王炸组合:单细胞 + CRISPR = 高通量基因功能探索

企业   2024-11-22 17:25   天津  


单细胞CRISPR筛选的前世今生


2012年诞生的CRISPR基因编辑技术于2020年荣获诺贝尔奖。自从2014年,张峰团队公开的人类全基因组CRISPR文库(Human CRISPR Knockout Pooled Library)已经帮助科学家筛选出了大量的功能基因,CRISPR技术被广泛地用于基因功能的挖掘与验证。
与此同时,2009年问世的单细胞转录组测序技术经过十多年的不断优化,已然成为了研究生命科学问题的强大工具,并多次被顶级国际期刊评为“年度最佳技术”。

目前单细胞CRISPR筛选方法包括Perturb-seq、CRISP-seq、CROP-seq、Mosaic-seq等,但很多方法都还停留在实验室开发阶段,且有成本、限制条件较多、应用面窄等诸多不利因素,而direct capture Perturb-seq[1]技术克服了这些缺陷,该技术利用10x Genomics平台的单细胞捕获技术,对样本中每个细胞进行barcode标记区分,实现一个样本同时分析数千个细胞的表达谱,以及其中的近百种CRISPR扰动,并将每一个细胞受到的CRISPR扰动类型准确记录。因此能够高通量地呈现细胞类型特异性的基因功能和通路信息,揭示受干扰的基因潜在的功能作用。诺禾致源也是在此技术基础上提供了完整的单细胞CRISPR筛选解决方案!

图1 10x Genomics 单细胞CRISPR筛选捕获建库原理



诺禾致源单细胞CRISPR筛选解决方案


诺禾致源基于10x单细胞捕获技术,提供高通量的CRISPR筛选解决方案。诺禾致源能够提供从单细胞捕获、纯化、建库、测序到生信分析的全套服务流程。您只需要将sgRNA设计好,转导至目的细胞,再通过抗性、荧光等筛选方法验证转导成功后,即可放心地预约单细胞悬液交给我们,三周左右时间便可拿到您想要的结果。为了保证提供最佳的实验结果,诺禾致源还可以提供上门捕获服务,以保证最佳的实验结果。

图2 诺禾致源基于10x单细胞捕获的高通量CRISPR筛选解决方案

价格方面也无需多虑,只比常规单细胞转录组测序多加一个单细胞CRISPR富集建库和测序的价格,便能从每个单细胞捕获样品中拿到:约50种sgRNA扰动后的单细胞精度转录本信息,以及每个细胞对应的扰动类型(sgRNA种类)。

图3 诺禾致源高通量单细胞CRISPR筛选服务流程

sgRNA数量的设计原则:推荐针对每个基因设计1-5个sgRNA,总量的10%为非靶向sgRNA,每个sgRNA需捕获100-200个细胞。

例如:预计针对15个靶标基因,每个基因设计3个sgRNA,共5个非靶向sgRNA,总计50个sgRNA(15*3+5),因此需捕获5k-1w个细胞,即对应一次10x捕获。

sgRNA骨架序列的设计原则:为了能够实现单细胞捕获sgRNA,骨架序列中需要加入特定的Capture Sequence(CS序列)。我们推荐进行单细胞5’转录组测序+单细胞CRISPR筛选,因为常规的载体中会包含这段骨架,详细设计方案请您参考10x官方文档[2](滑到文章结尾,点击阅读原文即可观看)

图4 单细胞CRISPR筛选数据结果展示

最终拿到的数据结果中,除了常规的转录本信息以外,还可以获得CRISPR数据的测序结果以及对应单个细胞的信息(图4)。大致分析流程如下(图5)。
图5 单细胞CRISPR生信分析流程
详细的结题报告信息,欢迎扫描下方二维码咨询小诺来获取,并进一步交流实验设计。




单细胞CRISPR文献案例分享


2020年3月,发表在Nat Biotechnol杂志上的文章Combinatorial single-cell CRISPR screens by direct guide RNA capture and targeted sequencing首次将direct capture Perturb-seq技术应用向公众展示(图6)。

图6  direct capture Perturb-seq的实验设计与验证

文章Single-cell CRISPR screens in vivo map T cell fate regulomes in cancer,于2023年11月15日发表于Nature。St. Jude Children's Research Hospital的Hongbo Chi课题组通过构建了含有800种sgRNA的KO文库,小鼠体内筛选后取 OT-I T细胞,制备并进行了16次单细胞捕获,最终通过过滤筛选得到42209个细胞的转录本和CRISPR信息。通过高通量单细胞CRISPR筛选,揭示了促进Tpex细胞从静息状态退出和丰富增殖性Tex细胞状态是抗肿瘤效果的关键方式,并提供了一个整合细胞命运调控组和可重编程功能决定因素的癌症免疫系统框架(图7)。

图7 体内肿瘤内CTLs(细胞毒性T淋巴细胞)的单细胞CRISPR筛选揭示了共功能模块和基因表达程序的关联。



未来展望


图8  基因功能的高通量筛选验证方法还有2-3个数量级的提升空间(图片来源:综述原[3]

五十年前,基因表达的主要机制还在被研究中,第一个序列特异性切割的证据才刚刚出现。十年前,单细胞实验还局限于青蛙卵和多孔板,才刚刚被证明在哺乳动物细胞中有效。目前的单细胞CRISPR探索还停留在几万次的通量,而生命科学的探索空间高达1010。技术在飞速发展,成本在不断压缩,总有一天我们会触及单个细胞内的全部组学信息。

诺禾致源单细胞空间测序平台


诺禾致源成立至今已13年,作为创立于中国、服务全球科学家的基因科技产品和服务提供者,诺禾致源的测序实验室已遍布世界各地,海外实验室包括美国、英国、新加坡等等。诺禾致源的单细胞空间测序业务也已辐射全球数十个国家,支持全世界科学家发表高分文章291篇,影响因子共4400+,涉及研究领域和项目经验不仅包括医学研究如肿瘤异质性、干细胞分化、组织器官发育、免疫微环境等等,还有其他哺乳动物、家禽、水生动物、经济作物等众多物种的样本处理经验,成功制备样本30000多例;技术平台囊括10x Chromium、10x Visium、10x Xenium、Stereo-seq、BD Rhapsody、Nanostring DSP、MobiNova、DNBelab C-TaiM 4等多个平台,满足您的多组学研究需求。在未来,诺禾致源将继续秉承“专业、创新、诚信、共赢”的价值观,为您提供更优质的基因科技产品和服务。


参考文章及链接:

[1] Replogle, J.M., Norman, T.M., Xu, A. et al. Combinatorial single-cell CRISPR screens by direct guide RNA capture and targeted sequencing. Nat Biotechnol 38, 954–961 (2020).

[2] https://www.10xgenomics.com/support/single-cell-gene-expression/documentation/steps/sample-prep/chromium-single-cell-crispr-screening-experimental-planning-guide

[3] Schraivogel D, Steinmetz LM, Parts L. Pooled Genome-Scale CRISPR Screens in Single Cells. Annu Rev Genet. 2023 Nov 27;57:223-244. 


戳这里,阅读原文即可参考详细设计方案

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