突破ADC研发的三大瓶颈,戈沙妥珠单抗剑指晚期TNBC治疗升级

健康   2024-11-20 17:22   北京  





戈沙妥珠单抗(Sacituzumab govitecan,SG)是全球首创的靶向于Trop-2的新一代抗体偶联药物(ADC),在转移性三阴性乳腺癌领域(mTNBC)的III期ASCENT研究取得积极结果,促使其成为国内外指南推荐的mTNBC治疗方案之一。为进一步从药物作用机制(MOA)层面了解SG的药物优势,协助临床医生掌握此类药物的应用和管理,中国医学论坛报社特邀浙江省肿瘤医院王晓稼教授分享SG在Trop-2 ADC研发领域所突破的瓶颈问题。


专家简历



王晓稼 教授

博士,主任医师(二级),教授,博士生及博士后导师

浙江省免疫学会副理事长

浙江省肿瘤智能诊断和分子技术研究中心副主任

浙江省肿瘤诊治质控中心副主任兼乳腺癌质控专家委员会主任委员

中国临床肿瘤学会(CSCO)乳腺癌专家委员会副主任委员

中国抗癌协会乳腺癌专业委员会常委、医学伦理委员会常委

中华医学会心血管病分会肿瘤心脏病学组委员

浙江省医学会肿瘤化疗与生物治疗学分会主任委员

浙江省抗癌协会乳腺癌专委会主任委员

浙江省抗癌协会肿瘤心脏病学专委会名誉主任委员

浙江省抗癌协会肿瘤内科专委会前任主任委员

浙江省转化医学学会副会长兼精准医学分会会长


抗体偶联药物(ADC)素有“魔法子弹”之称,具有抗肿瘤靶向性和高效、低毒特征,其关键组成包括:针对靶点的高特异性和亲和力的抗体、高稳定性的连接子、高效性的小分子毒性载药。其中,靶点的选择至关重要,理想的靶点应中高表达于恶性肿瘤,而低或无表达于正常组织。

人滋养细胞表面糖蛋白抗原2(Trop-2)与肿瘤细胞的生长、侵袭和转移密切相关[1],在肺癌、胃肠道癌、乳腺癌、肾癌、子宫内膜癌、宫颈癌、卵巢癌等上皮性肿瘤中呈过表达[2],在皮肤、上消化道黏膜、眼表角结膜上皮等正常组织呈低表达[3]。在三阴性乳腺癌(TNBC)中,Trop-2中高表达比例则可达80%~90%[4]。此外,Trop-2的内化速率较高,研究显示Trop-2单抗2小时内可接近100%内化[5]。这些“先天优势”使得Trop-2成为mTNBC的理想治疗靶点。 

然而,ADC的研发设计面临三大挑战:如何克服实体瘤渗透问题、如何强化异质性肿瘤组织杀伤问题,以及如何减少靶向正常组织毒性和脱靶毒性。SG作为全球首创(First-in-class)的Trop-2 ADC,其药物机制特征很好解决了上述挑战,实现了Trop-2 ADC“从0到1”的跨越,已有III期ASCENT研究证实SG用于经治mTNBC患者带来的无进展生存期(PFS)和总生存期(OS)获益[6]。我们从MOA层面回溯SG,则不难发现其临床试验成功的合理性和必然性。





如何克服实体瘤渗透问题?

剂量、给药频率和连接子的优化





ADC类药物在实体瘤内的分布通常遵循Krogh圆柱模型,以血管为轴心,呈现“近多远少”的特征,距离血管越远,药物分布越少[7]。这是ADC研发需要克服的药物渗透性和分布限制的第一道“防线”。

图1 ADC类药物的Krogh圆柱模型示意图

另外两道“防线”则是结合位点屏障(binding site barrier,BSB)和抗原沉默(antigen sink)。BSB是在靶抗原表达水平较高时,ADC迅速与靠近血管的肿瘤组织结合并被内化,从而降低更深部组织药物暴露的现象,这种现象在Trop-2类内化较快的靶点中更加明显[8];抗原沉默则是靶抗原在正常组织表达,导致药物结合于正常组织,而肿瘤组织的药物暴露量降低的现象[9]

图2 ADC类药物的结合位点屏障和抗原沉默机制示意图

那么,SG是如何突破实体瘤的“三道防线”,提高对实体瘤组织的渗透性?

