邻近标记技术系列之三:过氧化物酶

文摘   2024-06-21 07:26   上海  

01

传统技术的痛点

蛋白质是生命活动的执行者,传统研究蛋白质相互作用的技术大多存在一定的痛点。Co-IP技术虽然是体内实验,但不适用于瞬时或较弱的蛋白相互作用,且需要额外准备相应抗体;体外纯化Pull down实验也存在无法反映细胞内真实蛋白相互作用和噪音强等痛点,酵母双杂交Y2H法同样不适用于膜蛋白等研究场景,且需构建适合的cDNA文库。
邻近标记(PL,Proximity Labeling)技术是2012年前后诞生的技术,利用一些能在其邻近空间行使标记功能的酶,将生物素以共价修饰的方式与目标蛋白进行结合,通过链霉亲和素磁珠富集纯化后可经质谱等形式鉴定相互作用。

在上一期我们已经介绍了基于突变的生物素连接酶BirA*的BioID(Biotin Identification)和其相关技术,本期将介绍基于过氧化物酶的APEX和其相关技术。

邻近标记技术系列之二:生物素连接酶
图1 . 过氧化物酶介导的邻近标记技术原理[1]

02

HRP技术

基于生物素连接酶的邻近标记技术大多存在反应周期长的痛点,且难以标记膜受限区域。 基于辣根过氧化氢酶(HRP,horseradish peroxidase)的邻近标记技术率先应运而生。
基于HRP的有两种技术,其中一种是酶介导的自由基激活法(EMARS,enzyme mediated activation of radical source),在富含过氧化氢的环境中,HRP能够以生物素的芳基叠氮化合物为底物产生含氮自由基,在300nm的空间范围内能够催化生物素与目标蛋白的酪氨酸或色氨酸侧链等活性氢位点或亲核基团偶联,多用于脂筏和膜蛋白研究[2],但生物素的芳基叠氮化合物不易合成,且和过氧化氢都对细胞存在毒性,300nm的空间距离同样容易造成较多假阳性结果。
另一种基于HRP的技术是利用酪胺的邻近蛋白质组选择性标记法(SPPLAT,selective proteomic proximity labeling assay using tyramide),同样当过氧化氢存在时,HRP能催化生物素-酪胺/苯酚产生自由基,自由基可共价连接到目标蛋白的含电子氨基酸侧链上(如酪氨酸、组氨酸和色氨酸等)。
由于HRP的关键结构是4个二硫键,且在还原性条件下极易被破坏,因此基于HRP的邻近标记技术多用于氧化环境及细胞膜表面应用[3]
图2 . 利用HRP实现膜表面的邻近标记[4]

03

APEX和APEX2技术

2012年,科学家从二聚体植物抗坏血酸过氧化物酶中提取了一种新的邻近标记功能酶,命名为APEX,其分子量小于生物素连接酶(约为28kD),最初多用于高分辨率细胞成像[5]。在添加过氧化氢后,APEX可以催化生物素苯酚生物素-苯氧自由基,能够与目标蛋白的富含电子的侧链(如酪氨酸、色氨酸、组氨酸和半胱氨酸)反应,实现生物素和蛋白的共价连接。由于苯氧基的半衰期非常短,且不能穿过生物膜,因此标记过程可以缩短到1min内,且APEX的活性空间距离仅为20nm。
2013年,科学家通过APEX融合线粒体基质定位序列表达,实现了对线粒体基质蛋白组分的研究,证明了与HRP相比APEX能够实现特定亚细胞区域的蛋白邻近标记,拓宽了邻近标记技术的应用[6],但APEX的表达水平通常较低,造成催化活性低进而影响检测结果。

2015年,通过引入A134P突变建立了升级的APEX2技术,APEX2克服了APEX表达水平低和灵敏度低等问题[7],尤其对于难以研究到的亚细胞区域蛋白具有重大推动作用。

图3 . 基于APEX的邻近标记技术技术[4]

04

APEX技术应用场景

由于活性不受细胞内空间限制,APEX及相关技术的应用场景十分广泛。除了线粒体基质及膜间隙的蛋白相互作用研究,还用于哺乳动物核糖体[8]、大肠杆菌周质[9]等研究中。

此外,为了提高特异性减少标记脱靶现象,科学家将APEX与蛋白组片段互补技术相结合,将APEX2分为AP(含酵母展示文库N端200个氨基酸片段)和EX(含50个C端氨基酸片段),只有当两个片段重组才恢复过氧化酶活性,称为sAPEX技术[10]

05

APEX技术的优劣势

APEX及相关技术在标记能力和速度上具有提升,其主要优势在于:

1、反应时间短(1min即可),适合时间分辨率高的实验;

2、与生物素连接酶介导的邻近标记过程相比,过氧化物酶标记过程中产生的苯氧自由基半衰期更短,可能带来更高的特异性。

3、生物素苯氧自由基不能穿过生物膜,且APEX分子量较小,适用于细胞内各区域尤其是细胞器等接触位点小的亚细胞区域。
但该技术仍有待改进的方面,首先反应体系中需要添加过氧化氢,其具有细胞毒性;且融合表达的APEX也会影响蛋白实际相互作用。

综上,基于过氧化物酶的邻近标记技术仍然有很大的优化空间。


参考文献

【1】Qin, W., Cho, K.F., Cavanagh, P.E. et al. Deciphering molecular interactions by proximity labeling. Nat Methods 18, 133–143 (2021).

【2】Honke K, Kotani N. Identification of cell-surface molecular interactions under living conditions by using the enzymemediated activation of radical sources (EMARS) method. Sensors,2012, 12(12): 16037-16045

【3】Loh K H, Stawski P S, Draycott A S, et al. Proteomic analysis of unbounded cellular compartments: synaptic clefts. Cell, 2016,166(5): 1295-1307.e1221

【4】DU Yang-Chun,TANG Jing-Lan,WANG You-Jun,et al.Several New Techniques for The Study of Living Intracellular Subcellular Structural Proteomics:Application and Comparison of Proximity Labeling Strategy[J].Progress in Biochemistry and Biophysics,2019,46(07):641-653.

【5】Martell J D, Deerinck T J, Sancak Y, et al. Engineered ascorbate peroxidase as a genetically encoded reporter for electron microscopy. Nature Biotechnology, 2012, 30(11): 1143-1148

【6】Rhee H W, Zou P, Udeshi N D, et al. Proteomic mapping of mitochondria in living cells via spatially restricted enzymatic tagging. Science, 2013, 339(6125): 1328-1331

【7】Lam, S., Martell, J., Kamer, K. et al. Directed evolution of APEX2 for electron microscopy and proximity labeling. Nat Methods 12, 51–54 (2015).

【8Zuzow N, Ghosh A, Leonard M, et al. Mapping the mammalian ribosome quality control complex interactome using proximity labeling approaches. Molecular Biology of the Cell, 2018, 29(10):

1258-1269

【9GanapathyUS, Bai L,Wei L, et al. Compartment-specific labeling of bacterial periplasmic proteins by peroxidase-mediated biotinylation.ACSInfectious Diseases, 2018, 4(6): 918-925

【10Han Y, Branon T C, Martell J D, et al. Directed Evolution of Split APEX2 Peroxidase.ACSChemBiol, 2019, 14(4): 619-635

【11】Jiang, He-wei et al. “Specific pupylation as IDEntity reporter (SPIDER) for the identification of protein-biomolecule interactions.” Science China. Life Sciences (2022): 1 - 19.



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