现货AAV免费试用|不同AAV血清型对肾脏/胰腺组织的侵染

文摘   2024-12-25 18:24   广东  

AAV(腺相关病毒)因其免疫原性低、安全性高、宿主范围广、组织特异性、长期稳定表达等特点,已被广泛地应用在动物水平的基因表达、基因操作和基因治疗中。选择AAV治疗有利于能够精准靶向目标器官细胞,减少对其他器官的影响。


AAV的血清型主要是由AAV衣壳蛋白的结构所决定,不同的衣壳蛋白结构偏向识别结合特定的细胞表面受体,因此血清型的选择会影响AAV对不同器官/组织的感染效率;且根据靶器官/组织类型和AAV血清型类型的不同,推荐注射的AAV量也不同。


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接下来,以肾脏组织和胰腺组织为例,我们来一同探讨关于血清型的选择。


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胰腺组织

在Jimenez, V等人研究中[1],研究人员发现三种血清型对胰腺的侵染效率为:AAV6>AAV8>AAV9。在3E+12 vg的剂量下,AAV6和AAV8能够转染所有胰岛,而AAV9的转染效率相对较低,定量分析显示,约45%的β细胞被AAV6和AAV8转染(图1)。


图1 逆行胰管给药的AAV载体对胰岛和β细胞的转导[1]


Quirin K A等人[2]通过静脉给药对比了scAAV9和scAAV8对于胰腺的侵染能力,发现scAAV9>scAAV8,在病毒注射量为1E+12 vg时,scAAV9能够侵染45%的胰腺细胞(图2)。随后他们通过逆行胰管给药,对比了scAAV6,scAAV8和scAAV9对于胰腺的侵染能力。结果表明这种给药方式下,scAAV6对于胰腺的侵染能力最高,能够侵染80%的胰腺细胞,可以有效转染胰腺的腺泡细胞、上皮细胞和间质细胞(图3)。


图2 AAV8和AAV9通过全身递送靶向胰腺的比较[2]


图3 逆行胰管给药不同血清型对胰腺的侵染情况[2]


常规血清型想要对胰腺有较好的侵染效果,通常要使用逆行胰管给药(图4A),这种给药方式创伤较大,难度较高。Chen M等人[3]使用衣壳优化的AAV8载体,采用尾静脉和腹腔注射的方式研究AAV在胰腺和胰腺肿瘤中的表达。研究人员生成了三种不同的酪氨酸-苯丙氨酸(Y-to-F)突变AAV8载体,并将它们的转导效率与野生型AAV8在小鼠模型中的正常胰腺和胰腺导管腺癌(PDAC)进行了比较。他们发现,双突变AAV8(Y447F+Y733F)在胰腺组织中表现出最高的转导效率,与野生型AAV8的7%相比,双突变AAV8(Y447F+Y733F)的mCherry表达达到45-70%。与野生型相比,该双突变体在正常胰腺中的载体基因拷贝数也高出7倍,在PDAC中的转导效率高出15倍。双突变AAV8(Y447F+Y733F)通过腹腔注射可以显著增强在胰腺中的基因表达,相比于尾静脉注射,腹腔注射可以使mCherry表达效率提高4.28-9.6倍。


图4 Y447F+Y733F-AAV8双突变体提高小鼠胰腺的转导效率[3]


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肾脏组织

研究人员通过不同的给药方式验证了多种血清型对肾脏的侵染能力,结果表明AAV9血清型对于肾脏侵染能力最强。


Chung D C等人[4],采用输尿管逆行注射的注射方式对比rAAV1,rAAV2,rAAV5,rAAV6,AAV6.1.2,AAV.rh8,rAAV7,rAAV8和rAAV9对于小鼠肾脏的侵染效率,发现rAAV8和rAAV9能够有效地感染小鼠肾小管细胞(图5)。


图5 不同血清型对肾小管的侵染[4]


在另一项研究中, Rocca C J 等人[5]通过肾静脉注射,对比了rAAV5,rAAV6,rAAV8和rAAV9在小鼠肾脏中的表达情况。实验结果表明rAAV6和rAAV8通过肾静脉注射能够转染肾脏,但主要局限于肾髓质区域,而rAAV9则能够高效转染肾皮质和髓质两个区域(图6)。共聚焦显微镜发现注射rAAV9 - GFP的肾脏中近端小管和肾小球呈GFP阳性,在肾小球中,足细胞和系膜细胞中均检测到GFP(图7)。


图6 肾静脉注射不同血清型对肾脏和其他器官的侵染[5]


图7 AAV9侵染肾脏免疫荧光图片[5]

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参考文献

[1].   Jimenez, V., et al., In vivo genetic engineering of murine pancreatic beta cells mediated by single-stranded adeno-associated viral vectors of serotypes 6, 8 and 9. Diabetologia, 2011. 54(5): p. 1075-1086.

[2].   Quirin, K.A., et al., Safety and Efficacy of AAV Retrograde Pancreatic Ductal Gene Delivery in Normal and Pancreatic Cancer Mice. 2017.

[3].   Chen, M., et al., Efficient Gene Delivery and Expression in Pancreas and Pancreatic Tumors by Capsid-optimized AAV8 Vectors. Human Gene Therapy Methods, 2017. 28(1): p. 49.

[4].  Chung, D.C., et al., Adeno-Associated Virus-Mediated Gene Transfer to Renal Tubule Cells via a Retrograde Ureteral Approach. Nephron Extra, 2011. 1(1): p. 217-223.

[5].  Rocca, C.J., et al., rAAV9 combined with renal vein injection is optimal for kidney-targeted gene delivery: conclusion of a comparative study. Gene Therapy, 2014. 21(6): p. 618-628.


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