Circulation丨转录组学全家桶!深度解析心脏重编程改善HFpEF纤维化的分子机制!

文摘   2024-12-23 23:13   北京  



研究概览

心脏纤维化是射血分数保留性心衰(HFpEF)的重要表现,也是导致心脏功能减弱的重要机制之一。然而,目前仍缺乏靶向成纤维细胞、治疗HFpEF纤维化的治疗手段。

近日,日本庆应大学Masaki Ieda教授团队在心血管顶刊Circulation杂志(IF=35.5)发表文章,题目为《Cardiac Reprogramming and Gata4 Overexpression Reduce Fibrosis and Improve Diastolic Dysfunction in Heart Failure With Preserved Ejection Fraction》。该研究通过构建HFpEF转基因小鼠模型,证实了在心脏成纤维细胞(CF)过表达Gata4显著改善HFpEF小鼠的心脏舒张功能、改善心脏肥厚和纤维化等表型,提示心脏重编程是抑制HFpEF患者心肌纤维化并改善心脏功能的潜在疗法。




01

心肌重编程改善HFpEF小鼠心脏功能和表型 

1.1研究模型

Tcf21iCre/Tomato/MGTH2A三转基因小鼠(TTg)、HFpEF小鼠模型(高脂饮食+L-NAME

1.2实验方法

流式细胞分选(观科研丨图解流式)、qPCR观科研丨qPCR)、天狼猩红染色(观科研丨图解天狼猩红染色)、免疫荧光染色(观科研丨图解免疫荧光染色)、体重血压检测、超声心动图、心脏压力容积环导管监测、运动耐力实验(跑步机)

1.3研究结果

作者构建了Tcf21iCre/Tomato/MGTH2A三转基因小鼠(MGTH)和Tomato报告基因三转基因(TTg)鼠。该鼠在他莫昔芬处理后心脏成纤维细胞(CF)过表达Mef2c/Gata4/Tbx5/Hand2MGTH)四种重编程分子,同时表达Tomato报告基因(图1A-B)。HFpEF模型使心脏纤维化显著增加,活化成纤维细胞增加(图1C)。过表达MGTH后,HFpEF鼠在体重、血压、心脏舒张功能以及运动耐力均有改善(图1D-K)。

图1. 心脏重编程改善HFpEF舒张功能

心脏重编程后,HFpEF心脏在重量、心肌细胞横截面积、纤维化面积和微血管密度均有改善(图2A-H)。其中约1%Tomato+细胞表达了心肌marker α-actinin,提示心肌重编程诱导HFpEF成纤维细胞向心肌转换(图2I-J)。

2.心脏重编程改善HFpEF心脏病理表型并产生诱导型心肌细胞


02

HFpEF心脏重编程的转录组特征

2.1研究模型

HFpEF模型、TTg心脏重编程鼠

2.2实验方法

Bulk转录组(观科研丨bulk转录组学)、单细胞转录组(观科研丨单细胞)、空间转录组

2.3研究结果

作者首先对正常饮食对照组、HFpEF对照组和TTg-HFpEF组进行bulk转录组测序,发现HFpEF对照组中纤维化和炎症相关基因表达上调、心脏功能相关基因下调,这些基因在TTg-HFpEF组恢复,qPCR验证了以上基因表达变化(图3A-C)。

3.心脏重编程改变HFpEF转录特征

作者随后对三组样本非心肌细胞进行单细胞转录组分析,共获得36786个单细胞转录组数据,这些细胞共分为9群(图3D),其中心脏成纤维细胞分为6个亚群(图4A-B)。Col1a1,Tcf21和Tomato为CF的共同marker,GO分析提示CF1亚群与ECM组织相关,CF1-3均表达稳定期成纤维细胞marker,CF4与肌动蛋白细胞骨架相关,而CF5与骨化、活化成纤维细胞相关,CF6表达瓣膜成纤维细胞marker Wif1(图4C-E)。对不同亚群差异表达的基因进行GO分析,分为了4个基因簇(图4F)。与纤维化相关的基因簇1、2、4在Ctrl-HFpEF心脏中表达上调,这些基因在TTg-HFpEF组恢复,提示心脏重编程发挥了抗纤维化效应。然而,与细胞死亡和应激响应相关的基因簇3在Ctrl-HFpEF表达上调,但在TTg-HFpEF组无改变。各CF亚群ECM评分相近,除CF6外均在Ctrl-HFpEF心脏上调,在TTg-HFpEF组恢复(图4G)。总体上看,ECM、促纤维化基因、整合素和炎症相关基因在Ctrl-HFpEF心脏上调,在TTg-HFpEF组被抑制(图4H-I)。