首先,剂量优化。

ADC的渗透性取决于单抗浓度,而单抗的组织渗透性为剂量依赖性。因此,在血管标记物荧光染色的临床前研究[10]结果提示,相较于5 mg/kg剂量,10 mg/kg的Trop-2单抗(hRS7),其肿瘤渗透率和均匀度更高。SG采用10 mg/kg高剂量,使其具有肿瘤组织高渗透率优势。

图3 高剂量SG具有更好的药物组织分布

其次,给药频率优化。

SG采用的给药频率是每周期2次给药,即第1天(D1)和第8天(D8)静脉输注,每周期21天。这样的给药频率是一种具有“D1近肿瘤、D8远肿瘤”的独特“打法”,即第1天给药时,SG可与血管近端的肿瘤组织靶抗原结合,同时促进第8天给药时,更多的药物向距肿瘤更深、距血管更远处分布。临床前研究显示,D1给药的小鼠模型(D1 SG 10 mg/k+D8 SG 5 mg/kg),D8药物距离血管更远;而D1没有给药的小鼠(仅D8 SG 5mg/kg),D8药物距血管更近[10]

图4 SG D1+D8高频给药具有更好的药物分布

再者,连接子优化。

适宜的“裸抗”增加,有助于增强ADC的肿瘤组织渗透性[11]。一项SG的人群药代动力学(popPK)研究[12]显示,10mg/kg用药30分钟后的“裸抗”比例为15.6%,1天后,这一比例可增至38.2%。SG“裸抗”比例的增加,主要由于其连接子CL2A为可水解连接子,水解速度较快;而且为酸敏感性连接子,在肿瘤酸性(pH 5-6)环境中的裂解速率是正常组织(>pH 6)的2倍以上,从而带来更多的非内化摄取[13]

图5 SG D1+D8给药可维持较高的抗体浓度




如何强化对异质性肿瘤的杀伤?

快速载药释放和双重“旁观者效应”





ADC的载药释放往往需要“快准狠”,因为缓慢的载药释放会降低肿瘤杀伤能力,也是耐药的潜在机制。

SG设计使用的是可水解连接子,水解速度通常快于酶解速度。临床前研究[11]对比了采用可水解连接子(CL2A)的SG和非特异性ADC、采用酶可裂解(CL2E)连接子的 ADC。三者中,SG所诱导的DNA损伤效果最显著,24小时达到DNA损伤标志物荧光强度最高值;而CL2E连接子的ADC载药释放速度较慢,DNA损伤信号强度显著低于SG。

连接子裂解后,具有膜穿透性的载药释放,能够对临近的Trop-2低表达或不表达的肿瘤发挥“旁观者效应”,而SG可以介导双重“旁观者效应”[14]。首先,没有发生内化的SG,因连接子的酸敏感裂解特性,在酸性环境的肿瘤细胞外也可裂解并释出载药,从而介导“空间旁观者效应(Spatial bystander effect)” ,即载药在肿瘤微环境释放并渗透至更广泛的肿瘤组织;再者,发生内化的SG,其载药可以从表达靶抗原的细胞内释放,并作用于邻近的靶抗原阴性的细胞,从而克服肿瘤靶抗原异质性对疗效的影响。

图6 SG的双重“旁观者效应”

基于连接子的快速裂解、高肿瘤渗透性以及双重“旁观者效应”,SG能够对不同Trop-2表达水平的肿瘤发挥杀伤作用,临床中也无需在SG治疗前检测Trop-2表达水平。




如何减少组织毒性和脱靶毒性?

