李琳琳,李春深,张帅.靶向肿瘤相关巨噬细胞治疗结直肠癌的研究进展[J].癌症,2024.

49. Yue Shen, Jia-Xi Chen et al. “Role of tumor-associated macrophages in common digestive system malignant tumors.” World Journal of Gastrointestinal Oncology(2023).

50. Xue Zhang, Jian Bai et al. “Exosomal miR‐1255b‐5p targets human telomerase reverse transcriptase in colorectal cancer cells to suppress epithelial‐to‐mesenchymal transition.” Molecular Oncology(2020).

51. Guangyuan Song, Hongchen Zhang et al. “miR-551b regulates epithelial-mesenchymal transition and metastasis of gastric cancer by inhibiting ERBB4 expression.” Oncotarget(2017).

52. Jinbao Guo, B. Wang et al. “Hypoxic Microenvironment Induces EMT and Upgrades Stem-Like Properties of Gastric Cancer Cells.” Technology in Cancer Research & Treatment(2016).

53. P. Chanvorachote, V. Pongrakhananon et al. “Prolonged Nitric Oxide Exposure Enhances Anoikis Resistance and Migration through Epithelial-Mesenchymal Transition and Caveolin-1 Upregulation.” BioMed Research International(2014).

54. Guoliang Han, Jian Wang et al. “miRNA-574-5p downregulates ZNF70 and influences the progression of human esophageal squamous cell carcinoma through reactive oxygen species generation and MAPK pathway activation.” Anti-Cancer Drugs(2020).

55. Jialin Song, Zaihuan Lin et al. “MiR‐192‐5p/RB1/NF‐κBp65 signaling axis promotes IL‐10 secretion during gastric cancer EMT to induce Treg cell differentiation in the tumour microenvironment.” Clinical and Translational Medicine(2022).

56. 陈杨,石燕,戴广海.HIF诱导EMT在肿瘤侵袭转移中的作用[J].中南大学学报(医学版),2016.

57. Yuyu Zhang, W. Huo et al. “Targeting miR-148b-5p Inhibits Immunity Microenvironment and Gastric Cancer Progression.” Frontiers in Immunology(2021).

58. 郭靖.结肠癌及缺氧的结肠癌细胞中HIF-1α与miRNA-200b表达的相关性[D].第三军医大学,2016.

59. miR-181b-5p mediates TGF-β1-induced epithelial-to-mesenchymal transition in non-small cell lung cancer stem-like cells derived from lung adenocarcinoma A549 cells.International Journal of Oncology(2017).

60. 阮洪训,秦晓宁,黄炜等.TGF-β1对结直肠癌细胞株侵袭转移及IL-22表达的影响[J].天津医药,2019.

61. F. Bray, J. Ferlay et al. “Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries.” CA: A Cancer Journal for Clinicians(2018).

62. 解广东,王本军,韩玮玮等.结直肠癌组织TGF-β1表达水平与肿瘤细胞免疫逃逸的关系[J].山东医药,2018.

63. 唐任光,韦道文,吕建生等.转化生长因子β1基因多态性与结直肠癌的关系[J].中国老年学杂志,2014.

64. 范秋虹,冯一中,徐永兴.转化生长因子-β1在结直肠癌中的表达及与预后的关系[J].中华消化杂志,2006.

65. A. Jemal, F. Bray et al. “Global cancer statistics.” CA: A Cancer Journal for Clinicians(2011).

66. 潘元青,孙少华,马岚.TGF-β1信号通路异常与直肠癌恶性演进关系的研究[J].肿瘤防治杂志,2004.

67. 韦良宏,陈凤坤,谭宗群等.转化生长因子-β1基因多态性与结直肠癌关系的研究[J].肿瘤,2007.

68. G. Sun, Dachun Cao et al. “TGF-β promotes colorectal cancer cell growth in vitro and in vivo..” Hepato-gastroenterology(2013).

69. 皖南医学院病理学教研室皖南医学院附属二院外科皖南医学院附属弋矶山医院病理科皖南医学院病理学教研室 芜湖241001芜湖241000.结直肠癌中TGF-β1表达与肿瘤浸润转移和血管形成的关系[J].临床与实验病理学杂志,2004.

70. C. R. Justus, E. Sanderlin et al. “Molecular Connections between Cancer Cell Metabolism and the Tumor Microenvironment.” International Journal of Molecular Sciences(2015).

71. Fern Anari, C. Ramamurthy et al. “Impact of tumor microenvironment composition on therapeutic responses and clinical outcomes in cancer..” Future oncology(2018).

72. Yanghong Ni, Xiaoting Zhou et al. “The Role of Tumor-Stroma Interactions in Drug Resistance Within Tumor Microenvironment.” Frontiers in Cell and Developmental Biology(2021).

73. N. Jagannathan, Z. Bhujwalla. “Tumor microenvironment in cancer treatment and metastasis.” NMR in Biomedicine(2011).

74. Maik Luu, B. Schütz et al. “The Impact of Gut Microbiota-Derived Metabolites on the Tumor Immune Microenvironment.” Cancers(2023).

75. Wan Zhang, Peng Huang. “Cancer-stromal interactions.” Cancer Biology & Therapy(2011).

76. Nilu Dhungel, A. Dragoi. “Exploring the multifaceted role of direct interaction between cancer cells and fibroblasts in cancer progression.” Frontiers in Molecular Biosciences(2024).

77. H. Sawayama, T. Ishimoto et al. “Microenvironment in the pathogenesis of gastric cancer metastasis.” Journal of Cancer Metastasis and Treatment(2018).

78. 刘天宇,陆晨,鄂一民等.结直肠癌肿瘤微环境中CD8+T 细胞研究进展                                                                                                                        附视频[J].中国肿瘤外科杂志,2024.

AUTUMN

 免费为大家做一份SCI文章或国自然研究选题,提供10个选题(包含题目,背景,创新点,拟解决的问题),帮你拓展科研思路。

只要扫码私信发给我们:研究方向与核心关键词就可做。


 

研究进展报告案例两份示图


单细胞班的学员可以免费选择一个,非单细胞班的学员完成分享微信朋友圈后免费选一个,扫码发分享截屏领取

 国自然试听课来扫码申请!

 

 

 本次国自然试听课全程录像,如需要回看录像的,请扫码下方二维码免费领取


生物医学科研之家
医药加旗下订阅号,致力于提高中国生物医药科研人员的创新能力。医药加网络课堂与视频号做技术分享,再通过实操学习班做科研培训!医药加通过20多门课程已经培训出上万学员,上百位国自然小同行评审专家,为广大学员,做一对一评审与修改。
 最新文章