MPB | 扬大林淼组-瘤胃内容物样本中有机酸的定量分析 (高效液相色谱)

学术   教育   2024-10-26 07:01   广东  

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瘤胃内容物样本中有机酸的定量分析 (高效液相色谱)

 Quantitative Analysis of Organic Acids in Samples of Rumen Content (HPLC)

王阔鹏1吉慧敏1程志强1,林淼1, *

1动物科学与技术学院,扬州大学,扬州,江苏省

*通讯作者邮箱linmiao@yzu.edu.cn


引用格式:王阔鹏, 吉慧敏, 程志强, 林淼. (2021). 瘤胃内容物样本中有机酸的定量分析 (高效液相色谱). // 微生物组实验手册. Bio-101: e2003682. DOI: 10.21769/BioProtoc.2003682.

How to cite: Yunyun Gao, Kai Peng, Defeng Bai, et al. 2024. The Microbiome Protocols eBook initiative: Building a bridge to microbiome research. iMeta 3: e182. https://doi.org/10.1002/imt2.182


摘要:反刍动物通过瘤胃微生物发酵饲粮中的碳水化合物产生大量的有机酸,主要为挥发性脂肪酸,这些有机酸不仅起到了维持瘤胃内环境稳态的作用,而且反映了个体能量代谢和饲粮发酵类型,因此准确检测瘤胃液有机酸各成分含量对评定饲料营养价值及进一步提高反刍动物能量转化效率具有重要意义。本文介绍了一种利用高效液相色谱法(High Performance Liquid Chromatography,HPLC)测定瘤胃发酵样品中的有机酸含量。样品前处理方法利用氢氧化钙 [Ca(OH)2] 和硫酸铜 (CuSO4) 溶液去除样品中的蛋白和糖类高效液相色谱法仅要求样品能制成溶液,不受样品挥发性的限制,可分离热不稳定和非挥发性的等各分子量范围物质。与试样预处理技术相配合,HPLC能达到的高分辨率和高灵敏度。此方法还可用于检测瘤胃液及发酵样品中的乳酸、琥珀酸的含量。


关键词有机酸,液相色谱,体外发酵,瘤胃液


材料与试剂

1.枪头 (1000,200和10 μL)

2.离心管2 mL

3.螺口瓶 (250 mL)

4.锥形瓶 (500 mL)

5.容量瓶 (500 mL)

6.量筒 (500 mL)

7.超纯水

8.烧杯 (4 L)

9.玻璃棒

10.封口膜

11.滤膜 (0.2 μm)

12.氢氧化钙 (国药集团化学试剂有限公司,中国,分析纯)

13.硫酸铜 (国药集团化学试剂有限公司,中国,分析纯)

14.巴豆酸 (Macklin,色谱纯)

15.浓硫酸 (H2SO4,沪试,优级纯)

16.乙二胺四乙酸 (阿拉丁,色谱纯)

17.琥珀酸 (阿拉丁,色谱纯)

18.乳酸 (阿拉丁,色谱纯)

19.C1-C6 (阿拉丁,色谱纯)

20.氢氧化钙溶液 (见溶液配方)

21.硫酸铜溶液 (见溶液配方)

22.EDTA溶液 (见溶液配方)

23. 混合标准酸溶液见溶液配方)

24. 标样有机酸浓度 (见溶液配方)


仪器设备

1.高效液相色谱仪 (Waters 1525)

2.磁力搅拌器 (上海雷磁 JB-2A)

3.离心机 (Eppendorf 5810R)

4.真空泵 (上海亚荣 YR-PTB)


实验步骤

一、样品前处理制备

1.将1.5 mL的体外瘤胃培养(参照Menke1979等体外瘤胃发酵方法)或过滤瘤胃液(直接从瘘管牛/羊瘤胃中取出瘤胃液经四层纱布过滤所得)样本移入2.0 mL的离心管中,离心 (12,000 x g5 min,4 °C)。

2.吸取 600 μL 上清液,转移到新的 2.0 mL 离心管中,加入600 μL 氢氧化钙溶液和300 μL硫酸铜溶液,涡旋混匀,放置-20 °C冰箱冷冻SiegfriedHuckermann,1984)

3.解冻试管,离心 (12,000 x g,10 min,4 °C)

4.转移1000 μL的上清液到空的2.0 mL的离心管中 (含有28 μL的浓硫酸)混匀,-20 °C冷冻。

5.再次解冻试管后,重复冷冻一次,使溶液沉淀充分析出

6.解冻试管,离心 (12,000 x g,10 min,4 °C)

7.转移 800 μL 上清液到高效液相色谱小瓶中,待测。


二、高效液相色谱条件Weimer, et al., 1991; Njokweni et al.,2019

1.色谱柱:Rezex RHM Monosaccharide 7.8 × 300 mm column (00H0132-K0, Phenomenex)

