【视频解读】西南林业大学范方宇教授等：负载姜黄素/花色苷的木薯淀粉基W1/O/W2型Pickering双重乳液的制备及性质

杨翦秋（本文第一作者）的讲解

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该文章的视频解读

W₁/O/W₂(water-in-oil-in-water)型双重乳液由两种不同乳化剂将不同性质的乳液结合组成。内层以油性乳液(W₁/O)为基础,中间层(O)为油性乳液形成的薄膜,外层为再覆盖的连续水相(W₂)。W₁/O/W₂型双重乳液是一种可实现对水溶和脂溶功能活性成分及其复合物稳定包裹,达到良好运输、保护和释放效果的运载体系^[1],现已作为运输载体应用于诸多领域^[2-4]。然而,双重乳液界面能较高,乳滴易聚结、易破乳。将具有不可逆吸附机制的固体颗粒代替传统表面活性剂,可有效提升乳液表面荷载,避免双重乳液絮凝、聚结,提升乳液的稳定性^[5]。

目前,很多生物来源固体颗粒已用于稳定食品级Pickering双重乳液,如纤维素、蛋白质^[2]、果胶^[6]等。众多有机态颗粒中,淀粉微纳米颗粒来源广、安全性高,且易通过修饰颗粒表面性质调节润湿性^[7]。木薯淀粉由于支链淀粉含量较高,具有缓释性强、溶解性及溶胀性好等优点而备受关注^[8]。天然木薯淀粉亲水性较强,需通过减小尺寸、疏水改性等手段使其成为乳化性良好的固体颗粒乳化剂。杨翦秋等^[9]、姚先超等^[10]证实了木薯纳米淀粉、木薯改性淀粉均具有较优的乳化性能。以木薯纳米淀粉、木薯改性淀粉稳定的Pickering乳液具有较大的应用潜力。目前有关木薯淀粉基乳液的研究集中于Pickering单乳液及纳米乳液,对于木薯纳米淀粉、木薯改性淀粉共稳定Pickering双重乳液的制备及其稳定性方面的研究鲜见报道。

姜黄素、花色苷是自然界中广泛存在的生物活性物质,具有多种保健作用,但二者化学稳定性较差,经人体消化系统处理后易降解失活,难以到达指定部位并缓慢释放,生物利用率低^[11-14]。有研究证实,将姜黄素、花色苷单独负载于Pickering乳液中能显著提升其稳定性与生物利用率^[5,7]。崔凤展^[11]研究发现,将疏水性活性因子姜黄素和亲水性表没食子儿茶素没食子酸酯共同负载于乳清分离蛋白纤维素基双重乳液中,双功能因子能发挥协同作用。此外,多酚化合物与黄酮类化合物复合,具有提升抗氧化性、降脂活性等功效^[15]。因此,探索合适的Pickering双重乳液共运载体系,对提升姜黄素、花色苷的负载稳定性,改善其生物利用率,具有重要的实际意义。

本研究拟采用木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉代替传统双重乳液乳化剂,制备同时负载花色苷、姜黄素的W₁/O/W₂型Pickering双重乳液;表征不同木薯醋酸酯变性淀粉质量分数的双重乳液的形态、粒径、Zeta电位、负载率及贮藏稳定性;探讨经体外消化后富含活性物质双重乳液的保留率与生物利用率变化情况。本研究旨在为拓宽木薯淀粉的应用及食品级Pickering双重乳液的开发提供理论参考。

1.1 材料与试剂

木薯淀粉(食品级),江苏味门食品有限公司;木薯醋酸酯变性淀粉(食品级),杭州普罗星淀粉有限公司;调和油(大豆油68%、菜籽油21%、葵花籽油4.5%、稻米油3%、玉米油2%、芝麻油0.6%、花生油0.5%、亚麻籽油0.4%),益海嘉里粮油食品有限公司。

