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1、多维度分析:研究结合机器学习、单细胞测序等科研方法,从大量数据中提取关键特征并构建诊断模型,提高了CRC诊断的特异性和灵敏度。
2、多方面验证:通过单细胞分析和ELISA检测对筛选出的蛋白质特征进行验证,确保了研究结果的可靠性和临床应用的可行性,为CRC的早期诊断提供了有力的证据支持。
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题目:基于机器学习的分析可识别和验证血清外泌体蛋白质组学特征以诊断结直肠癌
杂志:Cell Rep Med
影响因子:IF=11.7
发表时间:2024年8月
公众号回复“888”领取原文PDF,文献编号:240908
研究背景
结直肠癌(CRC)高发且早期症状隐匿,诊断晚期生存率低,急需非侵入性早期诊断方法。现有筛查手段如结肠镜检查和生物标志物检测存在局限。液体活检因其无创特性成为研究热点,其中外泌体(EV)非编码RNA和蛋白质具有诊断潜力。然而,蛋白质组学技术局限及标志物筛选挑战突出。本研究旨在利用先进蛋白质组学结合机器学习,挖掘血清EV中的关键蛋白质标志物,以开发高灵敏度和特异性的CRC早期诊断模型,提高临床检测效率。
数据来源
数据集/队列 | 数据库 | 数据类型 | 详细信息 |
GSE178341 | GEO | scRNA-seq数据 | 181例结直肠癌患者细胞样本 |
GSE132465 | GEO | scRNA-seq数据 | 23例原发性结直肠癌和10例匹配的正常粘膜细胞样本 |
TCGA-CRC | TCGA | RNA-seq数据 | 结直肠癌患者样本 |
研究思路
本研究采用四维独立数据采集(4D-DIA)技术分析血清EV蛋白质组学,结合机器学习(ML)方法,挖掘并验证对结直肠癌(CRC)诊断有价值的蛋白质特征。通过ELISA检测进一步验证这些特征,旨在开发基于EV相关蛋白质特征的RF模型,以提高CRC早期诊断的准确性和灵敏度,为非侵入性CRC筛查提供新方法。
研究结果
1.通过机器学习筛选血清外泌体中的蛋白质组学生物标志物以诊断结直肠癌
首先利用4D-DIA蛋白质组学技术揭示了CRC与HC间显著的蛋白质表达差异(图1A、B)。通过VIPpred分析筛选出12种关键外泌体蛋白作为CRC诊断标志物(图1C)。随后发现在五种ML算法中,RF模型在分类精度、AUC及PRAUC上表现最优(图1D)。RF变量重要性分析指出PF4、AACT、KLDB、CP135和KV315为最关键变量(图1E)。Lasso逻辑回归分析进一步确认PF4和AACT为最具诊断价值的蛋白(图1F-H)。(图1I、J)验证PF4与AACT组合在RF模型中的卓越诊断效能,展现出高准确性和可靠性,为CRC的精准诊断提供了有力支持。
图1 通过机器学习流程筛选外泌体衍生的生物标志物以诊断结直肠癌
2.开发和验证用于结直肠癌诊断的与外泌体相关的随机森林诊断模型
首先通过构建RF诊断模型,对比了外泌体蛋白PF4和AACT与常规CRC标志物CEA和CA19-9的诊断效能。(图2A)显示,PF4与AACT组合获得了高达0.950的AUC值,显著优于CEA和CA19-9。PR曲线分析进一步确认了PF4和AACT在PRAUC上的优势,其组合模型PR AUC值高达0.969(图2B)。ALEs分析直观展示了PF4和AACT在预测CRC上的显著效果,远超CEA和CA19-9(图2C)。Shapley值分析指出,高PF4和AACT水平是区分CRC与HC的关键因素(图2D)。最后,(图2E)重要性分析再次验证了PF4和AACT在CRC诊断中的核心地位,与Shapley值结果相吻合。
图2 与EV相关的用于CRC检测的RF诊断模型的构建与验证
3.外泌体来源的PF4和AACT的功能富集分析
首先对在CRC中的外泌体PF4进行GSEA分析,结果发现其在细胞分化、发育及跨膜运输通路富集,且与脂质定位、胆固醇外流负相关(图3A、B),TCGA数据支持此发现。通过EnrichmentMap分析,显示PF4低表达与脂质、胆固醇稳态及外流等通路紧密相关(图3C)。然后构建了PF4与核心基因(如APOA1、APOA2、APOE)的PPI网络,暗示其相互作用(图3D)。(图3E、F)则表明外泌体AACT与蛋白水解代谢负相关,在EnrichmentMap中进一步确认了此关系(图3G)。最后,PPI网络揭示了AACT可能与TGF-β1、ACTB及PTPRC相互作用,提示AACT在炎症、细胞骨架及蛋白质代谢中的潜在角色(图3H)。
图3 外泌体(EV)来源的PF4和AACT的功能预测
4.破译释放外泌体(EV)来源PF4和AACT的特定细胞类型
研究采用单细胞分析确定外泌体(EVs)中PF4和AACT释放的细胞类型。(图4A)显示,在结直肠癌(CRC)与正常组织对比中,CRC上皮细胞PF4显著升高。进一步指出,PF4在CRC的髓系、基质及T细胞中也有轻微上调(图4B、C)。随后重申了PF4在CRC上皮细胞中的高表达,同时基质、髓系和T细胞中有轻度增加(图4D-F)。针对AACT,GSE132465(图4B、C)与GSE132257(图4E、F)数据集均显示,CRC上皮细胞中AACT表达显著高于正常。最后通过单细胞转录组数据验证,CRC上皮细胞中PF4与AACT表达异常高,与邻近正常细胞相比具有显著差异(图4G、H),揭示了CRC特异的分子变化。
图4 scRNA-seq分析显示CRC上皮细胞是EV衍生的PF4和AACT产生的主要来源
文章小结
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阿星有话说
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8 September 2024