Immunity︱突破!慕尼黑工业大学团队揭示小胶质细胞中聚集的载脂蛋白E通过种子β-淀粉样变性引起阿尔茨海默病病理

学术   2024-11-01 00:00   上海  

【神经科学前沿技术培训系列】详见文末


撰文︱张  远

责编︱王思珍


阿尔茨海默病AD发病前有一个临床前阶段,不溶性淀粉样蛋白会沉积为细胞外斑块[1]。这种淀粉样斑块的逐渐积累被认为会引发涉及多种细胞类型的病理级联,最终导致神经退行,记忆力和认知功能逐渐恶化[2,3]。错误折叠蛋白质聚集体的种子生长已成为AD以及其它神经退行性疾病的强大概念框架[4-7]但究竟是什么引发了这种病理级联?基因分析表明,散发性AD的风险与在小胶质细胞和星形胶质细胞中表达的基因有关,这些基因对淀粉样蛋白的沉积作出响应[8-16],但这些基因如何导致淀粉样变性尚不完全清楚。在已鉴定的易感基因中,载脂蛋EAPOE及其等位基因异构体APOE4的风险最大[11,17-19]。在健康的中枢神经系统CNS中,APOE主要由星形胶质细胞合成,与其他载脂蛋白类似,APOE通过溶解脂蛋白颗粒中的脂质发挥作用[20-22]。通过与低密度脂蛋白家族的不同成员相互作用,脂质化的APOE颗粒通过受体介导的内吞作用进入到细胞中,在细胞中脂质参与支持细胞活力、突触形成和膜延伸等过程[23-25]。除了在脂质稳态中的生理作用外,APOE还在神经系统疾病中发挥关键作用。几乎任何对中枢神经系统损伤(包括AD)导致小胶质细胞和星形胶质细胞反应性上调脂质代谢途径,特别是APOE[10,12,13,15]在小鼠中的研究表明,APOE的缺失会导致纤维淀粉样斑块沉积减少,表明APOE可能在纤维化/稳定和/或聚集中发挥作用。
 
近日,德国慕尼黑工业大学Mikael Simons团队在Immunity杂志在线发表了题为“Apolipoprotein E aggregation in microglia initiates Alzheimer’s disease pathology by seeding β-amyloidosis”的研究论文。在这项研究中,研究者构建了一种小鼠模型来优化APOE的检测和纯化,这使研究者能够应用生化方法并在淀粉样变性小鼠模型中对APOE进行特异性成像。利用这一实验系统,研究者在小胶质细胞的溶酶体系统内发现了促进淀粉样变性的APOE纤维聚集体,并且这一过程受到免疫和脂质代谢调节。


为了提高APOE的可视化和纯化,研究者构建了与小鼠APOE融合的HaloTagApoE-Halo)的转基因敲入小鼠。研究发现纯合ApoE-Halo小鼠血清中的胆固醇和胆固醇酯浓度与野生型WT动物相当,APOE缺陷(ApoE KO)小鼠中观察到胆固醇和胆固醇酯浓度升高(图 1A,从而验证了羧基末端标记APOE的生理功能。接下来,研究者使用Halo-Trap磁性琼脂糖对脑裂解物和血清中的Halo标记APOE进行了免疫纯化实验。该方法能够分离具有预期脂蛋白大小的颗粒,如电子显微镜EM所示(图1A。接下来,研究者在ApoE-Halo小鼠的脑切片上应用荧光HaloTag配体,验证了星形胶质细胞是成人皮质中主要的APOE表达细胞群(图 1B,另外小胶质细胞和少突胶质细胞中也有一些表达。为了分析AD中的APOE,研究者将ApoE-Halo小鼠与5xFAD小鼠杂交。用甲氧基-X04MX04)对纤维状β片层沉积物进行组织学标记来确定斑块数量和形态,使用二乙胺DEA,可溶性部分和甲酸FA,不溶性部分通过蛋白质印迹分析来确定可溶/不溶性的量,以及通过分析APP C末端片段CTF来检测淀粉样蛋白前体(APP)的裂解模式(图 1C-1E)。与对照小鼠5xFAD相比,5xFAD ApoE-Halo小鼠代谢没有差异。此外,5xFAD ApoE-Halo小鼠的APOE和小胶质细胞标记基因表达没有显著差异1F这些结果与5xFAD小鼠与纯合或杂合ApoE KO小鼠杂交的结果形成对比,后者显示出预期的基因剂量依赖性组织学中沉积减少(1G5xFAD ApoE KO不溶性大幅减少和可溶性增加(1E)。此外,研究者使用荧光HaloTag配体检测5xFAD小鼠中APOE-Halo的细胞定位,发现5xFAD ApoE-Halo小鼠中APOE标记的阳性的小胶质细胞增加1B1H。此外,APOE-Halo定位于皮质组织样本中的纤维状β片层阳性沉积物(MX04+)(图 1H。因此,研究者将ApoE-Halo敲入小鼠用于APOE的可视化和纯化,且经过验证不影响脂质和代谢。

