HIFU 病变的组织学特征

健康   2024-10-31 11:21   江苏  

背景:高强度聚焦超声(HIFU)可以通过热消融破坏组织,热消融可能伴随声空化和/或组织水沸腾,但这些治疗的生物学和组织学效应尚未得到充分记录。在此,描述了使用在体内大鼠肝脏中充分表征的 HIFU 暴露随时间变化的详细组织学分析。

方法:所使用的暴露引起(i)热损伤,伴有声空化和/或组织水沸腾,或(ii)主要是热损伤。使用主动和被动方法检测空化活动。组织学评估涉及苏木精和伊红 (H&E)、天狼星红和免疫组织化学染色。

结果:HIFU 照射后发现了明显的同心损伤区域。最外环显示出红色 H&E 染色边缘,其特征是出血。由于细胞外空间增加,相邻的内带呈白色。下一个区域的形态取决于曝光。在没有组织声空化/水沸腾的地方,这是病变中心,其中可以看到热固定的细胞。在发生声空化/沸腾的地方,可以看到最中心的区域有直径达数百微米的不规则孔。在两种类型 HIFU 暴露的外周,在出血的最外环内都可以看到裂解的 caspase-3 和 Hsp70 染色,同时还观察到炎症反应。到第 7 天,HIFU 损伤中心形成了一个独特的无细胞区域。

结论:这些结果确定了形态学效应,并阐明了在存在或不存在声空化/组织水沸腾的情况下 HIFU 引起的热损伤的异同。


一、简介


高强度聚焦超声 (HIFU) 或聚焦超声手术 (FUS) 治疗软组织肿瘤依赖于产生紧密聚焦的超声场,其中焦点处的强度足以引起不可逆的细胞损伤。主要的生物损伤机制是加热[引文1 ]。目前对细胞水平热损伤的大部分理解都源自体外和全身高温研究。一般来说,温度每升高一度高于 43°C,达到给定细胞损伤水平所需的时间就会减少一半。引文2 ]。局部热疗的效果取决于所达到的温度、散热速率以及组织的特定热敏感性。引文3 ]。总能量吸收由组织的吸声系数、原位强度和暴露时间决定。从热生物学中可知,当细胞被加热到 56°C 至少 1 s 或相当于该温度的热时,蛋白质就会发生变性。引文1 ]。这会导致组织凝固性坏死[引文4 ]。

空化的机械效应也可能造成损坏。超声波通过组织传播的稀薄阶段发生的负压会导致气体和/或蒸汽填充气泡的形成和/或活动,这一过程称为声空化。引文5 ]。当此类气泡围绕其平衡半径(通常为几微米,具体取决于驱动频率)稳定振荡时,就会发生非惯性(稳定)空化。或者,气泡可以增长到其平衡半径的许多倍,然后剧烈破裂。这称为惯性空化。 HIFU 场内空化的第二种机制来自细胞内和细胞外水的超声波 (US) 加热。这种通过气体蒸气的外溶而发生的热诱导气泡活动通常称为“沸腾”。引文6-8 ]。这与内在组织解剖不同,后者诱发的生物效应是由于气泡云的剧烈振荡和崩溃造成的。

已使用两种类型的技术来监测空化活动。主动空化检测(ACD)涉及检测气泡的能量反向散射[引文9–12 ] 或暴露期间超声换能器电阻抗的测量[引文13 ]。后一种方法通常采用阻抗电桥来监测由于气泡反向散射而导致的换能器负载变化。声空化(惯性和非惯性)和沸腾气泡都可以散射超声波。引文14 ]。另一种技术通过监测驱动电压和电流来确定传感器阻抗[引文8 ]。被动空化检测(PCD)涉及检测主动气泡产生的声发射[引文15-19 ]。在压力场中振荡的气泡发出特征声信号[引文20 ]。宽带发射通常被视为惯性空化的独特指标。超谐波发射与非惯性空化的非线性稳定振荡特性相关。引文[10 ],但也是由于较大的“沸腾”气泡或较小的声空化气泡簇对非线性传播的美国波的高频分量的散射造成的。次谐波和超谐波发射通常与非惯性气泡振荡有关[引文21、引文22 ]。因此,可以通过检测不同的声发射来区分非惯性空化和惯性空化。最后,在离体组织中,细胞内或细胞外的水“沸腾”可以在 HIFU 暴露期间产生可闻的(1-10 kHz)发射,可以听到清晰的“爆裂声”(有时称为“爆裂声”)。作为“爆米花”)[引文8 ]。

据报道,正常肝组织和荷瘤肝组织在不同的 HIFU 暴露后肝脏发生组织学变化。陈等人。显示 HIFU 诱导的含孔病变的组织学图像(1.7 MHz,原位I SAL,212–266 W/cm 2,5 s 暴露时间)[引文23 ]。既观察到病灶中心的直接组织损伤,也观察到治疗体积外的间接组织损伤,并得出结论,病灶区域外的间接组织损伤不可能是由于热传导造成的。然而,没有证据表明导致这种损害的机制。程等人。显示 HIFU 病变的组织学图像(1.68 MHz,空间峰值焦点强度 535–838 W/cm 2在兔子肌肉中产生温度< 100 °C 的热凝固,利用组织学与 MR 成像进行关联,在其中描绘出病变内的不同区域。他们描述了一个保留细胞形态的中心区域,周围有一个区域,他们称该区域具有“由于广泛的结构损伤而留下大量中空空间和破碎的肌肉纤维而形成的空泡特征”。就在该区域之外,他们描述了一个水肿、富含渗出物的组织区域。然而,没有解释 HIFU 与组织相互作用的相关机制是什么。引文24、引文25 ]。 Rabkin 及其同事使用被动空化检测来显示 HIFU 暴露期间超声图像中看到的超回声(1.1 MHz HIFU 换能器以 3.3 MHz 驱动,暴露时间为 10 秒,脉冲重复频率为 6.26 Hz,占空比为 80%,220–1710 W/cm 2的原位强度)仅在检测到惯性空化活动时发生[引文26 ]。相应的组织学显示,直径为 1-10 µm 的空洞遍布整个病变部位。然而,他们还表明,当检测到超声超回声时,焦点峰值附近的热电偶监测到的温度超过100°C。因此,可能发生了液体沸腾,但它们的组织学没有显示出沸腾的特征。为了解释这一点,作者认为,由于温度传感器尖端发生空化而产生的伪影,他们的温度测量结果可能被高估了。他们也不太可能避免粘性加热制品[引文27 ]。

