抗体的组装概述
抗体是由2条重链（HCs）和2条轻链（LCs）组成，它们的正确折叠和组装是产生抗体的细胞分泌的先决条件。这些细胞的内质网质量控制（ERQC）机制确保只分泌正确组装的Ig分子，从而防止错误折叠和错误组装的免疫球蛋白（Ig）蛋白的分泌。ERQC机制在IgG同型中得到了最广泛的研究。新合成的Ig链首先通过链间二硫键在ER中以γ-H链（γ-hc）二聚体的形式组装。这些HC二聚体的cγ-1结构域保持未展开状态，并被分子伴侣子BiP保留在ER中，直到它通过与CL结构域的相互作用与两个折叠的LCs共价结合。折叠的CL结构域与Cγ1结构域的相互作用释放BiP，诱导Cγ1结构域的完全折叠和氧化，从而使HC和LC在分泌前组装成IgG（H2L2）结构。
（数据来源 Feige MJ, et al. Biochim Biophys Acta. 2014）
VH和VL配对对于IgG的组装和分泌是不必要的
研究人员通过使用单载体策略生成结构域删除的变体来共表达HC和LC。随后，在还原和非还原变性条件下分析转染细胞的裂解物和上清液。结果显示，与野生型IgG HC相比，在没有VH、VL或两个结构域的情况下，HC和LC的表达水平相似。对上清液的分析表明，缺乏VH、VL或两个结构域的Igs以完全组装的形式分泌。这表明VH和VL链或它们的配对形式（VH/VL）对IgG的分泌能力而言并非必需。相反，Cγ1和Cκ结构域才是决定因素。
异常ψVκ结构域破坏Ig分泌
通过使用来自2C281杂交瘤克隆的伪型Vκ（ψVκ）取代了天然的Vκ结构域，其特征是由于CDR3的帧移突变而缺失FR4片段。鉴于FR4恰好位于Cκ结构域的上游，可以推测它对Cκ结构有重大影响。将携带ψVκ的LC命名为ψLC。然后研究了它们在四种HEK293细胞转染物上清中的分泌情况：（HC+LC）、（Cγ1-3链+LC）、（HC+ψLC）和（Cγ1-3链+ψLC）。发现当HCs和ψLC共表达时，无论是单独的，作为组装中间体，还是以完全组装的形式，它们都不会分泌到培养上清中。ψVκ结构域的异常会导致下游Cκ结构发生不利变化，阻碍BiP从Cγ1链上的解离，进而影响Cγ1链的正确折叠，最终导致完整IgG抗体无法分泌。
异常Vκ结构域阻止LC与HC结合
研究人员通过评估四种HEK293细胞转染物（HC+LC）、（Cγ1-3链+LC）、（HC+ψLC）和（Cγ1-3链+ψLC）的表达和组装，在细胞裂解物中，HC和ψLC的共价装配效率低于野生型IgG，可以观察到150 kDa IgG条带的减弱，以及出现多个大于IgG分子量的模糊蛋白条带。免疫共沉淀和ELISA分析进一步证实，与野生型LC相比，ψLC与HC（或Cγ1-3链)的结合效率降低了52%和40%。异常的ψVκ结构域导致了LC与HC之间的结合效率降低，从而阻碍了完整IgG的正常装配和分泌。
ψLC与BiP相互作用
在稳定表达融合HA标签的BiP细胞系中，转染编码wtLC、ψLC和Cκ的基因，与野生型HEK293细胞（仅含有内源性BiP）相比，用BiP-HA慢病毒颗粒转导的HEK293细胞的BiP表达（内源性BiP和BiP-HA）增加了1.5倍。发现无论HC是否存在，ψLC本质上无法分泌。观察到wtLC以单体和二聚体形式分泌，而Cκ则以二聚体形式分泌。与wtLC（Vκ-Cκ）不同，在没有HC表达的情况下，单个Cκ结构域的分泌水平几乎无法检测到。关于细胞表达，ψLC表现出比wtLC更高的表达。通过免疫共沉淀发现在细胞内，ψLC稳定地与BiP结合。表明VL结构域决定了BiP/LC复合物的物理稳定性。通过蛋白酶敏感性试验，以比较细胞中wtLC和ψLC的折叠状态，ψLC的降解速度比wtLC更快，表明与wtLC相比，ψLC处于非结构化状态。
ψVκ引起Fab结构改变
使用Discovery Studio 2020软件生成wt Fab和ψFab蛋白的三维结构；然后通过测量均方根偏差（RMSD）和Fab肘角与野生型Fab相比，发现ψFab的根均方偏差（RMSD）达到了18.3115 Å，表明两者的结构存在明显差异；野生型Fab的铰链角（elbow angle）为146°，而ψFab的铰链角为194°。这表明ψVκ域的引入导致了V区和C区域之间的相对位置发生了显著变化，整体Fab结构发生了重大重排。ψVκ域的异常结构导致了Fab整体构象的严重扭曲，这可能是导致含有ψLC的抗体无法正确折叠和分泌的重要原因。
小结
本文发现VH-VL配对对IgG1装配和分泌并非必需，控制IgG组装和分泌的关键因素是IgG分子内的CH -CL配对，VL区域的结构完整性对IgG分泌不可或缺。这些发现为设计基于IgG的生物活性分子提供了有价值的见解。
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