姜黄素(分析纯),上海麦克林生化科技股份有限公司;蓝莓提取物(食品级),花色苷质量浓度36%,山东圣嘉德生物科技有限公司;模拟唾液(pH值6.5)、模拟胃液(pH值2.0)、模拟肠液(pH值7.4),3种模拟液均为分析纯,东莞市创峰自动化科技有限公司。

1.2 仪器与设备

XINYI-IID型超声波细胞粉碎机,宁波新艺超声设备有限公司;FD5-3型冷冻干燥机,美国Gold-Sim公司;FJ200-SH型实验室数显高速分散均质机,上海泸析实业有限公司;UV-2600型紫外可见分光光度计,日本岛津仪器有限公司;SK2009型光学显微镜,深圳赛克电子科技有限公司;Zetasizer Nano ZS90型激光粒度仪,英国Malvern仪器有限公司;SHZ-82型恒温振荡器,上海力辰仪器科技有限公司。

1.3 实验方法

1.3.1 木薯纳米淀粉的制备

采用沉淀法制备木薯纳米淀粉^[9]。称取10.00 g木薯淀粉与200 mL去离子水混合,100 r/min,100 ℃恒温搅拌1 h至淀粉完全糊化。待冷却至室温,455 W超声15 min,100 r/min磁力搅拌15 min,缓慢匀速注入120 mL无水乙醇。混合液8 000 r/min离心10 min,沉淀加20 mL无水乙醇离心洗涤3次。冷冻干燥,得木薯纳米淀粉。

1.3.2 淀粉颗粒接触角的测定

采用接触角/表面张力测试仪对样品的接触角进行测定。将0.10 g样品与1 mL去离子水混合,混合溶液浇筑于玻璃片,35 ℃干燥成膜。在膜表面缓慢滴入2 μL去离子水,水滴稳定后,拍摄液滴图像并测量接触角。

1.3.3 负载姜黄素/花色苷的W₁/O/W₂型Pickering双重乳液的制备

参照文献[5],采用两步法制备负载姜黄素/花色苷的W₁/O/W₂型Pickering双重乳液(图1)。取0.02 g蓝莓提取物与100 mL去离子水混匀,作为内层水相(W₁)。将0.001 g姜黄素与100 mL调和油混匀,60 ℃恒温磁力搅拌3 h至姜黄素溶解,作为油相(O)。在O中加入木薯醋酸酯变性淀粉,以不同质量分数(3%、4%、5%、6%、7%)的木薯醋酸酯变性淀粉为内层颗粒乳化剂,70 ℃磁力搅拌20 min。将O、木薯醋酸酯变性淀粉混合液冷却至室温后加入W₁,使O与W₁的体积比为4∶1,14 000 r/min均质2 min,得W₁/O初乳。

图1 双重乳液制备流程

Fig.1 Preparation process of double emulsions

本研究团队前期发现,木薯纳米淀粉质量分数为7.50%、油相体积分数为50%时,纳米淀粉基Pickering乳液综合性质最佳。因此,以质量分数为7.50%的木薯纳米淀粉为外层颗粒乳化剂,将其与去离子水(W₂)混匀,50 ℃水浴2 min。加入初乳,使O与W₂的体积比为5∶5,14 000 r/min均质3 min,得到负载姜黄素/花色苷的W₁/O/W₂型双重乳液。

1.3.4 淀粉颗粒及乳液粒径、Zeta电位测定

将0.10 g淀粉颗粒或0.1 mL乳液(贮藏48 h)与1 mL去离子水混合,随后超声处理(10 min、200 W)防止聚集。将分散均匀的样品放入粒度及电位分析仪对样品进行测量。测试参数:温度25 ℃,分散相为水(折射率1.33),每个样品自动测定 3次。

1.3.5 乳液显微形态观察

采用光学显微镜对乳液显微形态进行分析。分别吸取质量分数为3%、4%、5%、6%、7%的木薯醋酸酯变性淀粉乳液1.00 μL,用5倍蒸馏水稀释后置于载玻片。缓慢盖上盖玻片,防止气泡产生,固定于载物台,100倍物镜油浸观察,放大倍数为1 000。

