中国药大董廖斌组Chem Sci | 全氢菲类杂萜的生物合成途径解析

学术   2024-12-02 12:02   浙江  

摘要

近日,中国药科大学董廖斌课题组首次系统解析了细菌来源的杂萜化合物 atolypene A 的生物合成途径,并揭示了一类非典型萜烯合酶的全新催化机制,为探索杂萜类天然产物生物合成途径的多样性提供了理论依据和新思路。相关研究以题为Biosynthesis of a bacterial meroterpenoid reveals a non-canonical class II meroterpenoid cyclase的论文发表在期刊《Chemical Science》(DOI: 10.1039/D4SC06010E)上。中国药科大学董廖斌教授为本文唯一通讯作者,王增援博士为本文的独立第一作者。本研究得到了美国佛罗里达大学Jeffrey Rudolf课题组的合作支持,并获得国家自然科学基金面上项目、国家青年人才项目以及江苏省杰出青年基金项目等资助。

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遇见/内容

杂萜类天然产物是一类由萜类与非萜类生物合成途径杂合而成的特殊分子,广泛分布于植物、真菌和细菌中。这类化合物以其结构的多样性和显著的生物活性,成为药物开发中的重要资源。在真菌中,杂萜类化合物(如pyripyropene Aandrastin Atropolactone B)已展现出巨大的药用潜力,其生物合成途径相对清晰,通常包含异戊烯基化、环氧化和环化三步连续反应。然而,细菌来源的杂萜化合物因其稀有性和独特的化学结构,成为寻找新药源分子的潜在宝库,但其生物合成机制尚未被系统解析,尤其是全氢菲类杂萜化合物(如brasilicardin Aphenalinolactone Atiancilactone A)的生物合成途径仍然模糊,这极大限制了其在药物开发和分子合成中的应用潜力。

1:代表性细菌全氢菲类杂萜化合物


董廖斌课题组以全氢菲类杂二倍半萜atolypene A1)为研究对象,系统解析其生物合成途径。基于先前研究报道,atolypene A在模式链霉菌 Streptomyces albus J1074中异源表达的产量极低(约0.2 mg/L),限制了对其生物合成途径的深入解析。为了提高1的产量,作者对来源于放线菌 Amycolatopsis tolypomycinaato生物合成基因簇(BGC)进行了优化改造。通过为每个基因设计独立的启动子、核糖体结合位点(RBS)和终止子,确保基因的高效表达。同时,以香叶基法尼基合酶基因atoC为基础,将其他基因表达单元与之整合,构建出多种不同的基因组合模式(2A)。优化后的基因簇成功将1的产量提升至1.9 mg/L,并首次发现了两个新化合物,atolypene C2)和atolypene D3),其产量分别达到1.2 mg/L2.1 mg/L,总产量较优化前提高了近15倍(2B)。


2Atolypene A的生物合成分析。(A) 生物合成基因簇ato(B) 不同基因组合的工程菌株代谢产物分析;(C) 已分离的代谢产物化学结构;(D) 化合物212的晶体结构;(E) 含有基因atoCDEFS. lividansDLW1013的代谢产物分析。


为了解析1的生物合成途径,作者在模式链霉菌中异源表达了不同的基因组合。结果显示,atoCDatoCE表达组合均未能检测到产物的生成,表明 1 的初始生物合成步骤可能不同于真菌的传统路径(2B)。当atoCatoF共表达时,产生了两种新产物452B2C)。其中化合物4的结构类似于香叶基法呢醇(GFOH),区别在于4的一端含有邻二羟基,推测是环氧化酶AtoF催化产生的环氧基团水解形成。这表明4的环氧焦磷酸形式是1生物合成关键中间体。进一步研究发现,当atoCatoDatoF共同表达时,产生了一系列线性杂萜中间体6102B2C),其中61尚未发生骨架环化的关键中间体。该结果表明环氧化修饰先于由atoD编码的异戊烯基转移酶所催化的碳骨架延伸,从而为揭示这一独特的杂萜生物合成顺序提供了关键实验证据。随后,作者将四个基因atoC−F异源表达于S. lividans SBT18中,产生了三个新的环状产物1113,其中C3位为β-OH结构(2C2E该结果表明,atoC−F共表达足以完成1在链霉菌体内的生物合成。此外,通过体内喂养和体外实验,P450AtoA不参与atolypenes的生物合成;而氨基转移酶AtoB在磷酸吡哆醛和丙酮酸钠存在的条件下,可催化底物6生成C22处含酮基的产物14;在 L-Ala 存在的条件下,AtoB 还可将产物14可逆性生成6


