转化是指将质粒DNA导入细菌的过程,通过热激、冰浴、摇菌、挑菌等过程达到质粒克隆、质粒鉴定等目的,质粒转化前需准备的试剂包括:感受态细胞、质粒、无抗生素的LB液体培养基、氨苄抗性LB固体培养基平板,耗材及实验设备包括:摇菌管、Ep管、超净台、涂菌棒、酒精灯、水浴锅等。
1.提前将感受态细胞放置在冰盒上解冻,准备好质粒和相应数量的1.5mL EP管。2.感受态细胞解冻后取50μL加入EP管中,再加入0.5-1μL质粒,冰浴30min。4.在超净台内加入无抗性的LB液体培养基500μL,摇床设置37℃速度180rpm,孵育15-30min。6.离心结束后去上清530μL左右,剩余部分用移液器轻轻混匀。7.将LB固体培养基平板标记好基本信息,取上述液体约10-20μL进行涂板,涂板完成后倒置在37℃(由感受态细胞说明书决定温度)恒温箱内培养过夜。8.第二天上午取出平板观察菌落大小及密度,达到要求后封口膜封闭后暂存于冰箱4℃。9.当天下午,根据实验要求挑取相应数量的单克隆菌落,放入已加入氨苄抗性LB液体培养基3-4mL的摇菌管内,摇床设置220-240rpm,倾斜放入摇菌管,拧松瓶盖后培养过夜,时间12-16h为宜。10.第二天上午使用试剂盒抽质粒,不同的试剂盒操作流程各异,根据说明书步骤进行操作即可。
1.感受态细胞-80℃保存,转化开始前拿出放在冰上融化,以我的经验来说,感受态细胞呈浑浊液体,因此在融化的过程中,可以拿起来用轻弹管壁观察是否完全融化。2.在步骤4当中,摇床孵育时间由质粒情况决定,若是普通载体克隆,15min足够,且第5步的离心也可省略直接涂板即可,若是重组质粒的鉴定,则应延长至30min。3.培养基中使用哪种抗生素由质粒决定,应仔细阅读说明书。4.步骤7中,涂板的量可由自己经验决定,一般来说普通质粒不离心取30μL涂板(6cm固体平板)密度适中。涂板时应将涂菌棒完全消毒,可先在75%酒精中浸泡,再用酒精灯外焰烧15s左右,待涂菌棒完全降温后进行涂板,若不确定是否恢复常温,可在无菌液的空白处进行尝试。5.涂板完成后,培养时间一般过夜即可,第二天长出肉眼可见、大小适中的菌落可进行挑菌。6.摇菌完成后,提质粒之前若不确定摇的菌液是否合适,可在酶标仪中测OD600的值来估算细菌浓度,若OD值在3左右,说明细菌浓度已经达到饱和,适合提质粒。7.转化开始前仔细阅读质粒说明书,选择合适的感受态细胞是整个实验成功必不可少的一环。
本文作者是"呜哇呜"同学,在获得授权后,实验老司机将本文发表于公众号。
文稿:呜哇呜
校对:煲仔饭
素材:
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