1.3.6 乳液负载率测定

1.3.6.1 姜黄素负载率计算

参考文献[5],绘制姜黄素标准曲线,得回归直线方程为y=168.3x-0.098 5,R²=0.999。取1.00 mL质地均匀的乳液与4 mL无水乙醇混合,涡旋2 min,充分混匀后4 000 r/min离心10 min,取1.00 mL上清液用无水乙醇稀释。以无水乙醇做空白对照,于425 nm处测定样品吸光度。根据标准曲线方程计算姜黄素质量浓度。姜黄素负载率按式(1)计算。

负载率

(1)

式(1)中:C_t,初始添加的姜黄素或花色苷质量浓度,mg/mL;C_f,新鲜制备的乳液姜黄素或花色苷降解量,mg/mL。

1.3.6.2 花色苷负载率计算

参考文献[7],采用pH示差法测定样品花色苷质量浓度。取1.00 mL质地均匀的乳液与4 mL蒸馏水混匀,涡旋2 min,充分混匀后4 000 r/min离心10 min。取1.00 mL下清液,分别用pH值为1.00的氯化钾-盐酸缓冲液和pH值为4.50的邻苯二甲酸氢钾-氢氧化钠缓冲液稀释。避光平衡15 min,以蒸馏水做空白对照,在510 nm和700 nm处测定样品吸光度。花色苷质量浓度按式(2)计算,负载率参照式(1)计算。

(2)

式(2)中:C₀,花色苷质量浓度,mg/mL;ΔA,吸光度值差,(A_{510 nm}-A_{700 nm})_{pH 1.00}-(A_{510 nm}-A_{700 nm})_{pH 4.50};Mr,Cy-3-Glu的相对分子质量,449.2;DF,样品稀释倍数;ε,Cy-3-Glu的摩尔消光系数,26 900 L/(mol·cm);L,光程长,1 cm。

1.3.7 姜黄素、花色苷保留率计算

参照文献[7],将质量分数为6%的木薯醋酸酯变性淀粉新鲜乳液分别置于低温(4 ℃)、室温(25 ℃)、高温(40 ℃)下避光贮藏20 d,观察乳液表观形态的变化情况。每隔4 d按1.3.6.1和1.3.6.2中方法测定姜黄素、花色苷质量浓度。以保留率为指标,探究不同贮藏温度、贮藏时间对乳液负载稳定性的影响,保留率按式(3)计算。

保留率

(3)

式(3)中:C_t,初始添加的姜黄素或花色苷质量浓度,mg/mL;C_s,一段时间后乳液中姜黄素或花色苷降解量,mg/mL。

1.3.8 姜黄素、花色苷生物利用率计算

体外消化实验参考文献[12],稍加修改。分别将姜黄素溶液(0.001 g姜黄素与100 mL调和油混匀,60 ℃恒温磁力搅拌3 h至姜黄素溶解)、花色苷溶液(0.02 g蓝莓提取物与100 mL去离子水均匀混合)以及质量分数6%的木薯醋酸酯变性淀粉乳液与模拟唾液按体积比1∶1混合,置于恒温振荡器,37 ℃、120 r/min振荡10 min后测定样品姜黄素、花色苷质量浓度。将口腔消化产物与模拟胃液按体积比1∶1混合,置于恒温振荡器,37 ℃、120 r/min振荡2 h后测定样品姜黄素、花色苷质量浓度。将胃消化产物与模拟肠液按体积比1∶1混合,置于恒温振荡器,37 ℃、120 r/min振荡2 h后测定样品姜黄素、花色苷质量浓度。经模拟口腔、胃、肠消化后的消化产物以10 000 r/min离心20 min,取10.00 mL上清液(姜黄素和花色苷的胶束或可溶性部分)测定姜黄素、花色苷质量浓度。每个时刻姜黄素、花色苷在体外模拟消化液中的保留率参照式(3)计算。采用式(4)计算生物利用率。

生物利用率

(4)