在本研究中,我们旨在从组织学角度描述 HIFU 引起的肝损伤,并独立验证声空化活动,以确定产生组织学效应的机制。为此,对不同的暴露方案进行了组织学鉴定和表征,一种主要导致热效应,另一种导致热损伤并伴有声空化和组织水沸腾活动。

2. 方法

2.1. 体内方法


所有实验均根据英国内政部批准的项目许可证在个人许可证下进行。使用 Hypnorm (VetaPharma Ltd)、Hypnovel (Hoffman-La Roche) 和水按 1:1:3 比例混合的腹膜内混合物麻醉 Sprague Dawley (SD) 大鼠(320–400 g),剂量为4毫克/公斤。剃须和剖腹手术后,当受试者准备接受 HIFU 照射时,使用浸入式加热器将水箱中的水加热至 37°C。记录盐水和水箱中水的温度和溶解氧含量(26 次实验分别为 37 ± 1 °C 和 5 ± 0.5 mg/L)。为了尽量减少其背面的超声波反射,将每只动物最大的(中央)肝叶外化(5 ± 1 毫米厚(平均值 ± 标准偏差),最大 8 毫米厚),并被轻轻地操纵到一个特制的、透声的平台上,该平台比波瓣更宽,由 19 μm 厚的 Melinex 膜粘合到 Perspex 环绕件上制成(图1A、B)。平台的角度可以调整。该框架还在大鼠腹部正前方放置了吸收性背衬材料,以保护其免受 HIFU 损伤。该平台使用尼龙搭扣带固定到位,并形成一定角度,以便后肝脏表面与入射的 HIFU 光束大致正交。然后使用尼龙搭扣带将动物安装在有机玻璃支架上。使用丝线(直径 0.6 毫米)压住肝脏的远端,并将肝脏的上部松散地绑在平台(直径 1 毫米)上。这可以防止肝脏浸入耦合介质时漂浮,并最大限度地减少其因呼吸而运动。特别注意确保缝合线足够松,不会干扰肝脏血液循环或损坏组织。受试者部分浸入装有 1 L 无菌脱气盐水的酒精灭菌的敞口、声学透明的聚乙烯袋中。然后将其引入更大的脱气水箱中,为 HIFU 换能器提供声耦合。将受试者的支架和受试者部分浸没在其中的盐水袋固定在微米龙门架上,使大鼠能够以亚毫米精度移动,并小心确保受试者的头部始终保持在水面之上实验过程中(将受试者的支架和受试者部分浸没在其中的盐水袋固定在微米龙门架上,使大鼠能够以亚毫米精度移动,并小心确保受试者的头部始终保持在水面之上实验过程中(将受试者的支架和受试者部分浸没在其中的盐水袋固定在微米龙门架上,使大鼠能够以亚毫米精度移动,并小心确保受试者的头部始终保持在水面之上实验过程中(图1C)。

图 1.用于 HIFU 照射的方法。在(A)中,放置在尽可能平坦的平台上的外置肝脏的图片。将吸收器放置在受试者的腹壁上以避免损坏。使用缝线将肝脏轻轻固定到位。 (B) 用于体内的肝脏平台实验。 19微米厚的Melinex膜被拉伸并粘在有机玻璃框架上,为肝脏提供透声支撑。蝶形螺母可以改变平台的角度。在 (C) 中,实验装置的简化平面图指示了受试者和盐水袋相对于 HIFU 换能器的位置。此外,还展示了声音、视频和视觉监控设备。 (D) HIFU 波束几何形状使用本研究中看到的最小肝脏尺寸。该项目可用的 1.7 MHz HIFU 换能器的轴向 FWHM 为 1.2 cm,径向 FWHM 为 1.5 mm。 PCD 传感器焦点的轴向 FWHM 为 1.2 cm,径向 FWHM 为 1 mm。 HIFU 焦平面距离大鼠肝脏后表面 2 mm。焦平面的中心用星号显示,还显示了吸收器的位置及其对梁的影响。

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2.2.高强度聚焦超声方法


使用 1.7 MHz 聚焦单晶 MR 兼容换能器(焦距 6.4 cm,f 数 1.2,A2-2 西门子,德国)。声焦点的轴向半高全长 (FLHM) 为 1.2 厘米,径向半高全宽 (FWHM) 为 1.5 毫米(使用膜水听器(Precision Acoustics,英国)在自由场条件下测量)。使用反射目标辐射力天平进行声功率校准。引用的所有强度均为自由场空间峰值。

连接到换能器的有机玻璃指针可以进行视觉引导,以帮助定位每个肝脏中的 HIFU 焦点。肝脏的顶部自然是圆形的,肝脏的底部是平的。因此,我们选择暴露肝脏中部,肝脏前部位置的变化最大~1毫米。焦点峰位于肝脏后表面以及平台/吸收器前面 2 ± 0.5 mm(轴向精度)的水平面上。简而言之,移动受试者以使指针与肝脏平台的一侧边缘接触到叶的一侧,并记录轴向和横向位置。然后使指针以相同高度接触平台的另一侧,并记录该位置。如果轴向距离不同,受试者的支架水平旋转,直到平台水平,与换能器正面平行。一旦实现这一点,就将指针移开,并且受试者轴向移动远离换能器 2 毫米,从而将焦点峰值放置在距平台后表面 2 毫米的位置。使用缝合线将肝脏保持向下,以确保肝脏的后表面平放在平台上。

使用时间分辨率为 0.01 s 的定时器来触发波形发生器(Agilent,美国,33120 A),其输出传递到 60 dB A500 放大器(E&I Ltd,美国)。功率放大器和换能器之间连接50Ω阻抗匹配电路。电压和电流“拾取”盒连接在功率放大器和匹配电路之间,允许测量 V/1000,作为由于气泡形成而导致的声阻抗变化的独立指标。

