肝脏具有巨大的再生潜力。慢性或严重的肝损伤,包括肝纤维化和非酒精性脂肪性肝炎(NASH),伴随着胆管的病理增殖或增生,被称为胆管反应。这些胆管反应细胞表达中间肝胆marker基因,并从门静脉周围区域扩展到周围实质组织,这代表了变性肝前体细胞(LPCs)的活化。最近,人们开始关注在肝损伤 (尤其是晚期肝病) 中诱导的LPCS在胆管反应中的的确切来源和作用。文章题目:CD24+LCN2+liver progenitor cells in ductular reaction contributed to macrophage inflammatory responses in chronic liver injury本次公众号,纽科生物解读2023年10月发表Cell&Bioscience杂志的项目文章,介绍有关在肝损伤背景下LPC在胆管反应中的相关研究,该研究中转录组测序和单细胞数据生信分析由纽科生物提供。CD24+CK19+/CD24+SOX9+肝脏驻留细胞(resident liver cells)在慢性肝损伤后的胆管反应(ductular reaction, DR)中被激活和扩增。然而,这些细胞在肝损伤中的来源和功能仍存在争议。目前的研究将基因谱系追踪与体外小分子重编程相结合,确定了来自肝实质(parenchymal)组织和非实质(non-parenchymal)组织的肝前体细胞(LPCs)。本项研究中发现,CD24+LCN2+LPCs构成了不断扩大的胆管反应,并在慢性肝损伤中促成了巨噬细胞介导的炎症。该研究突显了不同来源的LPCs的作用,并揭示了以LPCs为靶点治疗慢性肝病的可能性。
图1:CD24+LCN2+LPCs作用
位于成人肝脏赫林管的细胞被认为是驻留LPCs,它们表达胎儿肝细胞和胆道上皮细胞(BECs)的marker基因,在慢性损伤过程中可能生成肝细胞和胆管细胞。最近的研究表明,肝细胞和胆管上皮细胞都有可能在损伤后分裂和相互转化。硫代乙酰胺诱导的肝损伤或遗传性肝细胞增殖受损。研究发现,体外培养的Cd24a+Lcn2+LPCs移植会通过LCN2引起巨噬细胞的强烈反应,从而加剧肝功能异常。这些发现揭示了肝细胞浆毒性,有助于推进基于LPC的慢性肝病治疗。从肝实质细胞和非实质细胞中生成CD24+肝前体细胞并确定其特征
CD24+是上皮干细胞 前体细胞的重要标志,通过控制增殖和分化之间的平衡来调节同种细胞的更新。在肝纤维化的临床样本中,CD24+CK19+/CD24+SOX9 + 胆管反应细胞大量存在于胆管反应区域,表明胆管反应细胞的活动和扩张。同样在CCl4诱导的肝损伤后,对NPCs的单细胞转录组测序数据分析发现了表达SOX9/CK19/HNF1B/FOXA2 /ALB/ASS1的可选性CD24+LPCs细胞亚群。这些发现证实了推测的LPCs存在于胆管反应中。所有3种类型的 LPCs在第5周期均生长为连续的单层细胞。EdU结合测定和 Ki67染色表明,在TEM中培养的所有LPCs都有相似的分裂率(division rate)。免疫荧光染色和FACS分析表明,所有三种LPCs的SOX9、CD24 和CD44 表达水平相似,但CD34、CD45和CD90 表达水平不同。进行了基因表达分析(纽科生物提供生物信息学分析),比较了LPCs与Kupffer细胞(KCs)、肝星状细胞(HSCs)、肝窦状内皮细胞(LSECs)、肝细胞(HCs)和胆道上皮细胞(BECs)的基因表达模式,以排除这些细胞可能造成的污染(图2)它值得注意的是,所有三种类型的LPC都表达了许多干/前体细胞marker基因,如CD44、Hnf1b、Foxa2和Sox9。总之,这三种来自不同肝脏来源的培养LPC是在TEM中培养生成的。
