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研究背景
本研究可看作高级的基因家族分析文章,大家可重点学习研究和行文思路!
结果
1. 茶树中 UGT 的谱系特异性扩张和收缩
为了解 UGT 在植物中的进化轨迹,对 28 种代表性植物(涵盖从早期藻类到被子植物)进行系统发育分析。结果显示 UGT 在植物界广泛分布且经历显著扩张,确定了 5 个关键系统发育组(A、D、E、G、L)在被子植物进化历程中显著扩张。茶树中检测到 297 个 UGT 拷贝,上述 5 个组扩张比例大于 1,其中 G 组拷贝数较多,而在模型植物拟南芥中为第二大组的 H 组(UGT76)在茶树中仅存在一个拷贝,表明茶树中 UGT 存在显著的谱系特异性扩张和收缩现象。
为了探究茶树品种间 UGTs 进化的差异,对不同茶树品种(野生茶树 DASZ、CSA 栽培茶树 YK10 及 CSS 栽培茶树如 Shuchazao(SCZ)、Longjing43(LJ43)、Tieguanyin(TGY)、Huangdan(HD))的研究发现,UGT 基因数量从野生茶树到栽培茶树呈增加趋势,如 DASZ 有 160 个拷贝,YK10 有 191 个拷贝,CSS 品种中基因数量进一步增加(SCZ 为 297 个、LJ43 为 243 个、TGY 为 279 个、HD 为 288 个)(图1 A)。鉴于 SCZ 中 UGT 基因拷贝扩张最显著,后续以其为重点研究对象。
分析 UGT 的共线性和基因复制事件,发现串联重复(TD)事件在茶树 UGT 扩张中起重要作用,且 UGT 基因在 3 个茶树品种中经历了约 2500 万年前(MYA,Ad - β 事件)和约 9000 万年前(Ad - γ 事件)的全基因组复制(WGD)事件(图1 B),表明 WGD 事件对茶树 UGT 基因扩张有重要影响。将 UGTs 分为 18 个系统发育群(A-R)和1个外群(OG),进一步分析发现,G 组从野生到栽培品种扩张显著(图1 D),在 SCZ 中扩张模式与 YK10 不同(图1 C);H 组在其他物种中扩张,但在不同茶树品种中仅保留 1 - 2 个拷贝(图1 E),存在谱系特异性收缩。
2. H 组收缩并参与茶树抗病性
H 组(UGT76)在拟南芥中是 UGT 基因家族的第二大亚家族,与植物免疫和抗性相关。然而,在茶树(SCZ)中 H 组经历了显著收缩,仅保留一个拷贝(CSS0042294,本研究中称为 UGTH1)
3. 自然和人工选择驱动中国种茶树 G 组成员的扩张
G 组(UGT85)成员在茶树中发生了显著扩张,这暗示其与茶树品质或抗性存在潜在联系。分析野生茶树(DASZ)、阿萨姆种(CSA,如 YK10)和中国种(CSS,如 SCZ)茶树中 G 组基因的共线性,发现 YK10 和 SCZ 中的基因与 DASZ 中的 G 组基因具有同源性,但 SCZ 中源自 DASZ 的 GWHTABKB001598 分化为 CSS0047548 和 CSS0011078,与 YK10 中的分化模式不同(图3 A),推测 CSS 中 G 组的扩张可能具有独特特征。
通过在 SCZ 品种 G 组的系统发育树中设置分支节点(a - k),比较各分支的蛋白序列以获取一致序列,计算其 Ks 值来推断最简约的进化历史(图3 B)。结果表明,经过一轮 WGD 和 TD 事件后,SCZ 获得 3 个祖先基因(d、e、c),这些基因在 WGD 和 TD 事件共同作用下持续扩张,表明 WGD 和 TD 共同推动了 SCZ 中 G 组的显著扩张(图3 C)。此外,不同祖先基因形成的 UGT 在系统发育树中形成不同簇,包括 Cluster I、II 和 III,其基因表达模式不同,Cluster I 在所有组织中表达模式一致,Cluster II 和 III 部分基因在所有组织表达,部分仅在根中表达(图3 C)。
对其他物种 UGT 的系统发育分析显示,茶 Cluster II 成员存在分化,基于 Cluster II - 2 和 3 中 UGT 对低温和干旱等非生物胁迫的相反响应,推测其功能发生分化(图3 D-E)。同时,Cluster III 中的 UGT 均响应低温,但仅 Cluster III - 2 响应干旱胁迫,Cluster III - 1 在干旱胁迫下表达无显著变化,推测 Cluster III 中的 UGT 也存在功能分化(图3 E)。对 DASZ、YK10 和 SCZ 中 G 组 UGT 的系统发育分析表明,Cluster III - 1 分支仅存在于 SCZ,通过扫描野生、栽培、地方品种和优良品种的基因组选择性扫描区域,发现 Cluster III - 1 中的 UGT(如 CSS0016082、CSS0042833 和 CSS0030265)核苷酸多样性降低,与野生群体相比 FST 差异显著且 Tajima’s D << 0(图3 F-H),表明这些基因可能受到人工选择。
图3 自然和人工选择驱动中国种茶树 G 组成员的扩张