2.3.暴露监测


先前描述的 PCD 空化检测系统 [引文[ 8 ]用于同时被动监测超声波和可听声发射,并通过测量HIFU驱动电压主动监测阻抗变化。此外,还对肝脏前表面进行了视频记录。使用的无源超声波压电陶瓷传感器(139303HR Aerotech Laboratories,Lewistown,PA)直径为 25 毫米,焦点为 70 毫米,中心频率为 7.5 MHz,带宽为 0.3–10 MHz,FLHM 1.2 cm 和 FWHM 1 mm(图1D)。检测到的信号首先通过 50 dB 陷波滤波器(F5181,Allen Avionics,Inc,Mineola,NY)以去除 HIFU 驱动(1.7 MHz),然后通过 7-8 MHz 带通滤波器(F5204 Allen Avionics,Inc, Mineola, NY)在 1.7 MHz 时提供了 50 dB 的额外衰减。三个宽带 (0.1–30 MHz) 低噪声 20 dB 前置放大器(7866,Advanced Receiver Research,伯灵顿,康涅狄格州,美国,噪声系数为 2.5 dB)放置在 (i) 陷波滤波器之前,(ii) 之前和 ( iii) 带通滤波器之后。使用安装在双总线台式计算机 (P4SCT) 中的 4 通道、100 MS/s、8 位数据采集卡 MI.2031(Spectrum Systementwicklung MicroElectronic GMBH,Grosshansdorf,德国)对 PCD 和电压传感器进行数字化和记录,SuperMicro Computer Inc,美国加利福尼亚州圣何塞)数据采集系统(DAQ)。这为 PC RAM (4 GB) 提供了快速的数据流。每次 HIFU 照射以及随后的短暂静止期(约 10% 的照射时间)都会采集数据,以便确定基线噪声水平。宽带(7-8 MHz)被定义为当信号超过平均关闭时间噪声水平加上两个标准偏差时被检测到。 FFT 电压幅度(VRMS)是使用每秒 2800 段的原始电压数据获得的。从每个时间点减去使用静止时间数据计算的基线噪声。将所得的扣除噪声的频率积分宽带数据绘制为曝光时间的函数。惯性空化检测由高峰度、随时间变化的宽带信号以及灵敏度稍低的驱动电压表示,如 McLaughlan 及其同事所描述的那样。引文8 ]。最后,计算每个时间图的总累积频率积分宽带(7-8 MHz)发射。每秒的累积宽带用于比较不同持续时间的暴露。

同时,使用防水麦克风(Partridge Electronics,Essex,UK,CHK00627,频率响应 0.03-17 kHz,80 dB 信号/噪声)在笔记本电脑上监测声音发射(1-20 kHz)。音频编码软件(Smart PC Recorder,v2.5)允许以 44.8 kHz 的速率和 16 位分辨率进行采样。麦克风放置在无源超声波检测器附近,如图所示图1。使用 MatLab 编写的频谱分析代码对数据进行分析。沸腾引起的排放具有一种特有的“爆裂”声,频谱分析表明该声音在 2-6 kHz 范围内最为强烈 [引文8 ],而惯性空化则通过在 12-20 kHz 范围内最强烈的发射来表明,并且听起来更像是“嘶嘶声”。声音信号监测与驱动电压监测一样,其灵敏度低于超声波监测。空化监测系统的最后一个元件是摄像机,它能够以 30 fps 的帧速率(分辨率 648 × 648)记录肝脏表面和紧邻其前面的耦合介质的外观。研究了视频帧中可见气泡的出现和肝脏的运动。

将换能器、PCD 传感器、麦克风和摄像机放置在 37°C 脱气水箱(∼14 L)中(图1C)。 PCD 传感器以约 45° 的角度询问 HIFU 焦峰,并进行对准以最大化从目标反射的 HIFU 信号。最后,将连接到换能器的机械指针的尖端在视觉上与滚珠轴承对齐,并且放置摄像机以允许对指针的尖端进行成像,并且将麦克风安装在指向肝脏的支架中。

2.4. HIFU 暴露水平


选择旨在导致消融的曝光,理想情况是在肝脏前表面和后表面上都可见病变。通过监测低频(2-6 kHz)声音发射来研究潜在的物理损坏机制[引文8 ] 识别“沸腾”,宽带声发射指示惯性空化。在末期麻醉下(附录 A )进行的初步实验( 每个暴露水平n = 10 个病灶)确定了适合评估发生以下效应的病灶组织学外观的暴露水平:

T + AC + B – 热 (T)、声空化活动 (AC) 和组织水沸腾 (B) 暴露:2750 ± 200 W/cm 2持续 4 秒。

T (+AC) – 热 (T) 和可检测声空化 ((+AC)) 暴露:1750 ± 120 W/cm 2持续 6 s。

损伤是一个接一个地产生的,通常间隔一分钟。第一个和最后一个损伤产生之间的时间不超过 30 分钟。为了考虑受试者之间的差异,在每只动物中放置了多种损伤类型的组合。 T + AC + B 用于定义适当的病灶位置,最大限度地减少病灶之间的相互作用。最高强度病变(~3毫米)和肝叶(~20-25毫米)的平均宽度意味着4个最小间隔为4毫米的病变可以放置在一个肝叶中而不会相互作用。没有任何检测到的宽带发射的纯“热”方案需要超过 60 秒的暴露时间(使用~800 W/cm 2的强度水平))大大超过了空化检测的最大可用持续时间(12秒),因此没有进行研究。治疗结束时,受试者要么立即被宰杀(评估的每个时间点至少有 3 个病灶),并切除肝脏进行组织学检查,要么用可吸收缝线修复伤口并用金属自动夹闭合。允许康复的受试者被维持在癌症研究所的专门动物设施中,直到达到免疫组织化学分析所需的时间点。

2.5.组织学


从每个受试者身上切下两个肝叶,一个包含 HIFU 病变,另一个未经过外化操作或暴露于 HIFU,提供对照组织。将叶用福尔马林固定并石蜡包埋,并从与其后表面大约平行、深2毫米的平面上截取切片。对于每个染色/标签,至少准备 3 个切片。切片用 H&E 染色 [引文28 ](HIFU 治疗后立即和 7 天进行的评估)和/或天狼星红米勒染色(HIFU 治疗后 7 天进行的评估),如附录 B中所述。对于免疫组织化学分析,切片在二甲苯中脱蜡两次,每次 5 分钟,并在 100%、90% 和 70% 乙醇中重新水化。然后用流水冲洗 2 分钟。对于抗原修复,载玻片在 10 mM 柠檬酸盐缓冲液(pH = 6)中微波加热 15 分钟,用蒸馏水洗涤,与 3% 过氧化物酶块一起孵育 30 分钟,用蒸馏水洗涤 3 次,每次 5 分钟,然后用 Tris 缓冲盐水 (TBS) + 0.05% Tween 重复。将载玻片与无血清蛋白块 (Dako) 一起孵育 2 小时,然后与适当的一抗(以百分之一的稀释度在缓冲液中)在 4 °C 下孵育过夜。这些抗体包括裂解的 caspase-3(在 HIFU 后 1.5、6(补充材料中描述)、12 和 24 小时进行评估)、Hsp70(0(补充材料中)、1.5、3(补充材料中)进行评估,6(补充材料)、HIFU 后 12、24 和 96 小时)、CD68(HIFU 后 1.5、12、24 和 96 小时进行评估)和 ki-67(HIFU 暴露后 1.5、12 和 24 小时进行评估)抗体。第二天,用 TBS/0.05 Tween 洗涤载玻片 3 次,每次 5 分钟,并与过氧化物酶标记的抗兔聚合物一起孵育 40 分钟(DAKO envision 试剂盒)。最后用TBS/0.05% Tween清洗3次,每次5 min,脱水并封固,如图所示用 TBS/0.05% Tween 清洗 3 次,每次 5 分钟,然后脱水并封片,如图所示用 TBS/0.05% Tween 清洗 3 次,每次 5 分钟,然后脱水并封片,如图所示附录A。使用具有 4x、10x 和 20x 物镜的 Olympus BX51 显微镜(Olympus Optical Co. Ltd,伦敦,英国)进行显微镜检查。使用直接连接到运行 Olympus Cell P 软件的计算机的数码相机(ColorView 12;Soft Imaging System GmbH,Munster,德国)获取图像。电动扫描台(Prior Scientific Instruments Ltd,剑桥,英国)在由 ANALYSIS 自动软件(软成像系统)驱动时能够采集复合平铺图像。

