Nature︱重磅!洛克菲勒大学团队发现下丘脑瘦素激活的BNC2神经元急性抑制摄食

学术   2024-11-08 00:00   上海  

【神经科学前沿技术培训系列】详见文末


撰文︱张  远

责编︱王思珍


瘦素Leptin是一种脂肪组织衍生激素,在负反馈回路中充当传入信号,维持脂肪组织重量的稳态控制[1,2]。瘦素调节食物摄入量并维持能量平衡,部分机制是通过抑制促进食欲的刺鼠相关蛋白AGRP/神经肽YNPY神经元、表达瘦素受体LepR神经元和激活厌食的阿片黑素皮质素原POMC神经元(表达LepR)来实现的[1,3]。这些神经元位于下丘脑的深部脑区弓状核ARCPOMC是一种蛋白质前体,可通过蛋白水解裂解产生α-黑素细胞刺激激素αMSH,后者通过激活黑素皮质素4受体MC4R来减少食物摄入量[4] AGRP/NPY神经元通过向与POMC神经元相同的许多位点投射来增加食物摄入量,在这些位点上,AGRP蛋白会减弱MC4R7αMSH信号传导。AGRP/NPY神经元还能够直接抑制POMC神经元[5]。这些发现表明,食物摄入量由这两个神经群相互调节。这种阴阳动态是几乎所有关于如何维持食物摄入和体重稳态控制的模型中的一致特征[3]然而,POMCAGRP/NPY神经元的功能效应和动力学在一些方面存在分歧。比如,激活AGRP/NPY神经元会迅速导致食物寻找和进食,但激活POMC神经元对急性食物摄入的影响却微乎其微[6-8]有证据表明可能存在其他对瘦素有反应的群体,它们对于由瘦素驱动的食物摄入和体重控制至关重要[9-10]

 
近日,洛克菲勒大学Jeffrey M. Friedman团队在Nature杂志在线发表了题为“Leptin-activated hypothalamic BNC2 neurons acutely suppress food intake”的研究论文。在这项研究中,研究者使用单核RNA测序snRNA-seqARC神经元的转录组进行了系统分析,并确定了一个新的碱性核蛋白2基因Bnc2LepR基因共表达的ARC神经元群。进一步的研究表明,BNC2神经元在AGRP/NPY神经激活后迅速诱导饱腹感,其动力学与进食激活相似。这一发现为调节饥饿和饱腹感的神经网络增加了一个重要的新细胞组分,并为瘦素如何调节能量平衡提供了新的见解。

 


首先,研究者对从成年雄性小鼠脑中显微切割的ARC组织进行了snRNA测序(图 1a。总共分析了3,557个细胞,其中3,481个细胞被鉴定为神经元。对这些细胞聚类分析,确定了21个不同的神经元簇(图 1bc。为了确认这些神经元来自ARC而不是来自相邻的其它脑区,研究者分析了簇中已知的ARC细胞群的特定标记基因。结果表明除簇9和簇15外,其余19个簇确实位于ARC内。簇9和簇15表达Nr5a1,表明它们起源于相邻的腹内侧下丘脑区域(图 1c。这些簇包含一个表达Agrp/Npy的簇(簇0)、两个表达Pomc的簇(簇3和簇12)神经元和另外16个簇(图 1d。其中簇0、簇3和簇17均表达Lepr,但是簇17不表达AgrpNpyPomc,而是表达特定的Bnc2基因(图 1d。研究者利用多重原位杂交ISH证实了LeprBnc2ARC中的共表达,并且ARC中超过90%Bnc2细胞共表达LeprSlc32a1GABA能神经元的标志物),而不到5%的细胞共表达Agrp2.6%Pomc3.3%)(图 1ef。研究者还发现在人类下丘脑中Bnc2Lepr之间存在显著共定位(图 1g。同样,人类下丘脑中的LepR/BNC2神经元与AGRP/NPYPOMC神经元不同(图 1h总之,这些结果表明BNC2神经元是小鼠和人类中表达LepR神经元的一个新群体,并且与之前表征的LepR AGRP/NPYPOMC细胞群不重叠。

