【J. Am. Chem. Soc.】冠状可降解脂质实现肺部选择性mRNA递送及体内肿瘤双模态成像

文摘   2024-11-28 11:23   北京  
近年来,mRNA药物因其独特的蛋白表达能力,在治疗遗传疾病、感染性疾病以及癌症等领域展现出巨大潜力。特别是在新冠疫情期间,mRNA疫苗的成功应用彰显了这一技术的广阔前景。然而,mRNA的有效递送依然是临床转化的最大瓶颈。当前的脂质纳米颗粒(LNPs)主要用于肝脏和脾脏的递送,但在面对肺部复杂的生理屏障时,尤其是肺上皮细胞的递送,效果仍不尽如人意。因此,开发更具选择性和安全性的递送系统已成为推进mRNA治疗的重要方向。

本研究创新性地设计了一种冠状可降解离子化脂质(CBILs),通过金属配位化学调控脂质纳米颗粒的体内靶向能力。这种设计利用了金属离子(如Zn²)与脂质分子间的独特相互作用,以构建能够精准递送的纳米平台。其中,Zn-9C-SCC-10脂质纳米颗粒可选择性递送mRNA至肺部上皮和内皮细胞,递送效率分别高达43%和61%,远超现有技术。相比传统添加阳离子脂质的策略,该系统显著提升了肺部mRNA表达水平,并大幅降低了肺损伤和血栓风险,为治疗囊性纤维化等肺部疾病提供了安全高效的解决方案。

除此之外,这项研究还展示了CBILs的多功能潜力。通过与钆离子(Gd³)配位,开发团队进一步实现了肺部肿瘤的磁/荧光双模态成像,使mRNA递送与疾病诊断结合成为可能。这种集成型纳米平台在提供高效基因递送的同时,还具备良好的影像诊断能力,为肺癌的早期发现与治疗提供了全新手段。这一研究不仅为靶向肺部的mRNA药物研发开辟了新途径,也为多功能mRNA药物的开发和肺部精准医学的未来发展提供了宝贵启示。

图1. 冠状可离子化脂质通过与金属离子配位实现系统性mRNA肺部递送。(a) 代表性Zn-9C-SCC-10的合成路线。(b) 组合反应中使用的3种冠状氨基头基和6种硫醇的结构列表。(c) 通过金属配位设计调控CBIL-LNPs的体内靶向行为,从肝脏转向肺部的示意图。注射不同Fluc mRNA LNPs(剂量为0.2 mg kg¹)后6小时内拍摄的BALB/c小鼠及主要器官的生物发光图像(曝光时间=15秒)。H代表心脏,Li代表肝脏,S代表脾脏,Lu代表肺,K代表肾脏。(d) 探索与不同金属离子(包括Zn²、Co²、Fe³、Cu²和Ca²)配位的9C-SCC-10在体内实现可预测的肺部选择性mRNA递送的普适性。小鼠静脉注射金属离子配位CBIL-LNPs(0.2 mg kg¹)后6小时拍摄的生物发光图像(曝光时间=15秒)。(e) (d)中小鼠肺部体内荧光素酶表达的定量分析。所有发光图像中的色标单位为辐射度(p/sec/cm²/sr)。

图2. 冠状脂质的结构-活性关系显示,依赖Zn²配位而非具体化学结构实现体内器官选择性荧光素酶mRNA递送至肺部。(a) 对CBIL冠状氨基头基的体内评估,验证其对肺部选择性mRNA递送的能力。静脉注射不同LNPs(Fluc mRNA剂量为0.2 mg kg¹)后6小时,BALB/c小鼠及主要器官的生物发光图像(曝光时间=15秒)。H为心脏,Li为肝脏,S为脾脏,Lu为肺,K为肾脏。(b) (a)中分离出的肝脏和肺组织中荧光素酶表达的定量分析。(c) 对CBIL中连接基团的体内筛选,评估其肺部选择性mRNA递送性能。静脉注射Fluc mRNA负载的LNPs(剂量为0.2 mg kg¹)后6小时,获取BALB/c小鼠及主要器官的生物发光图像(曝光时间=15秒)。(d) (c)中分离的肝脏和肺组织中荧光素酶表达的定量分析。(e) 对CBIL疏水尾基的体内筛选,评估其肺部选择性mRNA递送性能。静脉注射不同Fluc mRNA LNPs(CBIL-LNPs为0.1 mg kg¹,Zn-CBIL-LNPs为0.2 mg kg¹)后6小时,获取BALB/c小鼠的生物发光图像(曝光时间=15秒)。(f) (e)中分离出的肝脏和肺组织中荧光素酶表达的定量分析。

图3. 优化后的Zn-9C-SCC-10 LNPs显著提升了肺部选择性mRNA递送的效率和体内生物安全性。(a) 通过调整各组分的摩尔比例对LNP配方进行优化。(b) 不同配方的Zn-9C-SCC-10 LNPs表面pKa值测定。(c) 不同配方的Zn-9C-SCC-10 LNPs的粒径和zeta电位测定。(d) 在BALB/c小鼠中筛选不同配方的Zn-9C-SCC-10 LNPs,并获取小鼠及主要器官的生物发光图像。(e) 分离肺组织中的荧光素酶表达定量分析。(f, g) 在静脉注射优化后的Zn-9C-SCC-10 LNPs和SORT LNPs后6小时,获取BALB/c小鼠及主要器官的生物发光图像。(h) 分离肺组织中荧光素酶表达的定量比较。(i) Zn-9C-SCC-10 LNPs和SORT LNPs在1× PBS中的zeta电位测定。(j) Zn-9C-SCC-10 LNPs和SORT LNPs的溶血实验(pH 7.4);1× PBS作为阴性对照,1% Triton X-100作为阳性对照。(k) 对处理过Zn-9C-SCC-10 LNPs和SORT LNPs的肺组织切片进行Masson三色染色和H&E染色分析(比例尺:200 μm)。明场图像中黑色箭头指示肺组织中出现的类似“肝变”的黑红色病灶。

图4.Gd-12C-SCC-10 LNPs实现了早期肺癌的磁共振与生物发光双模态成像。(a) 对Gd-9C/12C/14C-SCC-10进行体内筛选以评估其肺部选择性mRNA递送能力。静脉注射Gd-CBIL LNPs6小时后拍摄的生物发光图像。(b) 定量分析(a)中小鼠肺组织的荧光素酶表达。(c) 示意图:在BALB/c小鼠中建立肺转移癌模型,并通过磁共振与生物发光双模态成像检测癌症转移。(d) 静脉注射Gd-12C-SCC-10 LNPs6小时后,小鼠冠状面T1加权MRI成像。(e) 相对灰度值定量分析。(f) 隔离肺组织的白光照片及H&E染色分析(比例尺:200 μm)。(g) 用于检测LAP的生物发光探针LAP-Luc的工作机制示意图。(h) 不同浓度LAPLAP-Luc100 μM)在荧光素酶(15 μg/mL)、ATP2 mM)和Mg²10 mM)存在下的浓度依赖性生物发光成像。(i) LAP-Luc100 μM)处理不同浓度LAP的生物发光强度定量分析。(j) 静脉注射载有Fluc mRNAGd-12C-SCC-10 LNPs0.2 mg kg¹)6小时后,BALB/c小鼠注射LAP-Luc30 mg/mL100 μL,皮下注射)并进行生物发光成像,显示4T1肺转移肿瘤小鼠模型的成像结果。(k) 肺部转移信号相对于正常肺部的信噪比(SNR)归一化分析。


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