2.溶剂:EDTA

3.流速:0.7 mL/min

4.柱温:45 °C

5.进样量:50 μL

6.检测器:UV/Vis检测器 (220 nm)


三、有机酸浓度的计算

通过标准样品和内标巴豆酸各自的浓度 (或峰面积) 计算出乙酸、丙酸等有机酸的相对校正因子,然后根据乙酸、丙酸等酸的浓度与其峰面积成正比计算出样品中有机酸的浓度。

例如:求体外瘤胃发酵样品中丁酸浓度。

通过上样分析我们已知标样中的内标巴豆酸峰面积为800,丁酸峰面积为400;样品中内标巴豆酸峰面积为1000,丁酸峰面积为200

相对校正因子:f=CA内标/W内标A=10×800/10×400=2

C :标样中组分丁酸的浓度

W:标样中内标物的浓度

A内标 :标样中组分丁酸的峰面积

A :标样中内标物的峰面积

丁酸浓度(mM= w内标fa/a内标=10×2×200/1000=4mM/L

w内标 :待测样品中内标物的浓度

f :组分丁酸的校正因子

a :待测样品丁酸的峰面积

a内标 :待测样品内标物的峰面积

有机酸重现率:将某有机酸(如乙酸)连续上样几次,测定其峰面积值,利用某酸峰面积值和内标峰面积值计算其重现率。


结果与分析

各组分出峰时间见下表1。


表1. 有机酸出峰时间

有机酸

出峰时间,min

琥珀

10.9

乳酸

11.9

甲酸

12.6

乙酸

13.8

丙酸

16.5

异丁酸

18.8

丁酸

20.5

异戊酸

24.0

巴豆酸

25.4

戊酸

29.5

己酸

49.7

在实验中,如果不需戊酸盐和己酸盐数据指标,可在30分钟结束运行。


溶液配方

1.氢氧化钙溶液

称取52.9 g Ca(OH)2,放入250 mL螺口瓶中加入磁力搅拌子和200 mL超纯水,将瓶中溶液混匀。当分配试剂时,使用磁力搅拌器,以保持吸取均匀的浆液。

2.硫酸铜溶液

称取50.0 g CuSO4 ·5H2O加入500 mL三角瓶中,400 mL超纯水溶解,加入2.0 g巴豆酸,充分溶解后,定容于500 mL容量瓶中。

3.EDTA溶液

1.60 mL浓硫酸、0.40 g乙二胺四乙酸,3.5 mL超纯水溶解在4 L烧杯中。在加热板加热,然后冷却过夜,以完全溶解EDTA。用超纯水将冷却的溶液稀释到4 L,利用真空泵过膜 (0.2 μm)将滤液转移到HPLC储存瓶中。

4.有机酸标准溶液(见表2)

表2. 有机酸标准溶液

琥珀

10mM

乳酸

10mM

甲酸

10mM

乙酸

10mM

丙酸

10mM

异丁酸

10mM

丁酸

10mM

异戊酸

5mM

巴豆酸

10mM

戊酸

10mM

己酸

10mM

118.1 mg

75.1μL

37.7μL

57.3μL

74.6μL

92.8μL

91.8μL

54.5μL

84.6μL

108.4μL

124.9μL

:有机酸标准样品定容在100 mL容量瓶中


致谢

1.本研究得到了国家现代农业产业技术体系 (CARS-36),江苏省高校优势学科建设自主工程项目资助

2.Lin, M., Dai X. X., Weimer P. J. (2019). Shifts in fermentation end products and bacterial community composition in long-term, sequentially transferred in vitro ruminal enrichment cultures fed switchgrass with and without ethanol as a co-substrate. Bioresource Technol 285: 121324.


参考文献

1.Menke, K. H., Raab, L., Salewski, A., Schneider, W. (1979). The estimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feedingstuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. J Agr Sci 93(1): 217-222.

2.Siegfried, V.R., Huckermann, H., S.G. (1984). Method for the determination of organic acids in silage by high perfomance liquid chromatography. Landwirtsch Forsch 37: 298-304.

3.Weimer, P.J., Shi, Y., Odt, C.L. (1991). A segmented gas/liquid delivery system for continuous culture of microorganisms on solid substrates, and its use for growth of Ruminococcus flavefaciens on cellulose. Appl Microbiol Biotechnol 36: 178-183.

4.Njokweni, G. S., Weimer, P. J., Warburg L., Botes, M., van Zyl, W. H. (2019). Valorisation of the invasive species, Prosopis juliflora, using the carboxylate platform to produce volatile fatty acids. Bioresource Technol 288 : 121602.

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