1. ApoE-Halo小鼠的生成和特征描述。

图源:Kaji et al., Immunity, 2024

 
研究者使用HaloTag自标记蛋白技术能够以高灵敏度和特异性检测斑块中的APOE定位。研究发现5xFAD ApoE-Halo小鼠中大多数MX04+斑块在3.5个月和6个月时APOE标记呈阳性(APOE/Aβ强斑块)(图 2A。为了检测体内APOE聚集体之间的关系,研究者开发了一种基于针对原纤维分离优化的肌氨酸钠(sarkosyl)提取的生化纯化方法(图 2B。研究者利用蛋白质聚集体的去污剂不溶性,制备了肌氨酸钠不溶性5xFAD ApoE-Halo脑裂解物级分。研究者在免疫纯化的肌氨酸钠不溶性级分中检测到了APOE-Halo,但没有检测到,这表明一些去污剂不溶性APOE聚集体几乎独立于而存在(图 2CAPOE-Halo聚集体由多聚体组成,EM显示出波浪状蛇形纤维形态,APOE免疫金标记呈阳性(图 2B。此外,分离的APOE-Halo聚集体在加入小胶质细胞培养物后显示MX04阳性(图 2D。为了探究是否也可以从人类AD病人脑尸检样本中纯化APOE聚集体,研究者建立了一种来自AD病人皮质的聚集体纯化方案,在2%肌氨酸中孵育脑裂解物24小时,并通过人类APOEhAPOE)和抗体进行免疫纯化/免疫耗竭(图 2B。由于一些hAPOE聚集体与原纤维紧密相连,因此,在对肌氨酸不溶性APOE进行免疫纯化后,再使用抗体进行免疫耗竭,从而分离出纯度更高的APOE聚集体(图 2C。研究者检测到了APOE,但只检测到极少量的。负染色显示,从APOE3/3APOE4/4 AD尸检中获得的分离聚集体也呈波浪状蛇形原纤维形态(图 2B。因此,APOE5xFAD和人类AD大脑中形成聚集体。为了检测纯化的APOE聚集体是否能促进斑块形成,研究者进行了接种实验。研究者检测了从sarkosyl不溶性5xFAD ApoE-Halo脑级分中免疫纯化分离的APOE聚集体的接种活性。注射了免疫纯化mAPOE聚集体的5xFAD小鼠显示MX04+结构数量显著增加(图 2E,左)MX04+信号与共定位,形态紧凑,表明有斑块形成(图 2E总之,这些实验为肌氨酸不溶性APOE作为斑块生成中的辅助因子提供了证据。