1. ARC中发现新的表达LepR的神经元。

图源:Tan et al., Nature, 2024

为了进一步研究ARCBNC2神经元的动态和功能,研究者构建了BNC2-P2A-iCre敲入小鼠系(以下称为BNC2-Cre)。由于瘦素与LepR结合可激活Janus酪氨酸激酶2JAK2,导致STAT3磷酸化(瘦素激活的典型标志物),研究者对瘦素治疗小鼠进行pSTAT3免疫染色,证实BNC2神经元中的瘦素信号传导(图2ab。禁食一夜后,重新喂食小鼠导致BNC2神经元中的pSTAT3量显著增加(图2ab。与此一致的是,在重新喂食或注射瘦素后,BNC2神经元中FOS(神经元活动的marker)的表达量显著增加(图 2cd


接下来,研究对ARC中注射AAV-DIO-EGFP的成年雄性BNC2-Cre小鼠的下丘脑切片进行全细胞膜片钳记录。施加瘦素100 nM给禁食或自由进食的小鼠的脑切片,均导致绿色荧光蛋白GFP标记的BNC2神经元出现显著去极化,动作电位AP发放频率显著增加,并且这些影响在瘦素清除后是可逆的(图 2e-g。此外,禁食一夜后ARC脑切片中对瘦素有反应的细胞百分比更高,并且与FOS染色的数据一致,该结果表明禁食一夜后BNC2神经元的基线活动较低(图 2d。为了评估体内的结果,研究者使用光纤记录法记录食物线索对BNC2神经元活动的影响。小鼠禁食一夜然后让其接触以下食物之一:一根不可食用的塑料管、一小块标准食物或花生酱PB,所有这些都是它们之前接触过的。不可食用的塑料管对BNC2神经元活动没有明显的影响(图 2hi。然而,即使在摄食之前,相对于塑料管,接触标准食物在几秒钟内就强烈激活了BNC2神经元(图2hi,而接触脂肪含量明显较高的PB引起的反应明显高于标准食物(图 2hi这些结果表明,在禁食小鼠中食物的存在会增加BNC2神经元的活性,而且适口性会进一步增强这种活性。为了评估摄食的影响,研究者分析了进食阶段BNC2神经元活动的变化。结果表明,与动物接触食物线索但尚未食用时相比,BNC2神经元活动在进食期间进一步增加(图 2lm。这些数据表明BNC2神经元对食物线索以及进食过程中产生的信号都有反应。为了直接检测感官线索对BNC2神经元活动的影响,研究者向禁食的小鼠展示了盛在容器中的标准食物,让它们可以看到和闻到颗粒,但不能食用(图 2n。在这些条件下,BNC2神经元仍然表现出显著的激活,尽管与食物未放在容器中的实验相比,激活的幅度和持续时间都较小(图 2o4gh这表明BNC2神经元对感官线索有反应,食物的可获得性和食用进一步增加了神经激活的强度和持续时间。

2. 摄食激活BNC2神经元。

图源:Tan et al., Nature, 2024

接下来,研究者使用化学/光遗传学评估BNC2神经元的功能。将表达Cre依赖性激活性hM3Dq或抑制性hM4DiAAV注射到BNC2-Cre小鼠的ARC中,通过氯氮平-N4-氧化物CNO选择性地激活或抑制这些神经元。与对照小鼠相比,在暗周期开始时激活BNC2神经元导致食物摄入量和体重显著减少(图 3ab。相比之下,在光照周期中沉默BNC2神经元可显著增加雄性和雌性小鼠的食物消耗和体重(图 3cd。研究者进一步使用光遗传学评估了进食反应的动态。将Cre依赖性激活通道视紫红质2ChR2-GFP或抑制性体细胞靶向Guillardia theta阴离子传导通道视紫红质stGtACR2-FusionRedAAV注射到雄性BNC2-Cre小鼠的ARC中,然后在ARC上包埋光纤(图 3e与表达GFP的对照组相比,以20Hz的频率对BNC2神经元进行光遗传学激活20分钟,导致禁食过夜的小鼠的食物摄入量显著减少,并且食物摄入量减少在停止光刺激后持续长达20分钟(图 3f。与化学遗传学抑制的结果一致,以20Hz的频率对BNC2神经元进行光遗传学沉默可显著增加小鼠在光照周期中的食物摄入量,但当光抑制停止时,这种现象并不持续(图 3g。此外,研究者还通过光遗传学实时位置偏好实验分析了BNC2神经激活的效价(图 3h研究发现,与对照组相比,禁食过夜后,小鼠对与BNC2激活相关的隔室有显著的偏好(图 3ij然而,在光照周期中测试的饱足小鼠对光刺激没有位置偏好(图 3j