式(4)中:C_m,消化产物中姜黄素或花色苷质量浓度,mg/mL;C_i,未经消化乳液中姜黄素或花色苷的质量浓度,mg/mL。

1.4 数据处理

采用SPSS 25.0软件进行数据处理,Origin 2018软件绘图,ANOVA分析数据差异显著性(P<0.05),Image J v1.8.0计算显微图片中乳滴的粒径。所有实验均重复3次。

2.1 乳液及淀粉颗粒粒径、Zeta电位分析

2.1.1 淀粉颗粒粒径及Zeta电位分析

固体颗粒稳定Pickering乳液的综合能力取决于固体颗粒自身性质(粒径、表面电荷、润湿性)以及颗粒间的相互作用等。固体颗粒粒径是影响Pickering乳液稳定性的重要因素之一。小粒径的固体颗粒在没有吸附阻力的情况下,吸附能力更强,可在两相界面快速堆积,形成稳定的乳液^[5]。有研究证实,固体颗粒表面疏水性与Zeta电位绝对值之间存在显著正相关^[16]。此外,Zeta电位可在一定程度上对斯特恩双电层理论中带电固体表面相同符号电荷的数量及分散相粒子间相互作用力强度进行反映,其绝对值大小可表征分散体系的稳定性,绝对值越大,粒子间的静电斥力作用力越大,分散体系稳定性越强^[10]。因此,颗粒的表面电荷不仅能解释颗粒在水中的分散状态,判断其亲水、疏水性,还与Pickering乳液的稳定性密切相关。淀粉颗粒粒径、Zeta电位分析结果见表1。由表1可知,相较于木薯淀粉,木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉粒径均显著减小,电位绝对值显著增大(P<0.05),且木薯醋酸酯变性淀粉电位绝对值最大。说明三者中木薯醋酸酯变性淀粉的表面疏水性最强,相较于木薯淀粉,木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉具有更好的维持乳液稳定性的能力。

表1 淀粉颗粒的粒径及Zeta电位

Tab.1 Particle size and Zeta potential of starch particles

不同小写字母表示组间差异显著(P<0.05)。

2.1.2 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液粒径及Zeta电位的影响

添加不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉的乳液粒径及Zeta电位分析结果见图2。由图2(a)可知,木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为3%～7%时,Pickering乳液粒径为3.65～9.69 μm,随木薯醋酸酯变性淀粉质量分数的增加,乳液粒径呈先减小后增大的趋势,质量分数为6%时,达到最小,为3.65 μm。Zeta电位可表示乳滴间相互排斥力或吸引力的强度,是度量分散系稳定性的重要指标。由图2(b)可知,木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为3%～7%时,Zeta电位绝对值呈先增大后减小趋势;质量分数为6%时,电位绝对值最大,为14.50 mV。

图2 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液粒径及Zeta电位的影响

Fig.2 Effects of mass fraction of cassava acetylated starch on particle size and Zeta potential of emulsions

内层颗粒乳化剂质量分数较少时,不足以稳定W₁/O油水界面,液滴间易发生碰撞、聚集,乳滴尺寸变大;随着稳定界面的颗粒质量分数增多,乳液内层液滴碰撞效率降低,分散相中乳滴不易聚结^[17]。乳液的微观结构对乳液稳定性起着重要作用,乳滴粒径越小,两相界面表面积越大,连续相对乳滴的表面效应比例越小,乳液越稳定。随表面电荷积累,乳滴所带同种电荷增多(即Zeta电位绝对值变大),乳滴间相互排斥力增强,有助于抑制乳液絮凝与聚结,提升乳液稳定性^[18]。质量分数过高(7%)时,多余的木薯醋酸酯变性淀粉聚集,碰撞加剧,造成液滴聚结^[19],粒径增大,Zeta电位绝对值随之减小,不利于乳液体系的稳定性。因此,木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为6%时,乳液的稳定性最强。