2. APOE5xFAD小鼠和人类AD病人尸检中形成聚集体。

图源:Kaji et al., Immunity, 2024

为了阐明hAPOE对斑块形成的影响,研究者将APOE3APOE4敲入小鼠(APOE3 KIAPOE4 KI)5xFAD小鼠杂交。首先,研究者比较了MX04+淀粉样斑块数量,并检测到5xFAD APOE4 KI小鼠中的MX04+斑块数量高于5xFAD APOE3 KI5xFAD小鼠(图 3A。接下来,研究者进一步探究APOE3/3APOE4/4AD患者的脑源性APOE聚集体是否能够作为斑块形成的辅助因子。将免疫纯化的APOE3APOE4聚集体注射到5xFAD小鼠体内,发现这两种聚集体都能增强MX04+斑块形成(图 3B。随后,研究者将来自AD患者的相同免疫纯化APOE聚集体注射到5xFAD APOE3 KI5xFAD APOE4 KI小鼠脑中,观察到注射APOE聚集体增加了淀粉样斑块数量,在5xFAD APOE4 KI小鼠中观察到更高的MX04+斑块数量(图 3C。总之,这些实验表明APOE3APOE4都可以作为斑块形成的辅助因子。为了确定两种APOE之间的潜在差异,研究者进一步研究它们在体外聚集和在体内作为种子发挥作用的能力。通过快速蛋白液相色谱法(FPLC)纯化了重组APOE3APOE4的单体/四聚体,将与预孵育3周的重组hAPOE共孵育可加速聚集,其中APOE4聚集的影响比APOE3更强(图 3F。为了确定体外产生的重组APOE4聚集体是否可以在体内作为淀粉样斑块形成的辅助因子,研究者将重组APOE4聚集体注射到5xFAD小鼠体内并量化MX04+斑块数量(图 3G。研究发现MX04+淀粉样斑块显著增加,这些斑块与抗抗体共标记。注射孵育3周预制备的重组APOE3同样会导致接种实验中MX04+淀粉样斑块数量增加(图 3G总之,这些发现表明,体外衍生的hAPOE 聚集体可以充当斑块形成的辅助因子,类似于体内纯化的聚集体。

3. 人类APOE聚集体在5xFAD小鼠中诱发病理。

图源:Kaji et al., Immunity, 2024

为了了解APOE如何促进斑块形成,研究者使用共聚焦显微镜检测5xFAD ApoE-Halo小鼠中APOE-Halo+ MX04+聚集体的定位。通过3D渲染,发现IBA1+细胞内APOE-Halo配体和MX04的标记(图4A4B3D图像重建显示APOE-Halo+ MX04+轮廓具有小点状染色或IBA1+细胞内具有较大的纤维状外观,将这些结构与通常和小胶质细胞相关的细胞外斑块不同。IBA1+细胞内的APOE-Halo+MX04+结构通常与CD68相关,CD68是活化小胶质细胞内体/溶酶体区室的标记物(图 4A4C小胶质细胞内的MX04+聚集体并非5xFAD AD小鼠模型所特有,在另外两种AD小鼠模型(APP/PS1NL-G-F小鼠)(图4C以及人类尸检样本(图 4D中也检测到了这些聚集体。通过体积扫描EM,检测到小胶质细胞内呈纤维形态的溶酶体聚集体,特别是在5xFAD ApoE-Halo小鼠的斑块周围区域(图 4E。一种可能性是MX04+APOE+聚集体在小胶质细胞外形成,随后被内化降解。或者,MX04+聚集体可能在小胶质细胞内形成,然后被释放。为了探索这些可能性,研究者使用Plexxicon(PLX5622)药理学地杀死小胶质细胞。研究者首先进行了接种实验,将5xFAD脑裂解物(PBS提取)注射到接受PLX5622或正常对照食物治疗的5xFAD小鼠体内,发现与接受对照处理的5xFAD小鼠相比,接受PLX5622处理的小鼠体内的MX04+聚集体形成受到抑制(图 4F。接下来,将免疫纯化的RIPA可溶性APOE-Halo注射到接受PLX5622或标准对照食物治疗的5xFAD ApoE KO小鼠体内,发现仅在接受对照食物的小鼠体内观察到MX04+聚集体形成增加(图 4G这表明APOE和小胶质细胞都是MX04+聚集体形成所必需的。