3. BNC2神经元驱动的快速且持续的饱腹感。

图源:Tan et al., Nature, 2024

食物剥夺会导致与负价相关的AGRP/NPY神经元的激活,这增加了BNC2激活与正价相关的可能性,因为它们会抑制AGRP/NPY神经元。研究者在脑切片上通过ChR2辅助的环路投射方法对此进行了评估。将Flp依赖性mCherry AAVfDIO-mCherryCre依赖性ChR2-GFP AAVDIO-ChR2-GFP共同注射到BNC2-Cre::NPY-FlpO小鼠的ARC。研究发现ARCBNC2轴突末梢中存在密集的GFP表达(图 4a。光遗传学激活BNC2神经元之前和之后,在mCherry标记的AGRP/NPY神经元中记录诱发的抑制性突触后电流oIPSC,光激活后约81%AGRP/NPY神经元中出现同步oIPSC,且起效迅速(图 4b-d,表明BNC2神经元直接抑制AGRP/NPY神经元。在给予钠通道阻滞剂河豚毒素TTX后,oIPSC被消除,但同时给予4-氨基吡啶4-AP(一种钾通道拮抗剂)可恢复AGRP/NPY神经元上的抑制电流(图 4ce。最后,在给予GABAA受体拮抗剂苦味毒素(PTX后,TTX4-AP存在下观察到的oIPSC被阻断(图 4ce。总的来说,这些数据表明BNC2神经元通过GABAA受体直接抑制AGRP/NPY神经元。此外,研究发现反向激活AGRP/NPY神经元不能激活BNC2神经元(图 4f-h。先前的研究表明,AGRP/NPY神经元活动受到食物线索的抑制。这提出了BNC2神经元可能介导部分或全部的食物线索抑制AGRP/NPY神经元活动的可能性。研究者将化学遗传学抑制和光纤记录结合起来靶向分析ARCBNC2神经元(图 4i。研究表明对照小鼠在喂食食物时,AGRP/NPY神经元中的钙信号显著减少(图 4jk。然后,在给予CNO后,抑制BNC2神经元显著减弱了摄食后出现的AGRP/NPY活动的减少(图 4jk这些发现表明,摄食后抑制AGRP/NPY神经元的一部分感觉输入是由BNC2神经元传递的。