3Atolypene A的生物合成途径


为了验证环化酶AtoE的催化功能,作者在S. albus J1074中成功表达了AtoE蛋白。鉴于AtoE的真实底物为环氧化合物,作者首先通过化学方法,从分离得到的邻二醇化合物出发,成功合成环氧底物10a。随后,将10aAtoE 共孵育,结果显示底物10a被完全转化为产物13。这一结果表明,AtoE通过质子化环氧底物,催化了杂二倍半萜的环化反应( 4A)。为进一步解析AtoE的催化机制,作者利用AlphaFold2 预测其三维结构及潜在活性位点(图 4B)。不同于典型II型萜烯合酶的DxDDTxx保守基序,AtoE拥有非典型的 xxxE314TAE催化基序,其整体结构呈哑铃状,包含βλ两个结构域,与已知典型II型萜烯合酶(如角鲨烯环化酶SHC和氧化角鲨烯环化酶OSC)具有较高相似性。通过分子对接分析,AtoE中的E314残基与底物10a的环氧基团之间的距离为3.8 Å,提示E314可能作为质子供体参与催化反应。定点突变实验进一步证实了这一推测:E314A 突变体完全丧失催化活性,验证了E314 在环化反应中的关键作用。此外,定点突变实验还表明,芳香族残基(如W211Y303W408W505)在底物结合和催化过程中也起到了重要作用。

4AtoE的功能表征。(A) AtoE催化10a环化生成13(B) AtoE模型中预测的底物结合位点。(C) AtoE突变体的相对活性。


作者利用生物信息学工具,分析了细菌中非典型IIMTCsMeroterpenoid Cyclases)酶家族的多样性。考虑到不同杂萜类化合物(如atolypenesbrasilicardinstiancilactones等)在化学结构上的显著差异,推测MTCs可分为不同类群。通过以AtoE为搜索基因,作者在NCBI数据库中识别了103个非冗余的MTCs基因,并构建了最大似然法系统发育树。结果显示,这些MTCs可分为七个主要分枝,表明它们可能催化形成不同的骨架(5A)。进一步的保守基序分析发现,分枝IV几乎完全保留了“xxxExxE”基序,而部分分枝(分枝VIVII)序列差异较大(5B)。随后作者从七个分枝中挑选了代表性MTCs进行体外验证。结果显示,所有MTCs均能启动环化反应,其中SerTC的活性最强,能够将底物10a高效转化为atolypene H (15),并通过结构解析揭示两者在去质子化步骤中的差异。此外,研究还发现,包含这些MTCs的生物合成基因簇(BGCs)除了核心基因外,还含有一些修饰酶(如甲基转移酶、磺基转移酶和非核糖体肽合成酶等),表明这些BGCs能够合成更为复杂的杂萜天然产物。


5:细菌MTCs系统发育分析。(A) 细菌中AtoE同源物的最大似然树。(B) 细菌MTCs各分枝保守基序分析。(C) SerTC与底物10a体外反应。


综上所述,董廖斌课题组以atolypene A为研究对象,系统揭示了一条全新的细菌杂萜生物合成途径。这条途径通过精细调控环氧化、异戊烯基化和环化等步骤,打破了传统的“prenylation-first”模式,拓展了杂萜类天然产物的生物合成策略。研究还深入阐明了非典型II型萜烯合酶在杂萜骨架构建中的催化机制,并发现了这一酶家族在基因组中的广泛分布。该研究不仅推动了杂萜类天然产物生物合成理论的发展,也为开发新型杂萜骨架分子提供了新的思路和酶学工具。

文章详情:Zengyuan Wang, Tyler A. Alsup, Xingming Pan, Lu-Lu Li, Jupeng Tian, Ziyi Yang, Xiaoxu Lin, Hui-Min Xu, Jeffrey D. Rudolf and Liao-Bin Dong*. Biosynthesis of a bacterial meroterpenoid reveals a non-canonical class II meroterpenoid cyclase. Chem. Sci2024, DOI: 10.1039/D4SC06010E.

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遇见/致谢

感谢董廖斌教授课题组对本号的支持!

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