手把手教学|BCA法检测蛋白浓度

文摘   科学   2024-11-16 07:03   广东  


一、 实验原理

BCA是一种碱性的水溶性复合物,性质稳定。在其提供的碱性环境下,蛋白质可以将BCA试剂中的Cu2+还原为Cu+,Cu+继而与BCA试剂螯合,从而产生蓝紫色的络合物,在562nm波长处具有强吸收峰,通过测定吸光度,结合标准曲线即可得知蛋白浓度。BCA法因抗干扰性强、简便准确,灵敏度高而得到广泛应用,但其也易受温度、孵育时间的影响。


二、 实验步骤(视试剂盒而定

1) 蛋白标准品配制

室温完全溶解蛋白标准品,取20µl 5mg/ml BSA蛋白标准溶液用PBS溶液稀释至100µl,使其终浓度为1.0 mg/ml。

2) 配制BSA标准测定溶液

3) 工作液配制

将A液与B液按照50:1的比例混合,配成BCA工作液,并混匀。注:此处一定要精准计算待测孔所用工作液的量,如测定4个蛋白样本,均做3个复孔,那么加上标曲一共有39孔,每个测定孔均需加入200µl的工作液,那么共需7800µl工作液,则A液:B液=7800:156。

4) 加样

按照第二步所示表格加标准曲线测定孔,将待测样本以适当体积加入并用PBS补足至20ul(待测样本加入的量可按照经验值进行估计)。

5) 孵育

向各孔中加入200µl的工作液,混匀后37℃孵育30min,亦可室温放置2h。

6) 测吸光度

测定562nm处的吸光度,记录数值,代入标曲计算浓度。

7) 绘制标准曲线计算样品浓度

a.新建一个Excel表格,将得到的标准品的吸光度按照下方表格排列,并按照试剂说明说输入相应标准品的浓度(这里作者剔除了一个离群值);

 注:此处进行了一个单位的换算,这个可根据大家的个人习惯来

b.选中标准品的吸光度和浓度,点击“插入”,选择散点图;

c.点击散点图上的任意一点,右键选择添加趋势线

d.点击设置,趋势线选项选择“线性”,勾选“显示公式”和“显示R平方值”,即可得到标准曲线;

        注:横坐标为吸光度,纵坐标为浓度,R2需要大于0.99方可使用

e.计算样本浓度:代入公式直接计算即可,但要记得样本稀释倍数再给还原回去哦。

 

三、 注意事项

1)标准品可现配现用,也可配制后在-20℃保存一年,但工作液需要现配现用。

2)为保证蛋白浓度测量的准确性,最好做3个复孔,必要时剔除离群值。

3)BCA法测蛋白浓度易受时间及温度的影响,所以最好每次测定都做标准曲线。

4)在制作标曲时,一定要分清横纵坐标哪个代表浓度哪个代表吸光度,不要搞错。

5)加样时一定要准确加样且尽可能避免气泡产生,以免影响测量(加样结束可以用注射器戳破气泡,并将96孔板放在摇床上混匀片刻,以使样品与工作液充分接触)。

6)孵育结束应尽快检测吸光度,并尽可能加快检测速度,以免带来误差。

7)一般情况下,样品的蛋白浓度是比较高的,需要用PBS溶液进行稀释后测量,稀释倍数可根据经验值进行调整,保证浓度测量在标准曲线范围内进行。




本文作者是"夏沫梦鸢"同学,在获得授权后,实验老司机将本文发表于公众号。

文稿:夏沫梦鸢 

校对:煲仔饭

素材:Canva

参考资料:

  • https://images.app.goo.gl/DYZ1ZxLbfyzRkHbr8

  • https://images.app.goo.gl/Q8VVUsHXcKzxZHseA




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