4. BNC2神经元单突触抑制AGRP/NPY神经元。

图源:Tan et al., Nature, 2024

 
BNC2神经元表达LepR并能被瘦素所激活,表明它们介导瘦素的一些作用。研究者通过CRISPR-Cas9技术敲除BNC2神经元中的LepR,以此评估这种可能性。与注射sgCtrl的小鼠相比,BNC2神经元中LepR被敲除的雄性和雌性小鼠体重增加明显更多(图 5a。注射gRNA八周后,sgLepr组的脂肪量也相对于sgCtrl组显著增加,而瘦肉重量略有增加(图 5b。与sgCtrl小鼠相比,sgLepr小鼠在第8周的每日食物摄入量明显更高(图 5c。为了进一步评估BNC2神经元在介导瘦素信号传导中的作用,研究者研究BNC2神经元中LepR敲除如何影响对瘦素的反应。研究者在病毒注射2周后(敲除组小鼠并未出现肥胖的时间)评估了小鼠对瘦素的反应。虽然注射瘦素显著减少了两组的食物摄入量,但注射了sgLepr的小鼠比注射了sgCtrl的小鼠消耗的食物要多得多(5d)这些数据表明,BNC2神经元中的LepR是瘦素充分发挥作用所必需的。在类似研究中,研究者杀死ARC中的BNC2神经元,并评估它们对瘦素和胰高血糖素样肽-1GLP-1的反应。与接受瘦素的对照小鼠相比,杀死BNC2神经元的小鼠中瘦素作用显著降低(图 5e。此外研究者还检测了GLP-1受体激动剂索马鲁肽Sema对这些动物的影响。与对瘦素的反应相反,Sema10 nmol kg-1在两组中均以相似程度降低了食物摄入量(图 5e这表明,尽管BNC2神经元是完全响应瘦素所必需的,但它们并不能解释Sema的影响。最后,研究还发现BNC2 LepR敲除小鼠空腹血糖升高,葡萄糖耐量受损,对胰岛素的反应显着降低。为了评估BNC2 LepR敲除小鼠的葡萄糖耐量受损和胰岛素作用是其肥胖的直接影响还是继发影响,研究者使用化学遗传学调节BNC2神经元的活动。与对照组相比,化学传学激活BNC2的小鼠的血糖水平显著降低(图 5f。并且激活BNC2神经元后,小鼠的葡萄糖耐受性得到改善,胰岛素敏感性增强(图 5g-j,这种影响与AGRP神经元激活后观察到的影响相反。与此一致的是,BNC2神经元的化学遗传沉默会增加血糖水平,并降低葡萄糖耐受性和胰岛素敏感性(图 5k-o这些数据表明,BNC2神经元可以急性调节外周葡萄糖稳态,而与它们对食物摄入量和体重的影响无关。

5. BNC2 神经元中的LepR敲除导致肥胖。

图源:Tan et al., Nature, 2024


文章结论与讨论,启发与展望
瘦素是一种脂肪组织激素,它通过调节控制食欲和代谢的特定神经群的活动来维持脂肪组织质量的稳态控制。瘦素抑制促进食欲的刺鼠相关蛋白AGRP神经元和激活厌食的阿片黑素皮质素原POMC神经元来调节食物摄入量。然而,尽管AGRP神经元在快速时间尺度上调节食物摄入量,但POMC神经元的急性激活仅产生最小的影响。这提出了一种可能性,即存在一种迄今未被发现的瘦素调节神经群,它可以快速抑制食欲。在这项研究中,研究者在弓状核中发现一种新的瘦素靶神经元群,它们表达碱性核蛋白2BNC2,通过直接抑制AGRP神经元来急性抑制食欲。并且,与AGRP激活的效果相反,在饥饿但未进食的小鼠中激活BNC2神经元引发了位置偏好,表明其具有正价效应。研究还发现BNC2神经元的活动受到瘦素、感觉食物线索和营养状况的调节。敲除BNC2神经元中的瘦素受体会导致明显的多食症和肥胖症,类似于AGRP神经元中瘦素受体敲除所观察到的情况。这些数据表明BNC2神经元为快速作用的神经元群,它们双向敏锐地调节进食和能量平衡。这些发现为调节食欲和肥胖的神经回路增加了一个重要的新成员,同时也为瘦素调节该系统的机制提供了新的见解。最后,这些神经元的药理学激活可能具有治疗意义,有助于减轻体重或抑制与饥饿相关的负价。

原文链接:https://www.nature.com/articles/s41586-024-08108-2


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参考文献
1. Friedman, J. M. Leptin and the endocrine control of energy balance. Nat. Metab. 1, 754–764 (2019).

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5. Cowley, M. A. et al. Leptin activates anorexigenic POMC neurons through a neural network in the arcuate nucleus. Nature 411, 480–484 (2001).

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7. Aponte, Y., Atasoy, D. & Sternson, S. M. AGRP neurons are sufficient to orchestrate feeding behavior rapidly and without training. Nat. Neurosci. 14, 351–355 (2011).

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9. Vong, L. et al. Leptin action on GABAergic neurons prevents obesity and reduces

inhibitory tone to POMC neurons. Neuron 71, 142–154 (2011).

10. Rupp, A. C. et al. Specific subpopulations of hypothalamic leptin receptor-expressing neurons mediate the effects of early developmental leptin receptor deletion on energy balance. Mol. Metab. 14, 130–138 (2018).

编辑︱王思珍
本文完



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