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**诱导多能干细胞(iPSC)的获取与处理:**首先,从参与者提供的外周血样本中获得诱导多能干细胞(iPSC)。这些细胞被处理成单细胞悬浮液,为后续的类器官培养做准备。
**胚胎体(EB)的形成:**将大约9000个iPSC细胞种植在低粘附性的96孔板中,每孔100微升的胚胎体(EB)培养基,该培养基包含mTeSR 1(干细胞培养基)和50微摩尔的Y27632(一种ROCK抑制剂,用于提高细胞存活率)。
**EB的培养与神经诱导:**每两天更换一次培养基以支持EB的生长和发育。当EB直径达到500-600微米且边界清晰时,将其转移到低粘附性的24孔板中,并加入1毫升的神经诱导培养基,以诱导原始神经上皮细胞的分化。
**静态培养与维生素A的添加:**在不含维生素A的培养基中静态培养4天后,将类器官转移到含有维生素A的培养基中,继续培养直至使用。
**研究TBEV感染对神经发育的影响:**类器官包含了多种类型的脑细胞,能够模拟TBEV感染对神经发育和功能的影响。
**评估TBEV感染引起的神经病理变化:**通过观察感染前后类器官的形态和分子变化,研究人员可以了解TBEV感染引起的神经病理变化。
**测试抗病毒药物的效果:**利用类器官模型,研究人员可以测试不同抗病毒药物对TBEV感染的抑制效果,为药物筛选和治疗策略的开发提供重要信息。
**探索TBEV感染的分子机制:**类器官提供了一个复杂的细胞环境,有助于揭示TBEV感染的分子机制,包括病毒如何与宿主细胞相互作用,以及如何影响细胞信号通路。
多组学整合分析方法:该研究采用了一种综合的多组学方法,包括蛋白质组学、磷酸化蛋白质组学和乙酰化蛋白质组学,来全面分析TBEV感染对宿主细胞的影响。这种方法允许研究者从多个层面理解病毒感染的复杂性,揭示了宿主细胞响应的全貌。
揭示TBEV感染的新分子机制:通过多组学分析,研究揭示了TBEV感染对宿主细胞固有免疫反应、核糖体生物合成、自噬和DNA损伤反应的影响,特别是发现NS5蛋白和prM蛋白在病毒感染中的关键作用,这些发现为理解TBEV的致病机制提供了新的视角。
药物筛选与潜在治疗靶点的识别:研究不仅停留在分子机制的探索,还进一步通过药物筛选实验验证了这些分子事件在TBEV感染中的重要性,并识别了潜在的抗病毒治疗靶点,这为开发新的治疗策略提供了直接的实验依据。
类器官模型的应用:该研究利用类器官模型模拟真实的大脑环境,研究TBEV对神经细胞的影响,这增加了研究的临床相关性,并为研究TBEV的神经致病性提供了一个强有力的工具。
跨学科合作:这项研究涉及病毒学、细胞生物学、分子生物学和药理学等多个学科的交叉合作,体现了现代科学研究中跨学科合作的重要性和创新性。
样本和模型的局限性:研究主要依赖于体外细胞培养和类器官模型,这些模型虽然能够提供有价值的信息,但它们可能无法完全复制人体内复杂的生理和病理环境。因此,研究结果的外推性和临床相关性可能受到限制。
药物筛选的深度和广度:虽然研究筛选了一些药物对TBEV的抑制效果,但药物库可能还不够全面,未能涵盖所有潜在的抗病毒药物。此外,药物的作用机制和长期效果尚未在体内模型中得到充分验证。
病毒与宿主相互作用的复杂性:TBEV与宿主细胞的相互作用极为复杂,涉及众多分子和信号通路。当前研究虽然揭示了一些关键分子事件,但仍有许多未知的相互作用和调控机制需要进一步探索。
长期影响和副作用评估不足:研究主要集中在TBEV感染的急性期效应,对于感染后长期影响和潜在副作用的评估不足。这对于理解病毒的慢性影响和制定长期治疗策略至关重要。
个体差异和宿主遗传背景考虑不足:研究未能充分考虑不同个体间的遗传差异和宿主因素对TBEV感染和治疗响应的影响。个体差异可能会显著影响病毒的感染动态和治疗效果。
这项研究通过多组学分析深入揭示了蜱传脑炎病毒(TBEV)感染对宿主细胞蛋白质组、磷酸化和乙酰化状态的影响,不仅增进了我们对TBEV致病机制的理解,而且为开发新的抗病毒治疗策略提供了潜在靶点和药物,具有重要的科学价值和临床意义。此外,该研究还利用类器官模型模拟TBEV对神经细胞的影响,为研究TBEV的神经致病性提供了强有力的工具,进一步强调了其在推动TBEV研究和治疗领域的重要作用。
肠道类器官(Organoid Bulletin)
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建立国内外公认一流的类器官专业咨询机构和类器官库,促进转化医学与精准医学发展。
推动生物材料和工程技术在干细胞与类器官领域的应用与发展。
推动技术进步,推动类器官技术与产品在临床与基础研究中的规模化应用。
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如何加入
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