2.1.3 淀粉颗粒粒径接触角分析

润湿性是确定乳液类型以及判断乳液能否形成的重要因素。表面润湿度可通过颗粒三相接触角θ直观反映,θ小于90°时,固体颗粒优先被水润湿,形成水包油型(O/W)Pickering乳液;θ大于90°时,颗粒亲油性更强,形成油包水型(W/O)Pickering乳液;θ在90°左右,颗粒具有双亲性,有利于其在界面的有效吸附与排列,既可形成稳定的O/W型Pickering乳液又可形成W/O型Pickering乳液^[5]。淀粉颗粒的接触角见图3。由图3可知,木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉的θ分别为86°、92°。说明木薯纳米淀粉更加亲水,能用于稳定O/W型Pickering乳液;木薯醋酸酯变性淀粉中由于疏水酯羰基的引入,赋予了淀粉颗粒亲油性。本研究结果表明,木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉可分别作为亲水、亲油性颗粒乳化剂稳定O/W、W/O型乳液。本研究结果旨在为后续制备淀粉基W₁/O/W₂型Pickering双重乳液提供理论依据。

图3 木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉接触角

Fig.3 Contact angle of cassava nanostarch and cassava acetylated starch

2.2 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液显微形态的影响

添加不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉的乳液显微形态见图4。由图4可知,添加不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉的乳液,乳滴均由较大的球状油滴包裹着密集小液滴,分散于W₂。乳滴形状规则,表面光滑,未见裂痕。最内层水相为粉色小液滴,表明W₁是花色苷水溶液,中间相为黄色,表明O是溶有姜黄素的油溶液。不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉乳滴均呈现出“三相两膜”多隔室结构。黄耀成^[20]在制备乳清分离蛋白复合物稳定的负载原花青素Pickering双重乳液时也观察到了乳滴具有“三相两膜”的特点。本研究结果证实了典型 W₁/O/W₂型Pickering双重乳液的形成。乳滴整体粒径为2.00～10.00 μm,当木薯醋酸酯变性淀粉质量分数由3%增加至6%时,乳滴分布趋于均匀,粒径明显减小。木薯醋酸酯变性淀粉的质量分数较低(3%、4%)时,不足以形成致密的保护层覆盖W₁/O液滴表面,为避免乳液体系失稳,相邻液滴通过共用木薯醋酸酯变性淀粉分子层维持界面平衡^[21],导致桥连絮凝现象出现,形成大粒径乳滴。木薯醋酸酯变性淀粉质量分数增加至7%时,出现较多未被包裹的水滴和油滴,一方面在W₁/O初乳形成时,过量的木薯醋酸酯变性淀粉于木薯纳米淀粉表面吸附,使木薯纳米淀粉接触角发生改变无法稳定外界面;另一方面在第2次乳化过程中,木薯醋酸酯变性淀粉与木薯纳米淀粉争夺O/W₂吸附层,木薯纳米淀粉吸附效率降低^[22]。本研究结果证明,木薯醋酸酯变性淀粉、木薯纳米淀粉能有效地为负载姜黄素、花色苷的Pickering双重乳液共递送体系提供稳定作用。

图4 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液显微形态的影响

Fig.4 Effects of mass fraction of cassava acetylated starch on micro-morphology of emulsions

2.3 乳液功能特性分析

2.3.1 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液中姜黄素、花色苷负载率的影响

添加不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉的乳液,对姜黄素、花色苷的负载率见图5。由图5可知,木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为3%～7%时,花色苷和姜黄素的负载率呈先上升后下降的趋势。原因是木薯醋酸酯变性淀粉质量分数过低(3%～5%),不足以覆盖液滴表面;质量分数过高(7%),会导致液滴聚集,都会造成活性成分的外逸。添加不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉的乳液,姜黄素负载率为88.04%～95.23%,花色苷负载率为78.47%～93.00%。木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为6%时,姜黄素、花色苷的负载率均最大,分别为95.23%、93.00%。在姜黄素^[23]、花色苷^[1]单独负载于双重乳液的报道中,二者负载率分别为88.00%±2.00%、82.99%±2.38%。本实验结果略高,说明共运载体系可提升对姜黄素、花色苷的负载稳定性,体现了淀粉基双重乳液共运载体系高效负载的优势。本研究结果表明,木薯纳米淀粉质量分数为7.5%,木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为6%的条件下,能支撑淀粉颗粒在乳液内、外双重界面不可逆吸附,形成致密的保护膜,有效抑制姜黄素、花色苷泄漏,赋予双重乳液对姜黄素、花色苷更稳定的负载。