4. APOE依赖性植入需要小胶质细胞。

图源:Kaji et al., Immunity, 2024

为了探索是否可以在细胞培养中重建APOE依赖的MX04+聚集体形成。研究者用重组APOE和荧光基团偶联的Aβ-42孵育小胶质细胞BV2细胞系,并通过MX04可视化聚集体形成。结果显示MX04+聚集体的形成具有浓度依赖性,在孵育3天后APOE呈阳性(图 5A。在原代小胶质细胞和iPSC衍生的小胶质细胞中观察到了类似的结果(图 5B,但在原代星形胶质细胞中没有观察到这个现象。含有MX04+聚集体的BV2细胞裂解物在注射到5xFAD小鼠显示出接种活性。接下来,研究者进一步探究溶酶体功能如何调节聚集过程。当用干扰溶酶体降解的化合物(Lys05/氯喹、bafilomycin或亮抑酶肽)处理小胶质细胞时,MX04+聚集体形成增加(图 5C5D为了在体内验证这一发现,研究者在5xFAD小鼠中每天腹腔注射氯喹持续1周,与对照组相比,发现IBA1+CD68+细胞中的MX04+聚集体增加(图 5E。接下来,研究者进一步探索髓系细胞2上表达的触发受体(TREM2)MX04+聚集体形成中的作用,该受体调节与溶酶体降解相关的基因的表达。通过CRISPR-Cas9生成TREM2缺陷型BV2细胞系,进行APOEAβ-42的共孵育实验。研究表明TREM2缺陷型BV2细胞中MX04+聚集体的形成增加(图 5C。为了评估这些发现的体内相关性,研究者量化了APP/PS1 Trem2 KO小鼠中IBA1+细胞中与CD68共定位的MX04+聚集体。与细胞培养的结果类似,与APP/PS1相比,APP/PS1 Trem2 KO小鼠中与CD68+免疫染色相关的MX04+聚集体的面积和数量增加(图 5F

5. 溶酶体功能障碍促进APOE诱导的小胶质细胞中MX04+聚集体的形成。

图源:Kaji et al., Immunity, 2024

AD模型中已发现激活的干扰素反应性小胶质细胞。研究者进一步探究5xFAD小鼠中小胶质细胞的信号转导和转录激活因子1STAT1反应性)的表达,这是干扰素信号转导激活的标志。共标记结果显示,无论疾病阶段如何,5xFAD小鼠皮层中的大多数IBA1+细胞STAT1MX04均呈阳性(图 6A。此外,在与MX04+斑块直接接触和斑块周围区域检测到了STAT1+IBA1+细胞。接下来,研究者进一步探索janus激酶/信号转导和转录激活因子1(JAK/STAT1)的抑制是否可以通过可渗透大脑的JAK/STAT1抑制剂巴瑞替尼来调节,以及是否调节β片层阳性聚集体的产生。研究者用巴瑞替尼治疗6周龄5xFAD小鼠12周,并在4.5月龄时通过刚果红染色分析斑块病理。与未治疗的对照组相比,研究者观察到刚果红阳性聚集体减少(图 6B。此外,研究者还发现用巴瑞替尼治疗的5xFAD小鼠中STAT1+IBA1+细胞和含有MX04+内含物的IBA1+细胞更少(图 6C为了进一步证实这些发现,研究者生成了缺乏STAT15xFAD小鼠(5xFAD Stat1 KO)。与5xFAD小鼠相比,在3.5月龄5xFAD Stat1 KO 中检测到更少的刚果红阳性的淀粉样斑块(图 6B。接下来,研究者在细胞培养中检测JAK/STAT1信号传导,发现APOEAβ-42联合孵育形成的MX04+聚集体与STAT1激活有关(图 6D6E。值得注意的是,巴瑞替尼降低了APOEAβ-42介导的MX04+聚集体的形成,而干扰素增加了APOEAβ-42介导的MX04+聚集体的形成(图 6F-6H总之,这些结果表明溶酶体功能障碍和干扰素激活促进了小胶质细胞中APOE诱导的MX04+聚集体的形成。

