Nature Communications | 一种具有单细胞分辨率的植物基因表达记录器

学术   2024-10-31 09:38   湖北  

在发育过程中,基因的顺序性表达逐步限制并确定了细胞的命运。许多参与细胞分化过程的基因已在各种模式生物和非模式生物中被鉴定,并且在许多情况下,这些基因已被整合到细胞命运路径中。然而,全面理解发育过程还需要将个体细胞如何应答这些遗传调控网络变化的信息结合起来。目前,实现这一目标的关键技术是开发一种能够以单细胞分辨率监测基因表达历史的方法。
近日,美国华盛顿大学生物系Cassandra在国际知名期刊Nature Communications上发表了一篇题为“A history-dependent integrase recorder of plant gene expression with single-cell resolution”的研究论文。在这项研究中,作者开发了一种具有单细胞分辨率的植物基因表达历史依赖型整合酶记录器,并展示了其在两个发育环境中追踪拟南芥基因表达事件的应用:侧根起始和气孔分化。记录器能够以单细胞分辨率揭示过去的基因表达,通过这种方式,能够捕捉到气孔发育的异质性,证实了存在两条不同的分化路径。

                                            

丝氨酸整合酶基于特定整合酶位点的存在和方向性来介导特定位点的DNA倒位或切除(当位点方向相反时为倒位,相同时为切除)。我们基于整合酶的历史依赖型基因表达记录器利用了这些重组能力,具有四种可能的荧光表达输出,每种输出指示信号输入发生的具体顺序。该记录器由两个部分组成:靶标(包括整合酶位点、荧光蛋白和基因调控元件)和整合酶结构(介导整合酶表达)。我们为拟南芥设计了靶标结构,使用强启动子p35S和三种编码荧光蛋白的基因:定位于内质网的mtagBFP2(以下简称BFP)、定位于细胞核的mCherry(以下简称RFP)以及定位于细胞核的NeonGreen(以下简称GFP)。启动子和报告基因被用来与两个丝氨酸整合酶的整合酶位点:PhiC31和Bxb1衔接。靶标有四种可能的DNA状态,导致不同的表达输出:状态0(BFP表达)、状态1(RFP表达)、状态2(GFP表达)和状态α(无荧光表达)。状态之间的切换依赖顺序,由PhiC31和Bxb1整合酶介导。 

每个气孔都源自叶表皮上的增殖型分裂原细胞,该细胞是气孔细胞谱系的前体。在气孔的发育过程中,分裂原细胞遵循一个典型的进程,先经历几次不对称细胞分裂,然后再对称分裂一次,形成气孔的两个保卫细胞。许多参与从分裂原细胞到保卫细胞这一过程的基因已经被广泛研究。我们专注于记录气孔发育过程中两个基因的表达:SPEECHLESS (SPCH),它促使分裂原细胞进行不对称细胞分裂;以及MUTE,它在后期表达并负责触发最终的对称分裂以形成两个保卫细胞。因此,我们使用pSPCH来驱动第一个整合酶(PhiC31)的表达,使用pMUTE来驱动第二个整合酶(Bxb1)的表达。最终的记录器包含这个整合酶结构和“PhiC31-Bxb1”靶标。


大多数气孔如预期那样表达了GFP荧光蛋白,然而,有一部分气孔未表达任何荧光蛋白。在记录器的设计中,一个没有荧光的细胞表明,靶标在PhiC31重组之前由于Bxb1重组而切换到了状态α。这一结果暗示了存在两种不同的气孔群体,它们在切换到状态α或继续转换到状态2的可能性上有所区别。我们在SPCH和MUTE单整合酶切换中未观察到这种变异,因此我们推测这一差异是由于SPCH和MUTE表达时间的相对差异引起的。如果两者表达的时间相对接近,那么Bxb1介导切换到状态α的可能性就更大;而如果时间间隔较长,PhiC31就有更多的时间领先,这增加了细胞切换到状态1和状态2的可能性。


理论上,我们的记录器设计可以转移到任何能够进行转化的植物上,用于促进关键发育过程(如气孔)的进化-发育研究等应用。将此系统引入农作物中可能有助于优化和量化与气候适应性相关的性状,从而促进标记辅助育种。我们的历史依赖型记录器也可能在不同的非植物生物中发挥作用,并适用于研究低表达基因的分化路径或评估基因表达轨迹中的细胞间变异等挑战。我们的方法相对简单易用,能快速进行原型设计和优化,用于阐明和重新编程细胞状态。

原文链接:

https://www.nature.com/articles/s41467-024-53716-1


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