不同小写字母表示组间差异显著。

图5 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对姜黄素、花色苷负载率的影响

Fig.5 Effects of mass fraction of cassava acetylated starch on encapsulation efficiency of curcumin and anthocyanin

2.3.2 木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液贮藏稳定性的影响

2.3.2.1 不同贮藏温度时木薯醋酸酯变性淀粉质量分数对乳液表观形态的影响

添加不同质量分数木薯醋酸酯变性淀粉的乳液在4、25、40 ℃贮藏20 d的表观形态变化见图6。由图6(a)可知,25 ℃放置1 h的新鲜乳液,在木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为3%～6%时,可形成均匀的乳液体系,表现出半固态凝胶特性;质量分数增加到7%后,由于固体颗粒浓度过高,内层液滴布朗运动加剧,在短时间内出现明显絮凝现象,导致乳液体系失稳^[24]。由图6(b)至(d)可知,随贮藏时间延长至20 d,不同木薯醋酸酯变性淀粉质量分数、不同温度条件下,所有乳液的半固态凝胶性均消失,呈流动性,这是由于姜黄素、花色苷的外逸破坏了乳液原有的三维网络结构而造成的。此外,在3种温度下,贮藏20 d,随木薯醋酸酯变性淀粉质量分数由3%增加至6%,乳液分层现象均逐渐减弱。一方面是因为乳滴尺寸减小,在重力作用下,外水相沉降速度减缓。Chen等^[25]也证实了乳滴尺寸越小,奥斯特瓦尔德熟化速率越慢,乳液体系相对稳定。另一方面,油相中分散的木薯醋酸酯变性淀粉越多,黏度越大,乳液体系越趋于稳定。在4 ℃条件下贮藏20 d,木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为3%～5%的乳液较为稳定,出现轻微分层;质量分数6%的乳液未见明显分层,仍能保持均一体系。但40 ℃和25 ℃的贮藏条件下,由于温度升高导致乳液中紧密堆积的液滴与乳滴逐渐分散,乳液上层出现浮油,下层沉淀明显,并伴有轻微油脂酸败味。

图6 不同温度和木薯醋酸酯变性淀粉质量分数条件下乳液贮藏前后表观形态变化

Fig.6 Changes of emulsions apparent morphology before and after storage under different temperature and cassava acetylated starch mass fraction

结合不同木薯醋酸酯变性淀粉质量分数的Pickering双重乳液的显微形态、粒径、Zeta电位、负载率、贮藏过程表观形态变化的分析结果,发现木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为6%时,双重乳液展示出最优性能。故选择6%为木薯醋酸酯变性淀粉质量分数,分析不同贮藏温度与时间的乳液中姜黄素、花色苷的负载稳定性,并进行体外模拟消化实验,探究姜黄素、花色苷在体外消化过程中保留率的变化规律及生物利用率。

2.3.2.2 乳液对姜黄素、花色苷的负载稳定性分析

木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为6%时,乳液在4、25、40 ℃贮藏20 d,姜黄素、花色苷的负载稳定性见图7。由7(a)可知,随贮藏时间的延长,姜黄素的保留率逐渐降低。原因可能是随着姜黄素在O/W₂油水界面的累积,因疏水相互作用、范德华力等作用力^[26],木薯纳米淀粉的润湿性发生改变,导致姜黄素的负载稳定性下降。在不同温度贮藏20 d,乳液均具有较高的姜黄素保留率(>83.00%)。尤其是在4 ℃条件下,20 d后仅有约10%的姜黄素泄漏,相较于25、40 ℃时贮藏的乳液,姜黄素保留率的降幅较小。可能是因为低温抑制了乳滴间的相互碰撞频率,使乳液贮藏稳定性得到提高^[27]。随着温度升高,乳液体系中的热运动加剧,三维网络结构分散直至乳液体系失稳,姜黄素逐渐析出,而高温下游离的姜黄素不稳定,易发生降解。

