你的抗体标记后离心变黑,是什么原因?

文摘   2024-11-08 11:31   广东  

                                            

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胶体金标记抗体后,离心变黑,是什么原因呢,小白的你请认真看完!可能原因和解决方法如下,如有不对地方多多指教!


一、可能原因

1.离心操作影响

1.1离心速度和时间:胶体金表面存在着一些保护基团,这些保护基团就像是一层保护膜,防止金颗粒之间过度靠近而发生团聚。当进行离心操作时,如果离心速度过高,就如同对胶体金施加了一股强大的外力。这股外力会破坏胶体金表面保护基团与金颗粒之间的微妙平衡,使得它们逐渐从金表面脱落而发生聚沉。而长时间的离心同样会带来该问题, 离心的温度也不能太高!

1.2离心设备和容器的清洁度:离心操作离不开离心管等容器。然而,这些容器的清洁度往往容易被忽视,但却对实验结果有着不可小觑的影响。当这些不干净的离心管用于盛装胶体金时,杂质会干扰胶体金颗粒表面的电荷分布或者与金表面的保护基团发生反应,从而使胶体金颗粒更容易相互吸引,胶体金会直接变深紫甚至变黑。


2.标记过程中的因素

2.1pH值的影响:胶体金和抗体在不同的pH值环境下,其表面电荷分布会发生变化。胶体金表面带有一定的电荷,抗体分子也具有特定的电荷分布,而pH值的高低会影响这些电荷的性质和数量。当pH值没有调节到最佳标记条件时,胶体金和抗体之间的静电相互作用就会受到干扰。如果pH值较低,这意味着溶液中的氢离子浓度较高。过多的氢离子会与胶体金和抗体表面的电荷发生相互作用。导致其表面电荷被中和或者改变,使得胶体金颗粒之间的斥力减小,从而容易发生聚集。而对于抗体而言,较低的pH值会影响其活性位点的电荷状态,使其与胶体金的结合能力下降。这样一来,在离心过程中,未标记好的胶体金或者抗体就无法维持稳定的分散状态,而是会相互聚集在一起。

2.2 抗体的量:如果抗体用量过低,胶体金表面无法被抗体完全覆盖。这些位点就会有一部分暴露在外。在离心过程中,由于缺乏足够抗体的保护,胶体金颗粒之间的相互作用就会增强,它们就会逐渐靠近并发生聚集现象,表现为变黑。相反,当抗体用量过高时,过多的抗体分子会在胶体金表面形成拥挤的状态。这种拥挤会产生空间位阻效应,阻碍胶体金与抗体之间正常的结合。当进行离心操作时,导致胶体金和抗体的聚集,同样会出现变黑的情况。

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二、解决措施

1.调整离心参数

降低离心速度并合理缩短离心时间是有效的尝试方法,并进行多次离心。由于不同的产品项目可能对离心力的耐受程度不同,所以需要通过逐步摸索来确定最佳的离心参数。例如,可以先从较低的离心速度开始尝试,如原本采用15000r/min的高速离心,可以先降低到10000r/min进行试验。在这个过程中,需要密切观察离心后的效果。这包括观察离心后胶体金标记抗体的颜色是否发生变化,是否达到了去除游离蛋白等离心目的。如果没有出现变黑现象,并且能够满足离心的预期效果,那么这个离心速度可能就是比较合适的。如果在10000r/min时效果不理想,可以进一步降低离心速度,如8000r/min或者更低,直到找到既能实现离心目的,又不会破坏胶体金标记抗体稳定性的最佳离心速度。同时,对于离心时间也需要进行合理的调整。过长的离心时间可能会导致胶体金标记抗体的稳定性下降,所以可以根据不同的离心速度来相应地缩短离心时间。例如,在10000r/min的离心速度下,可以从原本的30分钟缩短到20分钟或者15分钟,然后观察离心后的结果。在清洗离心管时,可以使用超纯水多次冲洗。超纯水是一种纯度极高的水,几乎不含任何杂质,能够有效地去除离心管表面可能存在的灰尘、盐分等杂质。对于一些难以清洗的杂质,还可以进行浸泡清洗。例如,可以将离心管浸泡在含有适量清洁剂的溶液中一段时间,然后再用超纯水彻底冲洗干净。这样可以确保离心管内壁的杂质被彻底清除。除了离心管,与胶体金接触的其他容器和工具,如枪头,也需要进行清洁处理。枪头在吸取和转移胶体金溶液的过程中,如果不干净,可能会将杂质带入胶体金体系中。


2.优化标记过程

在标记前,可以通过小量实验进行预测试来确定最佳的pH值范围。这个预测试过程需要从不同的pH值范围进行尝试,例如在pH 7 - 9之间进行系统的实验。首先,准备一系列不同pH值的缓冲溶液,这些缓冲溶液的pH值可以精确地调节到7.0、7.2、7.5、8.0、8.5、9.0等不同的值。然后,分别在这些不同pH值的缓冲溶液中进行胶体金标记抗体的小量实验。在进行这些小量实验时,需要仔细观察和记录每个pH值下的标记效果。从宏观上看,可以观察标记后溶液的颜色、透明度等外观特征。如果标记效果良好,溶液应该是均匀、澄清且颜色正常的。如果之前的抗体用量导致离心变黑,就需要重新评估抗体的用量是否合适,并进行调整。可以通过进行梯度实验来确定最适合的抗体用量。首先,确定一个合理的抗体用量范围,例如在5 - 15微克每毫升之间。然后,在这个范围内,按照一定的梯度设置不同的抗体用量,如5微克每毫升、7微克每毫升、10微克每毫升、13微克每毫升、15微克每毫升等。对于每个设定的抗体用量,进行胶体金标记抗体的实验,并观察标记后离心的效果,观察离心后溶液的颜色是否变黑,如果没有变黑且溶液澄清均匀,说明这个抗体用量可能是合适的。胶体金质量也需要我们密切关注,在制备过程中,为了确保制备的胶体金质量符合要求,可以对制备的胶体金进行鉴定。可以检查其粒径大小,通过动态光散射仪等仪器准确测量胶体金颗粒的粒径分布。如果粒径分布均匀且在预期的范围内,说明金溶胶的质量较好。还可以检查胶体金的分散性,良好的分散性意味着胶体金颗粒在溶液中均匀分布,不会发生团聚现象。


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