2.6。统计分析


定量空化监测结果显示为平均值±标准差。每只动物的平均宽带活动的偏差。使用 Mann-Whitney U(或 Wilcoxon)检验计算统计显着性(p 值),如果p  < 0.05,则假定显着。

3. 结果

3.1.气蚀监测


为了研究水/肝界面处发生的空化现象,在脱气水中使用 Melinex 膜和固定在 Melinex 膜上的 5 毫米厚的圆顶橡胶吸收器进行实验,HIFU 焦点位于其后表面前面 2 毫米处。 2750 ± 200 W/cm 2 4 秒暴露的样本图均显示检测到的宽带活动连续性升高(图2A、B)。当 Melinex 膜放置在焦点前 2 mm 处时,绘图的特征是离散事件和持续 1.5 秒的连续水平升高 (500–1000 mVRMS)。相应的音频数据显示发射仅在 12-20 kHz 范围内。宽带活动水平的升高与音频数据中的类似发现并不相符。出现了一个与宽带高程周期一致的非常小的不透明中心点(图2A)。吸收器就位后,升高的信号为 ∼75–200 mVRMS。吸收体表面不在焦峰处;因此,压力的幅度较低。在这些曝光过程中拍摄的照片显示橡胶表面出现不透明斑点(图2B)。声音图显示 12 至 20 kHz 之间的低幅度连续发射块。 12 kHz 以下没有明显的发射。

图 2. HIFU 病变的空化监测。在 (A) 检测到的宽带数据示例中,相应的声音发射和视频中的图像是在 2750 ± 200 W/cm2 下使用 2 mm 预聚焦的 Melinex 膜在水中曝光 4 秒时拍摄的。在 (B) 中,在 2750 ± 200 W/cm2 的水中暴露 4 秒期间检测到的宽带数据和相应的可听发射,其中大鼠肝形橡胶吸收器的 HIFU 焦点距离其后表面 2 毫米,如图所示体内实验。在 (A) 和 (B) 中,发射持续升高(在 50 至 200 mVRMS 范围内,具有相对较高的本底噪声)。同样在 (B) 视频中的 3 个图像帧。黄色虚线圆圈内包含的不透明区域在曝光开始后立即出现,并持续到曝光结束。在 (CE) 中,显示了暴露于 T+AC+B 暴露的肝脏的宽带发射、驱动电压波动和傅立叶变换图的代表性图。 T+AC+B 暴露观察到的驱动波动与宽带活动密切相关,并加强了两次暴露期间惯性空化的检测 (D)。声音发射(箭头所示)证实了 T+AC+B 病变 (E) 中的沸腾(强烈的 2-6 kHz 发射)。在 (F–H) 宽带发射的代表性图中,分别显示了暴露于 T(+AC) 暴露的肝脏的驱动电压波动和傅立叶变换。 T(+AC) 图中 12 至 20 kHz 之间的可听发射对应于惯性空化 (F)。在曝光开始和结束时看到的声音尖峰 (12-20 kHz) 是 HIFU 驱动器打开/关闭(G 和 H)产生的伪影。 T(+AC) 损伤 (G) 中的低频 (∼2 Hz) 周期性驱动电压波动与呼吸运动相关。T(+AC) 损伤 (G) 中的低频 (∼2 Hz) 周期性驱动电压波动与呼吸运动相关。T(+AC) 损伤 (G) 中的低频 (∼2 Hz) 周期性驱动电压波动与呼吸运动相关。

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体内实验期间的空化监测证实,所有暴露都表现出定义其暴露方案的特征(代表性示例显示在图2)。因此,所有 T + AC + B(但没有 T (+AC))暴露都会导致罕见的声音发射或“爆裂声”,在 2-6 kHz 范围内最强烈,独特地表明沸腾活动(箭头所示)图2E)。在所有暴露情况下,在所有情况下,都检测到高于关闭时间基线的高度波动的宽带(7-8 MHz)发射,发射的幅度和数量随着强度的增加而减少。在所有类型的暴露中,有些暴露表现出不寻常的、通常持续升高的宽带基电平,高达 200 mV RMS(例如,图2C0 到 ∼1.5 秒之间,并且图2F整个曝光时间)。所有 T + AC + B 暴露均显示驱动电压波动和声音发射,在 12-20 kHz 范围内最强烈,表明惯性空化活动(图2D、G)。 T(+AC) 暴露中检测到的宽带发射和驱动电压波动的幅度和出现频率低于 T + AC + B 暴露方案中观察到的宽带发射和驱动电压波动。此外,只有 T + AC + B 病变数据通常显示出不同信号(宽带、听觉和驱动波动)检测开始之间良好的时间相关性,这提高了 T(+AC) 暴露中检测到的空化活动代表的可能性排放在肝脏/水界面中,而不是在组织学焦点中。

2 个方案中所有暴露的累积频率积分 (7–8 MHz) 宽带/秒数据显示在箱线图中图3,其中中位数由中心线表示,框的顶线代表数据的第 75百分位数,底线代表数据的第 25 个百分位数。每个“晶须”的末端代表四分位距的 1.5 倍。任何超过此值的数据值都被定义为“异常值”,并以“+”号显示。图3还显示了 T + AC + B 和 T(+AC) 暴露之间每秒总累积频率积分宽带 (7–8 MHz) 发射的统计显着差异。