不同小写字母表示组间数据差异显著。

图7 不同贮藏温度和时间条件下的乳液中姜黄素、花色苷的负载稳定性

Fig.7 Encapsulation stability of curcumin and anthocyanin in emulsions under different storage temperatures and times

由图7(b)可知,与姜黄素保留率的规律一致,添加不同质量分数的木薯醋酸酯变性淀粉的乳液,随时间的延长,乳液中花色苷保留率降低。这也符合Rabeio等^[28]报道的W/O型纳米乳液中花色苷保留率随贮藏时间变化的规律。不同温度贮藏20 d后,花色苷的保留率由高到低依次为:4 ℃(60.21%)、25 ℃(47.32%)、40 ℃(34.93%)。林晓瑛^[7]以蓖麻醇酯为乳化剂制备W/O型乳液,并对花色苷进行负载,40 ℃贮藏6 d后乳液中已检测不出花色苷。该结果略低于本实验结果,体现出共递送双重乳液运载体系在功能因子负载稳定方面较好的优势。猜想是由于双重乳液中花色苷被负载于最内层水相,可很大程度地减少外界环境对其结构和稳定性的影响^[11]。此外,油相中的姜黄素也能对花色苷起到保护作用。结果表明,不同贮藏温度与贮藏时间对双重乳液中姜黄素、花色苷具有协同保护作用,随着温度的升高和时间的延长,乳液物理稳定性越差,负载稳定性越差。

2.3.3 负载姜黄素、花色苷的双重乳液体外消化特性分析

双重乳液最大优势是可同时对亲水、亲油功能成分进行负载,将功能因子送到指定部位并缓慢释放,有效避免活性物质在消化过程中降解,达到提升活性物质作用时间、效果的目的^[29]。木薯醋酸酯变性淀粉质量分数为6%时,乳液在模拟口腔、胃、肠消化中姜黄素、花色苷的保留率变化情况见表2。

表2 模拟消化过程乳液中姜黄素、花色苷的保留率

Tab.2 Retention rate of curcumin and anthocyanin in emulsions during simulated digestion process %

不同小写字母表示组间数据差异显著(P<0.05)。

2.3.3.1 模拟唾液消化情况

由表2可知,模拟口腔消化后,姜黄素、花色苷保留率较高,但仍有小部分被降解。这可能是淀粉颗粒在模拟唾液中α-淀粉酶的催化作用下发生水解反应被消化所造成的。淀粉水解导致乳滴结构塌陷,液滴释放到W₂,O向周围水相扩散或聚结^[1],姜黄素、花色苷失去保护,部分被降解。

2.3.3.2 模拟胃液消化情况

由表2可知,与口腔消化相比,经模拟胃消化后,姜黄素、花色苷的保留率变化不明显。原因是模拟胃液中未加入淀粉类酶,淀粉颗粒抵抗胃消化的能力较强,乳滴被破坏程度很小。同时,木薯淀粉基双重乳液形成的油水混合小乳滴具有特殊的致密凝胶网络结构,能有效抵抗胃酸侵蚀^[30]。有研究结果证实,花色苷在酸性条件下由半缩酮转化为烊盐阳离子,呈相对稳定状态,在模拟胃消化过程中仅有部分被降解^[31]。Flores等^[32]在研究中也发现双重乳液受模拟胃液影响很小。