6. 抑制小胶质细胞JAK/STAT1信号可减轻 淀粉样蛋白病理。
图源:Kaji et al., Immunity, 2024


 在生理条件下,APOE与脂质相关。因此,想知道脂质化的APOE颗粒是否有助于小胶质细胞中MX04+聚集体的形成。研究者在细胞培养聚集实验中通过与Aβ-42共孵育对无脂质重组APOE和与脂质(1-棕榈酰-2-油酰-甘油-3-磷酸胆碱 (POPC) 和胆固醇)相关的APOE进行了比较。研究发现脂质化的APOE更有效地被细胞吸收并增强了MX04+聚集体的形成(图 7A7B。由于APOE可能与脂质一起运输到小胶质细胞中,研究者推断MX04+ IBA1+细胞可能积累胆固醇。为了研究这一点,研究者将荧光胆固醇衍生物(TMR)胆固醇注射到5xFAD小鼠体内,发现MX04+CD68+IBA1+细胞中有TMR胆固醇标记(图 7C。通过荧光激活细胞分选(FACS),以检测细胞是否已经适应了胆固醇负荷增加的胆固醇代谢。对从5xFAD CX3CR1Cre-YFP小鼠中获得的表达YFP的小胶质细胞进行FACS,并将细胞分为MX04+MX04-群体。通过对胆固醇合成和摄取转录本进行实时定量PCR分析,研究者发现YFP+MX04+细胞中胆固醇合成途径的反馈抑制和脂蛋白受体表达降低(图 7D。与YFP+ MX04-细胞相比,YFP+ MX04+细胞中胆固醇前体羊毛甾醇减少(图 7DMX04+细胞中胆固醇合成的反馈抑制在细胞培养中得到复现(图 7E。由于这些实验表明胆固醇代谢、APOE摄取和小胶质细胞中的聚集体形成之间存在联系,因此研究者想知道减少细胞胆固醇合成是否会增加脂蛋白受体表达,从而增强体内APOE摄取和聚集体形成。由于抑制固醇合成促进脂蛋白摄取,研究者设计了一种阻止小胶质细胞中从头胆固醇合成的策略。通过CRIPRS-Cas9生成缺乏角鲨烯合酶(Fdft1)BV2细胞,角鲨烯合酶是胆固醇生物合成途径的必需酶(图 7F。在低脂质条件下培养的Fdft1缺陷细胞显示与APOE脂蛋白摄取相关的几种受体 (LdlrScarb1CD36)mRNA表达上调。值得注意的是,与对照细胞相比,脂质化APOEAβ-42孵育与Fdft1缺陷型BV2细胞中MX04+聚集体的形成增加有关(图 7F。由于,研究发现抑制小胶质细胞胆固醇合成可在体外增强MX04+聚集体的形成,研究者想进一步在体内验证。为此,研究者构建了小胶质细胞中缺乏功能性固醇合成途径的5xFAD 小鼠(FDFT1 KO 5xFADCX3CR1CreERT2 Fdft1flox/flox 5xFAD),并将其与5xFAD对照小鼠(CX3CR1Cre 5xFADCX3CR1CreERT2 Fdft1wt/wt 5xFAD)进行比较。结果显示,3.5月龄FDFT1 KO 5xFAD小鼠的斑块增加(图 7G)此外,在胆固醇合成受损后检测到溶酶体区室内具有MX04+纤维形态的小胶质细胞数量增加(图 7G这证明胆固醇缺乏的小胶质细胞会促进淀粉样变性。

7. 脂质化APOE颗粒进入小胶质细胞可增强MX04+聚集体的形成。

图源:(Kaji et al., Immunity, 2024

文章结论与讨论,启发与展望
致病性蛋白质聚集体的种子生长是阿尔茨海默病(AD发病机制的基础,但这种病理级联是如何启动的尚不完全清楚。散发性AD在遗传上与载脂蛋白EAPOE以及小胶质细胞中表达的其他与免疫、脂质和内吞功能相关的基因有关。研究者构建了表达了HaloTag标记APOE的转基因敲入小鼠,并优化APOE生化纯化的实验方法,使得能够在患有淀粉样蛋白(Aβ淀粉样变性的小鼠和人类AD脑尸检中分离和识别APOE的纤维状聚集体。这些对β片层结合染料染色呈阳性的APOE聚集体在小胶质细胞的溶酶体系统内引发了淀粉样变性,这一过程受小胶质细胞脂质代谢和JAK/STAT信号通路的影响。综合这些观察结果,研究者提出AD淀粉样变性发病的模型,表明小胶质细胞对APOE的内吞吸收和聚集可启动AD斑块的形成。该研究通过创新的实验方法,在体内、体外、多种动物模型以及人类样本中发现了小胶质细胞中APOE通过植入β-淀粉样变性启动阿尔茨海默病病理学和相关的信号通路,为解析AD病人中β-淀粉样变性的机制提供了新的见解。

原文链接:https://doi.org/10.1016/j.immuni.2024.09.014


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编辑︱王思珍
本文完



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