图 3. HIFU 暴露肝组织的声空化定量。箱线图显示每个病变组内的总宽带/秒。结果以平均值±标准偏差表示。用星号表示的统计显着性定义为p < 0.05。

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3.2.大体病变病理


所有 T + AC + B 和 T(+AC) 暴露均在治疗后立即导致肉眼可见的组织损伤(苍白)和界限分明的 HIFU 损伤(图4A)。在未暴露的肝叶区域和产生病变的肝叶未暴露区域之间没有发现形态差异(图4B、C)。 T + AC + B 病变通常大于 T(+AC) 病变(图A3.1)。 T + AC + B 和 T(+AC) 诱导的病变的组织学外观相似(图4D、E),只不过前者的中心有大孔。从 T + AC + B 和 T(+AC) 病灶的外缘到中心,首先看到异常红色的未曝光区域(区域 1),然后在两个病灶中都看到较白色的区域(区域 2)类型(图4D、E)。接下来的 2 个朝向治疗病变中心的条带有所不同,具体取决于所使用的暴露方案。在 T + AC + B 和 T(+AC) 病变中,可以看到比周围组织更暗的紫色带,并且包含看起来完整的细胞(区域 3),但根据所使用的暴露方案,其位置有所不同。在 T + AC + B 方案中,该区域包围病变中心,而对于 T(+AC)病变,该区域是病变中心本身。在该区域的某些情况下,还发现由于组织脆弱而产生的加工裂纹。区域4仅出现在T+AC+B病变中,其中心有孔。这些孔的形状和大小各不相同(直径 > 30 µm),并且可以单独定义(图4F)或被发现已合并成一个大洞(图4D)。区域 4 还包含均质组织和少量红细胞或可识别的细胞核或膜结构。可以看到一些残留的细胞核,但这些细胞核通常是碎片状的,不包含在完整的细胞内。治疗后立即在任何 T(+AC) 病灶中均未发现均质组织或孔洞(直径 > 30 μm)。因此,T + AC + B 病变包含 4 个不同的损伤区域,而 T(+AC) 病变只有 3 个。

图 4. HIFU 的形态在治疗后立即在肝脏中产生损伤。 (A) 暴露于 T(+AC) 和 T+AC+B 方案的肝叶照片。在 (B) 和 (C) 中,H&E 染色的对照肝脏分别取自病变的未外切/未暴露的叶和暴露的叶~5mm头侧。两个对照区域之间没有观察到显着的组织学差异。在(D)和(E)中,分别在暴露后立即使用T+AC+B和T(+AC)暴露创建H&E染色肝脏病变的低放大倍数(40×)视图。损伤特征形成于近似同心的区域(区域 1 至 4)。 (F) 是 T+AC+B 诱发病变区域 4 中治疗组织的高倍放大图片 (×200)。

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3.3.不同 HIFU 暴露方案引起的病变的生物学特征


从组织学角度对四种不同的生物过程进行了表征,它们是组织再生(使用增殖标记物 ki67)、热休克反应(使用诱导型 Hsp70)、细胞凋亡(使用效应器裂解的 caspase 3)和炎症(通过检测 CD68 +细胞)。

3.3.1.区域1


在治疗的病灶之外(区域 1),细胞表现出正常形态,但细胞间隙内有异常红细胞浸润的外周边缘(图5A和C2),在正常的假暴露组织中不存在(图5B和C3)治疗后立即。在后者中,红细胞仅在血管内可见,而不是在细胞外空间中可见。

图 5. HIFU 治疗后病灶边缘外侧区域 1 的生物学特征。在 (A) 中,在 T+AC+B 暴露肝脏的区域 1 中观察到一些出血(存在红细胞),而在红细胞仅位于血管中的正常未暴露肝组织中未观察到这种情况(B)。绿色箭头表示血管中存在红细胞,黑色箭头表示具有纺锤状细胞核的库普弗细胞的存在,黄色箭头表示细胞间隙中不存在红细胞。

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3.3.2.区域2


T(+AC) 和 T + AC + B 病变的下一个最外层区域(区域 2)是一条颜色较浅的带,因为细胞外空间(白色间隙)较小(≪ 30 µm 宽)(白色间隙)增加(图6A)。该区域代表 HIFU 诱发病变的组织学边界的一部分,也是对暴露最活跃的生物反应发生的地方。在 T(+AC) 暴露损伤后 6 小时,在该区域中,裂解的 caspase-3 增加(图6B和C4), 热休克蛋白70 (图6C和C5)和 CD68 +细胞(例如巨噬细胞)的浸润(图6D)。此外,在 T(+AC) 暴露后立即检测到 Ki-67 表达(图6E和C6)。最后,细胞外空间增加,出现出血,也可以看到细胞碎片(图C2和C7)。

图 6.区域 2 的生物学特征。形态学(治疗后立即)(A)、细胞凋亡(6 小时后)(B)、热休克反应(6 小时)(C)、炎症(6 小时)(D) 和在 T(+AC) 暴露病变的区域 2 中研究了增殖(治疗后立即)(E)。观察到细胞之间的细胞外间隙 (A),以及裂解的 caspase 3 (B)、Hsp70 (C)、巨噬细胞(CD68 +细胞)(D) 和 Ki67 (E)。

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图 7.区域 3 的生物学特征。细胞增殖(处理后 0 小时)(A)、热休克反应(暴露后 3 小时)(B)、细胞凋亡(6 小时)(C) 和炎症(处理后 6 小时) ) (D) 在 HIFU 暴露的病变中进行了研究。在 T(+AC) 暴露的病灶中心未观察到 Ki-67 (A)、Hsp70 (B) 或裂解的 caspase 3 (C) 的表达。然而,发现了表明巨噬细胞存在的CD68 +细胞 (D)。

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使用 H&E 染色在 T + AC + B 和 T(+AC) 病变中观察到的区域 3 的形态使得很难确定组织是否存活。因此,对活细胞中预期出现的蛋白质表达进行了研究。在暴露于增殖标记物 Ki-67 后,T(+AC) 诱导损伤的染色区域 3 立即仅显示背景染色水平(图7AC6)。热应激反应标记物 Hsp70 不表达(图7BC5)或程序性细胞死亡效应子的 caspase 3 裂解可以被检测到(图7CC4)分别在治疗后3小时和6小时。最后,可以看到 CD68 +细胞,这是巨噬细胞的标记(图7D)治疗后6小时。形态学 H&E 结果总结于图C8以 T + AC + B 诱发病变为例。

