Nature plants | 如何整合不同发育时期单细胞数据构建各细胞类型的转录因子调控网络

文摘   科学   2024-10-10 17:01   北京  

目前,单细胞转录组发育研究普遍涉及对多时间点数据的整合分析,基于多个发育节点数据推导出基因表达的连续轨迹。转录因子的激活是发育的关键因素,转录因子的激活状态与细胞发育轨迹相结合,构建动态表达调控网络,有助于深入解析发育过程


2024年9月,来自澳大利亚的研究团队在国际权威期刊Nature plants发表了题为Establishment of single-cell transcriptional states during seed germination的文章。该研究主要基于三个发育节点的单细胞转录组数据,构建了拟南芥胚的各细胞类型随发育进程的动态转录因子调控网络



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文章亮点


基于3个发育节点的scRNA-seq数据,通过CSHMM-TF模型解析了拟南芥胚发育过程中,各细胞类型的基因表达轨迹和转录因子动态调控网络。


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实验设计



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文章思路



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主要结果


胚萌发的单细胞转录图谱构建

选取拟南芥种子萌发早期(12h)、中期(24h)和末期(48h)样本,每时期2个生物学重复,共计6个样本进行scRNA-seq。


收集种胚并制备原生质体。由于原生质体制备会影响应激相关基因表达,通过相应节点样本的Bulk RNA-seq 进行校正,去除原生质体制备引发的应激基因表达的干扰


由于种子萌发早期基因表达水平低,不易进行双胞液滴识别。为了有效过滤双胞细胞,在萌发早期进行Col-0、Cvi-0原生质体1:1混合测序。通过出现2个生态型混合的SNPs识别真实双胞液滴。后续使用来自Col-0的细胞进行分析。


总计捕获来自于Col-0的细胞数12,798个,每个细胞平均表达1,025个基因。注释了15个cluster中的13种细胞类型(叶肉、下胚轴、表皮、胚根、胚根顶端分生组织、静止中心/小柱细胞)并通过RNA原位杂交验证注释结果。


下胚轴皮层细胞发育的动态变化

涉及到下胚轴皮层细胞(cluster1、5、7)的三个cluster在每个时间节点的占比不同,表明下胚轴皮层细胞存在异质性。但由于差异微小,无法对三个cluster做进一步区分。


AT4G16410是cluster1、5、7在12h、24h节点的特异性高表达基因。通过RNA原位杂交验证其在下胚轴下部和中部皮层细胞中表达。


对下胚轴细胞(cluster1、2、5、6、7、10)进行再次聚类。cluster1、5、7由于表达高度相似仍被注释为下胚轴皮层细胞,表明cluster1、5、7代表在萌发过程中不同转录状态的下胚轴皮层细胞


基于下胚轴皮层细胞(cluster1、5、7)进行拟时序分析并构建其发育轨迹。三种cluster在拟时间轨迹上的排列也遵循真实的萌发过程。


由于下胚轴皮层细胞的功能在萌发过程中发生了变化,基于共表达基因分析(Louvain community analysis)获得25个共表达模块,并评估模块功能和表达时间的关联。


在萌发早期,共表达模块与染色质可及性、转录、RNA剪接和翻译相关;萌发中期,与翻译、蛋白质成熟和光合作用相关;在萌发晚期,与光合作用相关。综上表明,基因动态表达驱动了萌发过程中下胚轴皮层细胞的功能变化。


初始转录细胞的动态转录变化

萌发早期(12h)主要由cluster 8和cluster 11 相关细胞主导。相关性分析表明,cluster 8 与1h、6h的Bulk RNA-seq相似性最高,表明cluster 8 和cluster 11具有不同生物特性。

通过RNA原位杂交验证了cluster 8、11的表达部位。cluster 8的2个marker基因(AT4G25140和AT5G35660)在1h、6h、12h的整个胚中均有表达。


相比之下,cluster 11的2个marker基因仅在原维管细胞中表达。此表达区域对应于脱落酸和赤霉酸信号传导,与调节休眠种子的萌发决策相关。表明cluster 8 代表了大多数胚细胞在萌发早期的转录状态;cluster 11 可能代表了已经做出萌发决策的细胞


基于CSHMM-TF预测不同细胞类型的基因表达调控程序

通过连续状态隐马尔可夫模型-转录因子(CSHMM-TF)预测不同细胞类型的动态基因调控程序萌发中的基因表达是一个复杂的动态过程,每个cluster在萌发过程中都表现出不同的基因表达模式,富集的基因功能注释也随萌发而变化。


例如,与初始转录细胞相关的cluster 8 、11的拟时间顺序与实际萌发时间一致,两个cluster在萌发中表现独特的基因表达模式,表明每个cluster的基因调控程序不同。


进一步基于cluster 8 、11中特异性转录因子验证了本模型的实用性。在拟南芥中敲除/敲降相关转录因子表达,结果表明突变体的萌发率表现不同程度的增加,Bulk RNA-seq也表明靶基因表达出现不同程度变化。然而,由于不同细胞类型中存在特异性表达的转录因子,使用Bulk RNA-seq验证靶基因表达可能缺乏敏感性

进一步分析所有cluster的表达调控程序,总共预测81个活跃的转录因子,其中39个是特定cluster中特异性表达的。敲除/敲降这些转录因子基因,突变体的种子发育、萌发和早期幼苗生长相关的表型均发生变化。


综上,种子萌发过程中胚的各细胞类型具有独特的基因调控程序,并由特定转录因子调控本预测模型可识别这些转录因子,并进一步应用于其他研究。



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