RNA-seq结果表明,HepLPCs和BecLPCs继续表达肝胆系基因。相反,以分离肝细胞和BECs为对照,从驻留LPCs衍生的LPCs既不表达包括 Cyp1a2 、Hnf1a在内的肝细胞系marker基因,也不表达胆管相关基因 Epcam(图3)。在这些marker基因物中,HNF1α和EpCAM 在三种 LPCs 中的表达已通过FACS 分析得到验证。此外,GESA 分析表明,Wnt 通路的基因在 HepLPCs中富集,而Notch 通路的基因在BecLPCs中富集,这证实了它们分别独立来源于肝系和胆系。
图3. 热图显示了在三种培养的LPCs、HC和BEC中已知的肝细胞和胆道细胞基因表达情况图4. 通过流式细胞仪评估在三种培养的LPCs中HNF1A和EpCAM阳性细胞的定量
体外培养的Cd24a+Lcn2+ LPC表达谱从驻留LPCs中提取的LPCs与在胆管反应中发现的体内LPCs相似
通过转录组测序与生物信息学分析找到不同来源的LPC在基因表达、功能富集、相互作用方面的差异性(纽科生物提供)。1) 转录组测序生成了三种培养LPC的转录组图谱,并进行了差异基因表达分析,以确定特异性marker基因。共发现 533个基因具有BecLPC特异性,657个基因具有HepLPC特异性,266个基因具有驻留LPC特异性(图5)。2) GO和KEGG分析揭示了一些功能差异。BecLPCs差异表达的基因主要集中在Wnt信号转导的负调控方面,而HepLPCs差异表达的基因主要集中在P450代谢和Notch信号转导的负调控方面(图6)。在每组特定基因中,发现Epcam、Krt17、Lgr6、Ltbp2和Onecut2在BecLPCs中上调,而Rbp4、Hnf1a、Hnf4a、Lgals2和Stra6在HepLPCs中上调。上皮细胞增殖在所有三种LPCs中都得到了富集,但值得注意的是,先天免疫和炎症通路、HIF-1以及氧化应激和代谢过程在 HepLPCs 中也得到了富集。 3)GSEA验证了这些LPCs中 HIF-1、IL17、JAK/STAT 和 NF-kB通路的显著富集。利用STRING数据库,确定LCN2在这些体外培养的驻留LPCs特异基因集中高度表达,并与其他免疫和炎症相关基因深度相关,尤其是Parp14、Oas2、Nrp2和Nlrc5(图7)。图6. GO 和 KEGG 分析
图7. 韦恩图
根据这些用于区分LPC来源的潜在marker基因组,比较了接受DDC饮食的动物肝细胞衍生增殖导管(hepPDs)与培养的LPCs的基因表达谱(图8)。根据特定marker基因物的表达生成的热图显示,DDC-hepPDs中这些marker基因物的表达水平与培养的 LPCs 相当。此外,还观察到 DDC- hepPDs与HepLPCs而不是Cd24a+Lcn2+LPCs或BecLPCs的聚类更为接近,这表明体外培养的 LPCs 与体内 LPCs 的状态相关。根据这种相关性,还比较了体内CCl4处理后分离的Cd24a+LPCs(CCl4-LPC)与体外培养的负Cd24a+Lcn2+LPCs的表达谱(图8)。同样,热图显示 CCl4-LPC与Cd24a+Lcn2+LPCs的相互关系更为密切。对CCl4处理组和正常组特异性marker基因物的定量PCR分析进一步证实了这些结果。这些发现表明,肝胆管反应中的内源性Cd24a+Lcn2+LPCs可能来源于原有的驻留LPCs。图8. 表达谱
单细胞RNA测序和驻留LPCs衍生的Cd24a+Lcn2+LPCs空间定位
胆管反应的程度与NASH等一系列致病原因造成的疾病严重程度呈正相关。饲喂富含脂肪、果糖和胆固醇(FFC)饮食导致NASH 的小鼠肝脏也会差异表达一些Cd24a+Lcn2+LPC特异性基因(图 9)。值得注意的是,在CCl4诱导的肝纤维化模型和胆碱缺乏性 L-Amino 酸定义的高脂饮(CDAHFD)诱导的NASH模型中,LCN2也被证明在胆管反应细胞中上调。此外,这些肝损伤更严重的模型通过qPCR显示出更高的 LCN2和CD24表达,尤其是在NASH模型中。图9. NASH 的小鼠肝脏也会差异表达一些Cd24a+Lcn2+LPC特异性基因CD24+LCN2+LPCs可在体外和体内引起强大的巨噬细胞反应