4. G 组 Cluster II 中 UGT85A53 和 CSS0029711 重复基因对编码酶的底物选择性差异导致其在冷旱响应中的不同作用
为验证 G 组 Cluster II 中 UGT 功能分化的假设,选择 UGT85A53(CSS0018956)和 UGT1(CSS0029711)作为 Cluster II - 2 和 II - 3 的代表,它们对非生物胁迫响应相反。UGT85A53 可糖基化顺 - 3 - 己烯醇和脱落酸(ABA),UGT1 对香叶醇和 β - 香茅醇催化活性最高。酶活性测定结果显示,UGT1 催化香叶醇和 β - 香茅醇产生的游离 UDP 含量分别为 650.2μM 和 584.8μM,催化 UGT85A53 的最佳底物顺 - 3 - 己烯醇和 ABA 时产生的游离 UDP 含量分别为 179.9μM 和 76.19μM,略高于对照(58.0μM)。通过液相色谱 - 串联质谱(LC - MS/MS)测定底物产物量以比较两者底物偏好差异,发现 UGT85A53 和 UGT1 均能糖基化香叶醇、β - 香茅醇和顺 - 3 - 己烯醇产生相应糖苷产物,但 UGT1 不能糖基化 ABA 或其他激素(图4 A),表明 Cluster II 中重复基因对底物选择性不同,对挥发性化合物偏好一致,但对非挥发性化合物(尤其是激素)偏好不同。
5. G 组 Cluster III 中重复驯化基因 CSS0030265 和 CSS0020241 表现出保守的耐寒性但耐旱性分化
Cluster III 中的重复驯化基因也可能存在功能差异,选择 CSS0030265(UGT3)和 CSS0020241(UGT2)作为 Cluster III - 1 和 III - 2 的代表。对重组蛋白 UGT2 和 UGT3 的酶活性测定表明,UGT2 对 HMF 催化活性最高,且能在体外糖基化紫苏醇和 HMF 产生相应的 O - 葡萄糖苷(图5 A);UGT3 对植醇催化活性最高,能在体外糖基化植醇产生植醇 - O - 葡萄糖苷(图5 B)。这表明 Cluster III 中受人工选择的重复基因对在底物选择上存在差异,间接影响了茶树香气成分的多样性。
讨论
本研究 Discussion 部分主要讨论了以下内容:
研究思路
本研究以探究茶树中尿苷二磷酸依赖型糖基转移酶(UGT)基因家族的进化与功能为核心,旨在揭示其对茶树品质和耐寒性的影响机制。首先,通过对 28 种植物及不同茶树品种的 UGT 基因家族成员进行鉴定、分类和系统发育分析,明确了 UGT 在茶树中的扩张和收缩模式。接着,针对特定的 G 组和 H 组 UGT,深入研究其基因复制事件、表达模式及功能分化。对于 G 组,分析了不同基因簇在茶树生长发育、应对非生物胁迫和香气形成中的作用,以及自然和人工选择对其的影响;对于 H 组,探讨了其在茶树抗病中的潜在机制。最后,综合各项研究结果,阐述了 UGT 基因家族在茶树适应环境变化过程中的重要意义,为茶树的品质改良和抗逆育种提供理论依据。
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通讯作者:
Chuankui Song (sckfriend@163.com), Enhua Xia (xiaenhua@gmail.com), Wilfried Schwab (Wilfried.Schwab@tum.de) 主要作者: Jingming Wang, Yutong Hu, Danyang Guo, Ting Gao, Tianqi Liu
作者单位:
1. State Key Laboratory of Tea Plant Biology and Utilization, Anhui Agricultural University, 130 Changjiang Ave W., Hefei, Anhui 230036, People’s Republic of China.
2. International Joint Laboratory on Tea Chemistry and Health Effects, Anhui Agricultural University, 130 Changjiang Ave W., Hefei, Anhui 230036, People’s Republic of China.
3. Institute of Health Sciences and Technology, Anhui University, 111 Jiulong RD., Hefei, Anhui 230601, People’s Republic of China.
4. Biotechnology of Natural Products, Technische Universität München, Liesel-Beckmann-Str. 1, 85354 Freising, Germany.
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