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【衡道丨干货】病理技术——胸腹水取样及制片要点
学术
2024-12-26 19:00
广东
浆膜腔积液包括胸腔积液、腹腔积液和心包积液,其形成的原因很多,包括低蛋白血症、充血性心力衰竭、病毒感染、结核、肝硬化及恶性肿瘤等,不同原因导致的浆膜腔积液颜色、性状及细胞含量也各有不同。
图1:左1为血性标本,左2为清亮细胞含量少的样本,右1为细胞含量多的样本;
浆膜腔积液送检的主要目的是判断良恶性,查找有无癌细胞。临床上胸腔积液及腹腔积液多见,简称胸腹水,精准取样及好的制片染色是准确诊断的前提,一份样本需要用四种制片染色方法,包括传统手工涂片HE染色、液基细胞学制片HE染色、手工涂片MGG染色及细胞沉渣包埋蜡块4种。
现将胸腹水样本的每一步制作要点总结如下。
一、手工涂片HE染色方法
1、当天收到的胸腹水标本放在4度冰箱过夜,首先可防止细胞退变,再者细胞沉降于底部有利于收集更多细胞成分;
图2:底部沉淀物(白膜层,黄色箭头)
2、用吸管轻柔、缓慢旋转吸取细胞较多的底部沉淀物50ml,分次移入50ml离心管,平衡后以1600g/min 离心 10 min;
图3:
吸取底部沉淀物50ml,分次移入离心管
3、吸管吸弃上清液至分层处;
图4:轻柔、旋转多点吸取白膜层(黄色箭头),避免过深、过浅或用力多度
4、用吸管轻柔、多点吸取分层处的白膜层(白膜层细胞含量最多,若有肿瘤细胞也主要集中在白膜层)样本约0.5ml,滴至玻片上,用拉片法动作轻柔且均匀的涂片2 张,一张在潮干的情况下轻置于 95%乙醇与冰乙酸混合液中固定后续做HE染色,另一张自然干燥后续做瑞氏-吉姆萨特殊染色(MGG染色)。
5、自动染色机染色:HE染色程序,乙醇能沉淀白蛋白、球蛋白和核蛋白,但核蛋白沉淀后能溶于水,所以经95%乙醇固定的涂片,染色前不必经过水洗。
注意事项:
①离心后上清液尽可能吸干净避免细胞稀释,涂片后易引起掉片和收缩;
②
细胞含量少的样本一次离心无法涂片,需多次离心收集更多细胞成分;
③血液多的样本离心后注意吸取白膜层,避免吸管过深吸取过多红细胞。
二、液基制片方法及HE染色
1、剩余样本加细胞保存液10ml,平衡后以1600g/min 再次离心10min,为制作液基片做准备;
2、弃去上清液,根据细胞量加入1-5ml缓冲液混匀(血性样本只混匀白膜层,因目标细胞主要集中在白膜层),静置沉降10min后倒掉上清液,用缓冲液;
3、将黏附载玻片置于制片仓中(需要加过滤网),用吸管将白膜及缓冲液混匀物移入制片仓中,静置10-15min,倒掉上清液后取出黏附片用缓冲液冲洗掉表面未附着细胞成分,将黏附片置于95%酒精中固定5-10min;
4、自动染色机染色:HE染色程序(黏附片着色快,HE染色时间较涂片染色时间更短,若涂片及液基片同时染色则后者染色过深,不易诊断)
三、MGG制片及染色方法:
MGG制片方法同手工涂片,染色前需完全干燥后再进行染色,该方法的优势是单片单独染色,可避免交叉污染,因HE染液在缸中重复使用,偶而可见癌细胞污染,同时染MGG染色可排除是否为污染 。
四、细胞蜡块制作
1、将做完液基的离心管再次加入液体,平衡后以1600g/min 离心 10 min;
2、弃去上清,加入95%酒精5-10ML,平衡后以1600g/min 离心 10 min;
3、弃去上清,将50ML离心管倒置,静置2-3小时,如为血性标本,不可倒置,立放静置即可;再用包埋纸将凝固细胞包埋,放置福尔马林液中,上脱水机按组织标本走流程即可。
4、细胞蜡块包埋时,用切片刀将细胞组织纵切,90度翻转包埋,镜下可以看到包埋细胞全层。
五、总结几种技术制片方法的优缺点:
1. 传统手工涂片:
成本低、操作简单,但操作不当时容易产生人工假象和细胞形态的破坏,且存在杂质干扰、检测的细胞数量不足等。
2. 液基细胞学制片:
能及时保存和固定标本,最大限度去除粘液、杂质,细胞数量丰富,能大大提高阳性检出率,是目前较为推荐的检测方法。
3.手工涂片MGG染色:
单独滴染,排除污染可能。
4. 细胞蜡块制片:
当肿瘤细胞丰富时,可制成细胞蜡块,进一步进行免疫细胞染色及分子病理检测等。
本文转载自大兴病理,作者卞亚伟
转载仅作观点分享,版权归最初的原作者所有
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