2.3.3.3 模拟肠液消化情况

由表2可知,消化未完全的产物进入小肠,与含有胆盐、磷脂、胰蛋白酶等的模拟肠液混合。消化2 h后,姜黄素、花色苷降解率达到最大,保留率显著减小(P<0.05)。说明淀粉基双重乳液在模拟消化中活性成分的降解主要发生在肠消化阶段。原因是在肠消化过程中,具有表面活性功能的胆盐和磷脂逐渐吸附于乳滴表面,促进了食物残渣中脂质的消化。同时在胰蛋白酶的作用下,O进一步被乳化分解,导致O/W₂、W₁/O界面无法稳定吸附乳化剂,双重乳液结构被严重破坏^[30]。此外,由于模拟消化液pH值以及离子强度的变化,消化液中带电粒子在木薯醋酸酯变性淀粉、木薯纳米淀粉表面吸附,使界面性质发生改变,颗粒乳化剂的稳定能力受到影响^[1]。这些因素都会造成活性成分大量外泄。失去保护的姜黄素在模拟肠液中被快速降解,花色苷也因在模拟肠液碱性环境下以不稳定的甲醇假碱形式存在^[31],稳定性大大降低而被降解。

2.3.3.4 姜黄素、花色苷体外生物利用率分析

生物利用率是指人体消化后,物质在人体内可发挥生理功能部分的比例,即消化完成后某物质经小肠吸收并到达体细胞的比例^[33]。本实验结果表明,在双重乳液完成整个模拟消化后,仍有超过一半的姜黄素、花色苷游离于肠液中。乳液在模拟消化后姜黄素、花色苷的生物利用率见图8。由图8可知,姜黄素、花色苷生物利用率分别为41.59%、76.29%,与本实验测得游离姜黄素、花色苷的生物利用率相比(10.27%、25.18%),显著提升约4倍、3倍(P<0.05)。这是因为,姜黄素存在于消化产物所形成的胶束中心,胶束结构能增加姜黄素溶解度,对保护姜黄素以及提高其生物利用率起到一定作用。花色苷与消化产物中的脂质分子相互作用,可更完全地进入胶束结构,同时姜黄素作为一种抗氧化剂能保护内层水相中的花色苷在模拟消化环境中免受降解,使花色苷生物利用率高效提升^[11]。此外,共运载乳液体系在模拟消化系统中结构较稳定,可保护活性物质免受降解,而游离姜黄素和花色苷在消化系统中生物利用率较低,主要是其水溶性与化学稳定性较差所导致。有研究证实,双重乳液中活性功能因子与乳化剂间的疏水作用和络合作用,能起到延缓释放、确保较低扩散速率与较高生物利用率的作用^[29]。本研究结果表明,木薯淀粉基 W₁/O/W₂型Pickering双重乳液在模拟消化过程中能为姜黄素、花色苷提供屏障和保护作用,有效提升姜黄素、花色苷在体内的生物利用率,有利于二者后续的吸收利用与生理功能发挥,是一种具有发展潜力的运载体系。

不同小写字母表示组内数据差异显著。

图8 模拟消化后乳液中姜黄素和花色苷的生物利用率

Fig.8 Bioaccessibility of curcumin and anthocyanin in emulsions after simulated digestion

本研究以木薯纳米淀粉、木薯醋酸酯变性淀粉为固体颗粒乳化剂构建的食品级负载姜黄素/花色苷淀粉基W₁/O/W₂型Pickering双重乳液体系,对姜黄素、花色苷具有较高的包埋率(95.23%、93.00%)和较好的贮藏稳定性。体外模拟消化表明,木薯淀粉基W₁/O/W₂型Pickering双重乳液共运载体系所具有的特殊“三相两膜”多隔室结构可有效避免姜黄素、花色苷两种不同特性活性物相互作用所引起的生物活性降低,保护姜黄素、花色苷免受消化环境降解,并将二者的生物利用率显著提升至41.59%、76.29%(P<0.05)。本研究结果证实,木薯淀粉基Pickering双重乳液是一种潜在的、具有良好缓释递送功能的微型载体系统。双重乳液的形成机理以及功能因子间的协同作用有待进一步研究。

制作：路旭东

编辑：张逸群、李宁

审核：叶红波