3.4. HIFU 暴露后生物反应的演变


对区域 2进行了进一步研究,以确定生物过程随时间的演变。

3.4.1.细胞凋亡T + AC + B 暴露后 1.5 小时,对病灶边缘的细胞凋亡进行免疫组织化学染色,结果显示一条凋亡细胞带,对 cleaved caspase 3 染色呈阳性(图8A)。经历细胞凋亡的细胞带的宽度随每个样本的不同而变化,但在研究的任何时间点的任何病变中,宽度不超过 10 个细胞(基于细胞核计数)(最少为 3 个细胞)。 12小时后,凋亡细胞数量减少(图8B),到 24 小时时,只有少数细胞显示出阳性染色(图8C)。在 T(+AC) 暴露的肝脏中也检测到了裂解的 caspase 3(图C4)。图 8. HIFU 诱导损伤中细胞凋亡的时间演变。 Caspase 3 早在暴露后 1.5 小时 (A) 就在 HIFU (T+AC-B) 病变边缘被切割,并在暴露后减少到 12 小时 (B) 和 24 小时 (C)。

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3.4.2.热休克反应


相比之下,肝脏暴露于 T + AC + B 或 T(+AC) 中均不会导致暴露后 1.5 小时 Hsp70 上调(图9A),但在 HIFU 暴露后 6 小时和 12 小时后,在病灶边缘的组织带中可见(图9B),并且在损伤后 24 小时内仍然存在(图9C)。 96 小时后,它逐渐减弱,没有明显的存在(图9D)。

图 9. HIFU 引起的损伤中热休克反应的时间演变。与处理后立即表达 (A) 相比,暴露后 12 小时 (B) 和 24 小时 (B) Hsp70 有所增加。这种表达是短暂的,并且在 HIFU 暴露 96 小时后在病灶边缘未检测到 (D)。此外,还观察到血管周围有明显浓度的染色(黄色箭头)。

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3.4.3.炎性


在对照正常组织中观察到CD68 +细胞,表明存在巨噬细胞(图A3.9)但在暴露于 T + AC + B 或 T(+AC) 暴露后 1.5 小时,这些细胞在病变边缘没有明显的积累(图10A)。第一次在病灶边缘观察到暴露引起的巨噬细胞聚集的时间点是暴露后 12 小时(图10B)。直到最后一个研究时间点(4 天),边缘巨噬细胞的数量随着时间的推移而增加(图10C、D)。

图 10. HIFU 引起的病变中炎症的时间演变。治疗后立即观察到 T(+AC) 诱导的病变边缘中 CD68 +细胞(巨噬细胞)的增加,巨噬细胞数量最低 (A)。暴露后 12 小时 (B) 和 24 小时 (C) 可见CD68 +细胞信号传导增强。即使在暴露后 96 小时,组织的巨噬细胞浸润仍然存在 (D)。

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3.4.4.组织再生


细胞增殖标记物 Ki67 早在暴露后 1.5 小时就在 HIFU 诱导病变 (T(+AC)) 的边缘表达(图11A-区域 2) 但随后随时间减弱,12 小时后显示信号减弱 (图11B)且 24 小时后无信号(图11C)。在区域 3 中,超声暴露后 96 小时观察到缺乏细胞核(以及 Ki67 染色)(T + AC + B 和 T(+AC) 病变)(图C10)表明治疗引起的组织损伤不可逆转。 H&E 染色与天狼星红染色相结合,以确定在 T(+AC) 暴露后 7 天组织中是否存在未受损的胶原蛋白。分析表明,在偏振光下,病变内没有明亮的胶原蛋白染色,表明仅存在纤维疤痕组织。此外,纤维疤痕内缺乏阳性染色的血管(图12)。相比之下,在治疗病变的周围可见含有血管壁的明亮胶原蛋白,表明胶原蛋白未受损。

图 11. HIFU 引起的损伤中组织再生的时间演变。 Ki67 早在暴露后 1.5 小时 (A) 就在 HIFU (T+AC+B) 病变边缘表达,并在暴露后减少至 12 小时 (B) 和 96 小时 (C)。

图 12. HIFU 照射后 7 天疤痕组织的形成。 (A) H&E 以及 (B) 和 (C) 暴露 7 天后 T(+AC) 病变的天狼星图像。在H&E或天狼星红染色下,病灶边缘可见主要由胶原组成的疤痕组织,但病灶中心未见完整血管。在偏振光 (C) 下,病变中心内没有明亮信号,表明不存在胶原蛋白/血管。

4. 讨论


在这项研究中,我们从组织学角度对个体 HIFU 引起的肝脏损伤进行了表征,同时对暴露期间发生的空化活动和水沸腾进行了独立验证。研究了存在 2 种实验方案中的 1 种的 HIFU 损伤:一种是热 (T)、声空化 (AC) 和“沸腾”(B) 方案 (T + AC + B),另一种主要是热且避免沸腾(T(+AC))。选择 HIFU 参数以使用不太长的暴露持续时间产生可见损伤,以防止空化监测。鉴于缺乏覆盖组织衰减,所引用的强度将接近原位峰值,该峰值接近我们在肿瘤学临床试验中使用的强度,其中应用了 1 至 3 秒的暴露[引文29 ]。尽管所有病变中的组织损伤本质上主要是热损伤,但可以区分由于间质水沸腾而表现出损伤的病变。引文8 ],以及高水平的声空化(T + AC + B)。

4.1.声空化


使用一套同步被动空化监测装置来确认空化活动。 2-6 kHz 范围内最强烈的声音发射,对应于可听见的“爆裂声”,是“沸腾”活动的唯一标识符,而 12-20 kHz 范围内的发射,会引起可听见的嘶嘶声,与 MHz 宽带相关,表明惯性空化源。受试者的肝叶通常厚 4-6 毫米,而换能器聚焦区域 (6 dB) 的长度为 12 毫米。因此,将焦峰放置在肝脏的大致中心意味着焦区的前边缘(最接近换能器)延伸到肝脏前部的脱气盐水袋中。

