在流式细胞术实验中,制备组织单细胞悬液是至关重要的步骤。此过程涉及将组织进行切割、酶促消化以及机械分离,旨在分解基质成分并裂解细胞间连接的同时,确保保留细胞的活性以及相关抗原。通过这种方法,可以成功分离出单细胞,以便获得高质量的流式细胞术数据。
二、组织单细胞悬液制备关键步骤和酶的种类
分散酶(Dispase):一种具有高特异性的中性蛋白酶,主要针对IV型胶原和纤维连接蛋白进行作用,帮助分离细胞和解离组织块。然而,需注意的是,它可能会裂解某些表面分子或抗原。 胶原酶(Collagenase):能够断裂胶原中的肽键,有助于消化细胞外基质并释放细胞。 透明质酸酶(Hyaluronidase):降解细胞外基质中的透明质酸。 木瓜蛋白酶(Papain):可以降解紧密结合的蛋白质,但可能导致细胞裂解和DNA释放,进而引发细胞粘连。 脱氧核糖核酸酶(DNase-I):用于降解游离的DNA,以防止细胞粘连,而不影响细胞的凋亡路径。
在制备组织单细胞悬液的过程中,酶消化是一个关键步骤,需要注意以下几点:
酶的最佳浓度和强度:酶的浓度一定要适宜,过高的浓度可能会影响细胞表面标志物的完整性,从而影响这些标志物在后续实验中的可用性与细胞活性。因此,在处理粘附能力不强的细胞(如淋巴细胞)时,建议使用较短的消化时间和温和的酶,以避免这些问题。 消化时间:消化时间是决定成功的关键因素,应根据所用的具体酶和组织类型来调整。若消化不足,则可能导致细胞粘连和细胞碎片的增加;而若消化过度,则会显著降低细胞活性,并增加细胞碎片和粘连物的数量。 消化温度:为了确保酶反应的最大速度和效率,消化通常在37°C下进行。较低的温度(如4°C或在冰上)虽然可能减缓酶的反应速度并延长孵化时间,但在降低细胞死亡方面具有优势。 对表面抗原的影响:当研究细胞表面蛋白时,需避免使用胰蛋白酶,因为它可能会裂解细胞表面受体或膜蛋白,从而导致免疫表型实验中出现假阴性结果。
在制备组织单细胞悬液的过程中,以下关键步骤和注意事项不可忽视:
四、其它注意事项
在制备单细胞悬液的过程中,还需要特别注意以下几点细节:
避免使用组织匀浆器:此类强力机械分离方法可能会破坏细胞的完整性,因此不适用于单细胞悬液的制备。 温和处理细胞:应避免对细胞进行剧烈的漩涡处理,以保持细胞的活性和完整性,从而获得更可靠的实验结果。 正确的离心力:根据细胞的类型和状态,选择适宜的相对离心力(RCF),以避免使用过高或过低的离心力,从而防止细胞损伤或丢失。
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