中等毒性载药和半衰期优化带来的安全性提升





ADC药物的毒副作用主要有两大类,一类是由于非肿瘤靶向毒性或载药“脱靶”所导致的组织器官损伤,如间质性肺病(ILD)、眼毒性、口腔黏膜炎等;另一类是来自载药常见的细胞毒性作用,如骨髓抑制作用、神经毒性等。临床中,医生和患者对ILD的关注度较高,目前针对ILD的预防和处理经验也越来越成熟。与此同时,也需要注意眼毒性和口腔黏膜炎的发生和处理。由于Trop-2在角膜中表达和在维持视力方面的作用,而正常口腔、食道黏膜中也可中高表达Trop-2,因此,抑制Trop-2可能导致眼睛、消化道黏膜的毒性损伤。临床需做好不良事件的分级评估,必要时进行药物调整和多学科团队(MDT)会诊。 

临床试验中,SG几乎没有发生ILD/非感染性肺炎(任意级别事件发生率为0%),口腔黏膜炎、眼毒性的发生率也较低(≥3级事件发生率为2%和0)[6,15],这主要得益于SG所使用的连接子半衰期较短,仅为15.2小时(其他同类ADC的半衰期约为3~5天)[16-18],且载药的毒性强度为中等,二者能够降低SG在正常组织的暴露时间和毒性程度。至于中性粒细胞减少、贫血等血液毒性,大多数ADC均有一定的发生率,SG真实世界中的发生率则低于临床试验中的发生率[19];而且此类不良事件的临床处理经验较为丰富、易于管控。







总结







作为全球首创的Trop-2 ADC,SG通过剂量、给药频率、连接子、ADC半衰期与载药的四重优化,很好地解决了ADC药物研发应用的疗效和安全性问题。包括通过优化给药剂量和频率、优化连接子,增强了SG的肿瘤组织渗透性;基于连接子的快速裂解、高肿瘤渗透性以及双重“旁观者效应”,克服肿瘤异质性对疗效的影响;使用半衰期更短的连接子和中等毒性强度的载药,降低非肿瘤组织毒性和脱靶毒性。这些药物机制的优势,是SG成功应用于mTNBC临床治疗的重要基础,也将对未来的Trop-2 ADC研发更迭带来更多启发。



参考文献

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[3] The Human Protein Atlas. Access Date: 2024-10-28.

[4]Li Y, et al. In Real Life, Low-Level HER2 Expression May Be Associated With Better Outcome in HER2-Negative Breast Cancer: A Study of the National Cancer Center, China. Front Oncol. 2022;11:774577. Published 2022 Jan 17.

[5]Austin CD, De Mazière AM, Pisacane PI, et al. Endocytosis and sorting of ErbB2 and the site of action of cancer therapeutics trastuzumab and geldanamycin. Mol Biol Cell. 2004;15(12):5268-5282. doi:10.1091/mbc.e04-07-0591

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[8]Singh AP, Guo L, Verma A, Wong GG, Thurber GM, Shah DK. Antibody Coadministration as a Strategy to Overcome Binding-Site Barrier for ADCs: a Quantitative Investigation. AAPS J. 2020;22(2):28. Published 2020 Jan 14. doi:10.1208/s12248-019-0387-x

[9]Coats S, Williams M, Kebble B, et al. Antibody-Drug Conjugates: Future Directions in Clinical and Translational Strategies to Improve the Therapeutic Index. Clin Cancer Res. 2019;25(18):5441-5448. doi:10.1158/1078-0432.CCR-19-0272

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[11]Ponte JF, Lanieri L, Khera E, Laleau R, Ab O, Espelin C, Kohli N, Matin B, Setiady Y, Miller ML, Keating TA, Chari R, Pinkas J, Gregory R, Thurber GM. Antibody Co-Administration Can Improve Systemic and Local Distribution of Antibody-Drug Conjugates to Increase In Vivo Efficacy. Mol Cancer Ther. 2021 Jan;20(1):203-212.

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[19]Caputo R, Buono G, Piezzo M, et al. Sacituzumab Govitecan for the treatment of advanced triple negative breast cancer patients: a multi-center real-world analysis. Front Oncol. 2024;14:1362641. Published 2024 Mar 26. doi:10.3389/fonc.

2024.1362641.


本文由王晓稼教授审校


审批编号CN-TRO-0222

有效期至2026年12月31日

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