图4. 心脏重编程抑制HFpEF多种CF促纤维化转录

随后,作者进行了空间转录组分析来寻找各亚群CF的定位和功能。在CF1-4富集的Col3a1SparcCtrl-HFpEF中弥散性上调,而在CF5富集的PostnCcn2局灶性上调(图5A-B)。将各亚群marker基因表达映射到空转数据后(图5C),发现CF1-3主要为弥散性分布,提示主要介导间质纤维化,而CF5-6为局灶性分布,CF4两种分布均存在(图5D)。Ctrl-HFpEF心脏中,CF4-6的分布与天狼猩红染色阳性区域相重合,提示这些亚群主要介导血管周围纤维化,CF5 marker Postn的免疫荧光染色验证了这一结论(图5E-F)。

图5. 空间转录组分析发现CF亚群在间质和血管周围纤维化的作用


03

在CF单一过表达Gata4即可改善HFpEF表型

3.1研究模型

TTg鼠(MGTH)、单一因子转基因鼠(SF-GMTH

3.2实验方法

成纤维细胞分离、qPCR、荧光细胞分选、超声心动图、活动耐力实验、天狼猩红染色

3.3研究结果

由于HFpEF心脏收缩功能未严重受损,心脏重编程造成的诱导心肌生成可能不是必要的。于是作者将四种重编程因子拆分构建了过表达小鼠,将胚胎成纤维细胞分离并进行促纤维化处理,发现单一过表达Gata4即可显著抑制促纤维化基因表达,Mef2C次之,FACS分析提示单一过表达并不会诱导心肌生成(图6A-C)。接下来,作者构建了他莫昔芬诱导的Gata4SF-G)和Mef2CSF-M)过表达小鼠,在体验证两种过表达对HFpEF心脏表型的改善作用。SF-G-HFpEF小鼠在诱导过表达后心脏功能指标显著改善、纤维化面积改善,而SF-M-HFpEF无显著改善(图6D-H)。

图6. Gata4过表达改善HFpEF心脏功能和纤维化

最后,作者对Gata4过表达抗纤维化的机制进行了探究,通过qPCR对先前发现的抗纤维化调节基因Meox1表达进行检测,发现Meox1HFpEF心脏中表达升高,而心脏重编程和单一Gata4过表达均可以抑制其升高(图7A)。在体外用siMeox1处理TGFβ激活的成年鼠CF细胞可显著抑制其激活标志物Acta2表达(图7B-C),利用仙台病毒过表达Gata4同样可抑制Meox1Acta2表达,但过表达Gata4同时抑制Meox1却不会进一步抑制Acta2Gata4过表达通过抑制Meox1抑制成纤维细胞激活,对αSMA的免疫荧光染色进一步验证了这一结论(图7D)。作者在人类成纤维细胞验证了过表达Gata4对促纤维化的抑制作用(图7F-G)。

图7. Gata4过表达通过抑制Meox1减少成纤维细胞激活


研究总结

本研究思路清晰,是学习干湿结合研究范式的优秀文章。本研究的亮点一是充分利用转录组学,将心脏重编程对HFpEF心脏成纤维细胞的改变进行亚群水平的定量、定位分析,进而解析心肌重编程改善HFpEF纤维化的机制;二是化繁为简,利用体外模型,从四种因子中筛选出针对HFpEF治疗有效的关键因子Gata4,提高了后续进行临床转化的应用价值。


参考文献

Yamada Y, Sadahiro T, Nakano K, et al. Cardiac Reprogramming and Gata4 Overexpression Reduce Fibrosis and Improve Diastolic Dysfunction in Heart Failure With Preserved Ejection Fraction. Circulation. Published online December 14, 2024. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.123.067504


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图文:往观

审核:定观

编辑:往观

编审:仓观


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