此外,受试者的圆顶前肝表面使用缝合线尽可能平坦(图1A)但这意味着在整个宽度上,从中心开始,厚度一直减小到边缘,因此有可能在耦合介质中发生声空化活动。如图所示图1D,相交(HIFU 聚焦/PCD 传感器)敏感体积的一个小区域,不会位于 4 毫米厚的肝脏内。这意味着 PCD 传感器将检测到该区域内耦合介质中发生的声空化。还需要注意的是,焦点的 FWHM 大小代表 6 dB 轮廓,因此 PCD 的灵敏度可能不会完全限制在该区域内。脱气盐水中的空化检测证实了我们之前发表的发现[引文[8 ] 水中惯性空化的特征是离散宽带 (7–8 MHz) 信号,幅度高达 ∼1800 mV RMS,“接通”时间基线信号非常接近于零。使用 Mylinex 膜和圆顶橡胶吸收器在脱气水中进行测量,其前表面距焦前 2-3 毫米,以模拟外置肝叶前部的位置,结果导致宽带幅度持续升高 < 1000 mV RMS和 ~50–200 mV RMS分别。同时测量的音频信号 (12-20 kHz) 与升高的宽带数据在时间上相关,相应的视频数据显示出不透明(发白)~2 毫米直径的云,看起来像吸收体表面上的许多微小气泡。这表明低幅度升高的宽带信号的可能原因是水/大鼠肝脏界面处的气泡活动,而不是组织学分析位置处的气泡活动。使用视频监控来检查肝脏表面/脱气盐水界面处可见的气泡形成,并识别呼吸期间外置肝脏的运动。 T + AC + B 曝光期间获取的视频数据如图所示图2E显示肝脏表面直到〜1.5秒才凹陷。因此,观察到长达 1.5 秒的持续升高的宽带(∼150 mV RMS)很可能是由于组织表面的气泡活动所致。约 1.5 秒时,肝脏缩进,在声音发射和视频配乐中听到“砰”的一声。这在时间上与宽带升高和不稳定的出现相关。肝脏仍然凹陷,并且听到了更多的“爆裂声”,每一次都对应于结果中描述的沸腾排放物。这表明组织沸腾后宽带活动立即增加,如之前所见[引文8 ]。基于这一证据,T + AC + B 诱导的体内肝脏在 1.5-4 秒内的发射被认为是来自组织内部。对于所有 T + AC + B 病变均观察到宽带活动和驱动波动,宽带和驱动波动的开始之间具有良好的时间相关性(但不适用于单个事件),如示例中所示图2C-E。T(+AC) 暴露的特征仅在于宽带发射,通常表现出相对稳定的升高基准水平 (100–200 mVrms) 和瞬态低幅度宽带发射峰值。如上所述,对这些发射的最可能的解释是它们代表肝叶表面与水界面处的声空化,并且不会造成组织学病变损伤。这表明 T(+AC) 暴露后病变中产生的组织学损伤主要是热性质的。 6 s T(+AC) 治疗在 HIFU 光束尺寸内产生热损伤,而损伤的其余部分是由热量的横向扩散产生的(图C1)。这意味着至少部分损伤是通过从中心扩散而在非常低振幅的场中形成的,因此没有看到惯性空化和相应的组织损伤效应。如果组织上存在任何空化效应,则应在病变的中央部分观察到它们,但如 T(+AC) 病变的形态所示,这些空化效应并不存在。这些损伤是均匀的,细胞看起来完好无损,没有机械损伤,表明它们是热固定的。这些事实证实该组织中不存在破坏性的空化效应。最后,T(+AC) 暴露的驱动电压数据显示出独特的低振幅、低频(∼2 Hz)波动(图2)视频证据表明这是由于呼吸运动引起的,尽管通过使用丝线缝合线轻轻地将肝脏固定在平台上来尽量减少这种运动。由于这些波动与大多数声空化引起的变化明显不同,因此它们的发生并不会妨碍空化检测。

4.2. HIFU 引起的区域 3 热固定效应


T(+AC) 病变中心(区域 3)在形态上与对照组织相似,但有明显出血。该区域的肝细胞不太可能未受损。如果这些看起来正常的肝细胞是可行的,那么可以合理地预期,其中至少有一些会表现出活跃的生物过程,无论是细胞凋亡(裂解的 caspase 3)、细胞增殖(Ki67)还是对暴露的热反应(热休克蛋白70)。然而,在 6 小时时,T + AC 损伤区域 3 内的任何这些细胞过程都没有阳性染色。此外,热固定组织更嗜酸性,这在区域 3 中观察到。所有这些证据表明区域 3 中存在无活力的热固定组织。此外,随后 7 天内组织形态的分解表明该组织无法存活。之前的论文已经报道过这种“热固定”效应。例如,吴等人。 Leslie 等人观察到 11/23 乳腺癌的 HIFU 治疗区域保留了正常形态。提出了一个临床病例,其中在 HIFU 治疗后在肝脏肿瘤中观察到热固定[引文30 ,引文31 ]。死后获得组织,组织学显示 HIFU 处理区域保留正常形态结构,而周围组织显示死后自溶迹象。组织学术语凝固性坏死最初用于描述缺血性梗塞损伤,将形态描述为由于酶失活而保留正常细胞结构。因此,凝固性坏死区域可能会出现热固定外观。

4.3.在 T ± AC ± B 暴露组织的区域 4 中看到空洞


对于 HIFU,机械(气泡)活动造成的额外损伤意味着典型的凝固性坏死外观可能不是所见的全部,并且可能包括各种尺寸的空腔,如此处所示。所有 T + AC + B 病变均表现出与 T(+AC) 病变不同的独特形态特征,即在存在均质组织(区域 4)的情况下,靠近病变中心存在大(≫ 30 μm)孔。这些大的、不规则的孔可能是由于沸腾和显着升高的惯性声空化活动造成的(图3) 与 T(+AC) 病变相比。在看到残余细胞核的地方,它们是碎片化的并且不包含在完整的细胞内。发生在这些病变中心的声空化活动可能不仅会对单个细胞造成损害,还会对出现出血的细胞间连接造成损害。

4.4.病变边缘的定义(区域 2)


在计划临床治疗时,了解病变的大小很重要,因此一个重要方面是确定病变边缘的构成,即死细胞的外部范围。细胞内信号通路的激活表明存在相反的生物表型,例如远离病变中心的环中热休克反应(Hsp70 表达)、促生存(检测 Ki67)和促凋亡(裂解 caspase 3)通路的激活表明相似的细胞对 HIFU 暴露的反应不同,具体取决于它们在焦点内的位置。由于该环内的细胞(区域 2)可能最终在 HIFU 暴露中幸存下来,因此表明该环位于 HIFU 病变的外部,并建议使用区域 3(如此处所示)来定义 HIFU 病变边缘。不幸的是,凋亡带(〜100微米宽)不能包含在病变体积内,因为它的宽度不是恒定的。该区域还包含一些小的(宽度<30 µm)细胞外空间。先前的研究尚未提出描述热固定损坏区域周围的声空化损坏的结果。在区域 2 中,由于远离病变中心的惯性空化,假定损伤是由向病变边缘向外辐射的热量造成的(由于惯性空化远离病变中心,因此假定损伤是通过向病变边缘向外辐射热而发生的(假定损伤是由于远离病变中心的惯性空化作用而向病变边缘向外辐射热而发生的(图C1)将是最小的。我们也不排除稳定的气泡振荡增加了区域 1 和区域 2 组织的渗透性,导致血细胞外渗增加的可能性,如我们的组织学发现所示。另一种可能是红细胞浸润异常是由于HIFU病灶内较小的微血管凝固,导致血液无法通过病灶,最终渗漏到病灶周围。