与CCl4处理的小鼠相比,CDAHFD喂养的小鼠中有更多的LCN2阳性肝细胞。在NASH模型中肝细胞衍生的LCN2可能会妨碍研究LPCs衍生的LCN2对抗肝纤维化的作用。因此,本项研究中将GFP/荧光素酶marker基因的CD24+LCN2+LPCs(2×106 )移植到CCl4处理的小鼠体内(图10a),并将HepLPCs视为对照组。移植24小时后,通过活体成像可以发现CD24+LCN2+LPCs和HepLPCs 。虽然HepLPCs 移植减轻了肝损伤,但与对照组小鼠相比,CD24+LCN2+LPCs移植在第40天增强了H&E、天狼星红、CK19 和α-SMA染色下的胆管反应和肝纤维化,并提高了ALT和AST 的血清水平(图10b-d)。这些结果表明,CD24+LCN2+LPCs会加剧而非缓解肝损伤。图10.CD24+LCN2+LPCs的移植通过浸润巨噬细胞加重了慢性纤维化和炎症LCN2可招募炎症细胞并引发炎症反应。同样,移植高表达Lcn2的 CD24+LCN2+LPCs会增强F4/80+巨噬细胞和中性粒细胞的组织浸润,MPO 染色显示了这一点(图10b)。图10c中,利用sc-RNA seq的CellChat工具包研究了Cd24a+Lcn2+细胞与其他NPC之间的细胞间作用网络,结果显示 Cd24a+Lcn2+细胞与M1巨噬细胞的相互作用最强。(图10e,f)。体外透孔试验表明,CD24 + LCN2 +LPCs对骨髓源性巨噬细胞(图10g,h)的化疗作用增强。此外,用CD24+LCN2+LPC条件培养基培养的BMDMs表达了更高水平的M1 marker基因,包括IL-1b、IL-6 和诱导型一氧化氮合酶(图10i、j),而用HepLPC条件培养基培养的BMDMs则表达了更高水平的M2 marker基因ARG1。在CD24+LCN2+LPCs中沉默Lcn2基因可消除对巨噬细胞的趋化性旁分泌作用,并阻止M1 marker基因基因的上调(图10k、l)。总之,补充CD24+LCN2+LPCs可增强巨噬细胞反应,这可能会加剧慢性肝损伤。单细胞图谱揭示了人类肝硬化肝脏中的CD24+LCN2+LPC-巨噬细胞-细胞通讯网络
肝硬化肝病中的NPC类型数据集被划分成群,并使用已知系谱marker基因的特征进行注释。CD24、LCN2和SOX9高表达的细胞亚群与上皮细胞相关(图11a),与巨噬细胞的相互作用尤为明显(图11b)。纽科生物提供单细胞数据分析,用于揭示LPC-巨噬细胞细胞通讯网络。无监督UMAP 分析确定了12个巨噬细胞亚簇(sc-0-11),其sc-10/6/2/5/7在肝硬化肝脏中最为富集(图11c)。巨噬细胞转录组分析显示,与其他亚簇相比,sc-6的促炎症基因和促炎症表面标志物的上调率最高(图11d、e)。对NF-kB靶基因的定量分析显示,在所有12个亚群中,sc-6/1/5/7的得分较高(图11f、g)。sc-6和sc-7亚群具有增强的促炎表型,而sc-6/1/5/7亚群则没有。与CD24+LCN2+LPCs的相互作用最强(图 11h)。最后,随着肝纤维化发展为肝硬化,胆管反应也会加重,免疫荧光染色显示肝组织中被更多巨噬细胞包围的 LCN2+LPCs数量不断增加(图12i)。因此,人类肝脏NPCs单细胞图谱和免疫荧光染色证实,CD24+LCN2+ LPCs参与了胆管反应,通过巨噬细胞招募加剧了炎症和纤维化。
图11 dPspCas13b-YTHDC1位点特异性招募KDM3B进行H3K9me2去甲基化
上述研究证明:CD24+LCN2+LPCs在慢性肝病期间被激活,促进了巨噬细胞的浸润和极化,并加剧了肝脏炎症和纤维化。这些发现揭示了不同来源的LPCs的不同作用,可能有助于确定治疗慢性肝病的LPCs。
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