4.5.组织进化研究


对于组织进化研究,考虑的主要生理方面是细胞增殖、细胞死亡、炎症和组织应激。肝脏是一个高度再生的器官,在正常肝脏中的任何时候,总有一小部分细胞正在增殖。这项研究表明,病灶边缘(区域 2)含有增殖(ki67 阳性)和凋亡阳性细胞的混合物,其数量随着时间的推移而减少,并且在暴露后 4 天没有看到凋亡信号。这表明任何程序性细胞死亡均在暴露后 4 天(如果不是更早)完成。观察到的细胞凋亡带在病变周围的宽度不相等。这种变化意味着这种延迟细胞死亡的程度无法可靠地整合到需要汇合细胞杀死的病变分离的治疗方案中。这些结果表明,如果由于温度升高或空化活动而导致细胞死亡没有立即发生,则细胞会尝试例如通过诱导热休克反应来克服HIFU的影响。因此,在病变边缘看到热休克蛋白 (Hsp70) 水平升高也就不足为奇了。 HSP70 是由热应力特异性诱导的,其表达主要出现在病灶边缘周围,这一事实证实了 HIFU 消融的高度局部化和热性质。暴露后 4 天缺乏 Hsp70 表达表明任何损伤要么被修复,要么组织恢复,或者细胞被吸引启动其程序性细胞死亡机制(细胞凋亡)。这些发现也与癌症模型中的证据一致,该模型显示热损伤后数小时内会短暂诱导 Hsp70 [引文32 ]。总的来说,这些结果表明细胞对 HIFU 的反应随着时间的推移而减弱,正如我们的形态学结果所示,到第 7 天,病变中心已经形成了一个独特的无细胞区域。

HIFU 照射后,病灶内部和周围出现炎症细胞(巨噬细胞)阳性染色。巨噬细胞从周围的活组织沿着肝窦迁移。巨噬细胞的主要作用是吞噬死亡的组织碎片。它们在暴露后几天内出现在病灶内,表明诱导了持续的炎症免疫反应,这种反应可能在清除凋亡小体和坏死细胞碎片方面发挥了作用,从而形成了 HIFU 暴露后 7 天所见的无细胞病灶。

4.6.未暴露组织出血有限


在病灶之外,T(+AC) 和 T + AC + B 病灶均具有包含未受损肝细胞的狭窄组织带,但也表现出出血(区域 1)。肝脏具有特殊的脉管系统,这意味着除了提供异质性的较大血管外,组织的其余部分包含均质的正弦空间(重复的小叶结构)并充当血管空间。因此,所看到的清晰且大多均匀的出血带可能是由于正弦空间受损导致出血(外渗),而这在其他组织类型中不会发生。

4.7.与临床治疗的相关性


由于通常的临床目标是肿瘤,而不是肝脏,并且肝脏具有独特的细胞、血管和胆道结构,因此焦点峰值周围损伤程度的空间分布具有临床相关性,一些炎症反应也是如此。此外,肝脏再生损失体积的能力可能与未完全治疗的肿瘤有一定的相关性。 1. 在 MRgFUS 中,主要是通过使用相对较长的加热时间并避免温度高于约 80 °C,避免沸腾和显着水平的声空化。因此,我们的一些组织学发现(肝脏)与此相关。 2.在USgHIFU中,高回声被用作组织损伤的指标,高回声是由大量声空化气泡和/或组织水沸腾引起的。因此,与此类暴露相关的组织学结果可能表明损伤的空间和时间分布)。

4.8.局限性


这项研究有不可避免的局限性。首先,没有尝试测量峰值温升或单独病变中的温度,因为热电偶的插入会引入伪影(粘性加热、自热等),而如果使用热电偶,则可能会出现这些伪影,并且由于组织它们的插入造成的损伤,以及它们改变组织空化阈值的潜力。因此也无法计算热扩散。其次,在 T + AC + B 损伤中不可能区分单独由声空化造成的损害和单独由水沸腾造成的损害。沸腾与声空化增加有关,因为较高的温度有利于气泡形成,并且沸腾比非沸腾使用更多的 HIFU 能量,这使得将两者分离变得不可能。然而,只有当肝组织受到煮沸损伤时,才会出现孔洞的堆积。可以推测这些孔可能是沸腾组织切片损伤的结果。事实上,其他研究人员已经发现,在煮沸组织解剖治疗后,肝组织中出现了不规则的孔洞。引文33 ]。但在那项研究中,在没有肝纤维化的情况下,受损组织被肝细胞和血管重新填充。在我们的研究中,情况并非如此,在 HIFU 暴露后 7 天,纤维化基质占主导地位。第三,虽然不能排除病变边缘细胞外空间扩张可能是由于脂质积累(随后在组织学处理过程中被二甲苯溶解)造成的可能性,但这不太可能只在病变边缘观察到。引文34 ,引文35 ]。此外,我们的部分仅在横截面而不是纵向上进行评估。最后,冷冻组织上的波形蛋白或 NADH-α 染色剂等标签可以提供对治疗热方面性质的一些了解,并有助于识别病变热成分的边界。我们计划将这些调查纳入我们的后续研究中。

4.9.概括


在本研究中,描述并使用了 2 种不同的 HIFU 暴露方案:T(+AC) 方案具有消融温度和低水平的可检测声空化活动,最有可能发生在病变外部,T+AC+B 方案具有更高水平的空化活动和间隙水的沸腾。所有病变都有一条异常红色 (H&E) 染色的最外层出血带,围绕一圈组织,细胞外间隙(白色间隙)增加,宽度为几微米。这些间隙可能是由于 HIFU 焦点低压区域的惯性或稳定空化造成的。在该区域发现了裂解的 caspase-3、Hsp70 和 ki67 染色的细胞边缘 (2),我们将其定义为立即病变组织的外边缘。2 个 HIFU 暴露方案的下一个更中心区域(区域 3)呈异常紫色 (H&E) 染色。这些表面上正常的形态区域包含热固定细胞。独特的是,所有 T + AC + B 病变中心均含有均质组织(细胞结构完全丧失)和大(≫ 10 µm)不规则形状的孔,这些大孔通常包含一些出血区域,因为组织液沸腾,声空化活动中较小孔的潜在贡献。我们得出的结论是,HIFU 病灶中的水沸腾与病灶中心形状不规则的大孔有关。这些结果首次证明了如何利用热 HIFU 照射在病变中心形成空洞。这可能使它们适合用于组合方案,例如需要生物治疗剂的肿瘤内施用的情况。与其他基于超声的空腔形成方法相比,其优点是暴露几天后没有明显的肿瘤吸收。



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