年度优秀论文 | 基于单细胞测序技术构建小鼠磨牙牙髓细胞的发育图谱

健康   2024-10-10 16:55   北京  

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作者:温泉 任惠惠 赵玉鸣 闫文娟 葛立宏 陈小贤

通信作者:陈小贤

作者单位:北京大学口腔医学院·口腔医院第一门诊部 国家口腔医学中心 国家口腔疾病临床医学研究中心 口腔生物材料和数字诊疗装备国家工程研究中心 口腔数字医学北京市重点实验室(温泉、闫文娟、陈小贤);北京大学口腔医学院·口腔医院儿童口腔科 国家口腔医学中心 国家口腔疾病临床医学研究中心 口腔生物材料和数字诊疗装备国家工程研究中心 口腔数字医学北京市重点实验室(任惠惠、赵玉鸣、葛立宏

引用本文:温泉, 任惠惠, 赵玉鸣, 等. 基于单细胞测序技术构建小鼠磨牙牙髓细胞的发育图谱[J]. 中华口腔医学杂志, 2023, 58(5): 442-450. DOI: 10.3760/cma.j.cn112144-20220901-00471.

 摘要

目的

通过在单细胞水平分析小鼠磨牙细胞间异质性,构建牙髓细胞发育的时空图谱,进一步揭示牙齿发育的过程和调控机制。


方法

分别收集出生后0、3 d的C57BL/6小鼠下颌第一磨牙各10颗,制备单细胞悬液,采用单细胞转录组测序(single-cell RNA sequencing,scRNA-seq)技术进行测序。从本课题组前期研究中提取出生后7 d小鼠磨牙scRNA-seq数据,与0、3 d数据进行合并分析。使用Seurat程序对测序数据进行质控、标准化、降维和聚类分析;Monocle程序进行拟时序分析,预测发育轨迹;Scillus程序进行基因本体分析,对细胞功能进行注释。使用原位杂交技术对标记基因进行体内定位,明确不同亚群细胞的体内分布和时空变化。


结果

Seurat分析显示小鼠磨牙细胞具有26个细胞亚群,可分为牙髓细胞、牙囊细胞、上皮细胞、免疫细胞、内皮细胞、管周细胞、胶质细胞和红细胞等八大类细胞,其中牙髓细胞包含5个亚群:成熟牙髓细胞,标记基因为柯萨奇病毒腺病毒受体(coxsackie virus and adenovirus receptor,Cxadr);牙乳头细胞,标记基因为SPARC相关模块化钙结合蛋白2(SPARC related modular calcium binding 2,Smoc2);周期细胞,标记基因为Ⅱ型DNA拓扑异构酶(DNA topoisomerase Ⅱ alpha,Top2a);前成牙本质细胞,标记基因为棕榈酰蛋白羧酸酯酶(notum palmitoleoyl-protein carboxylesterase,Notum);成牙本质细胞,标记基因为牙本质涎磷蛋白(dentin sialophosphoprotein,Dspp)。随着牙胚发育,成熟牙髓细胞的比例逐渐增加,周期细胞和成牙本质细胞比例逐渐降低。原位杂交染色和基因本体分析结果显示,Cxadr+成熟牙髓细胞定位于牙冠上部,主要功能为成骨和“细胞外结构组织”;Smoc2+牙乳头细胞位于根尖,主要功能与“细胞外结构组织”和器官发育相关;Top2a+周期细胞位于牙冠下部,进行有丝分裂;Notum+前成牙本质细胞邻近上皮根鞘,和Dspp+成牙本质细胞的主要功能同为生物矿化。Monocle分析显示牙髓细胞有2条发育轨迹,从Smoc2+牙乳头细胞起始,经过Top2a+周期细胞,再分化为Cxadr+成熟牙髓细胞或成牙本质细胞。


结论

scRNA-seq技术能在转录组水平充分揭示细胞间的异质性,为研究器官发育过程和调控机制提供了有力工具。






牙的发育是原始口腔上皮和外胚间充质细胞相互作用的结果。牙的上皮成分发育为成釉器,最终形成牙釉质;间充质成分发育为牙乳头和牙囊,负责形成牙本质、牙髓和牙周支持组织。牙髓,作为牙体组织中唯一的软组织,能终生维持其自身活性,生成牙本质,承担支持、营养、感觉、防御等重要功能。研究牙齿发育,尤其是牙髓发育,对指导临床牙髓损伤修复和牙髓再生具有重要意义。

以往对牙齿发育的认知主要源于组织学观察和对单个基因的研究,缺乏在单细胞水平对细胞发育和功能的深入了解[ 1 ]。单细胞测序技术通过对单个细胞进行测序,表征其基因组、转录组、表观组等生物学信息,能准确反映每个细胞的特征,从而为研究细胞发育和功能,以及细胞间异质性和相互作用提供可靠依据,推动发育、遗传、免疫、干细胞、肿瘤等领域的研究进展。

本研究通过对不同发育时期的小鼠磨牙牙胚进行单细胞转录组测序(single-cell RNA sequencing,scRNA-seq),构建小鼠磨牙的细胞图谱和牙髓细胞的发育图谱,将进一步揭示牙齿发育的过程和调控机制,为研究牙髓损伤修复和牙髓再生提供更多理论依据。


材料和方法
本研究的时间为2020年9月至2022年8月,研究已通过北京大学生物医学伦理委员会的审批(批准号:LA2021053)。

1.实验动物:C57BL/6小鼠30只,饲养于北京大学口腔医学院实验动物中心,饲养条件为屏障环境,室温,普通饮食。

2.scRNA-seq:分别收集出生后0 d(钟状晚期)和3 d(牙冠定型)的幼鼠各5只,体视显微镜下完整取出每只幼鼠双侧下颌第一磨牙,置于4 ℃磷酸盐缓冲液中。0 d和3 d测序样本各收集5只小鼠的10颗磨牙,将收集到的牙齿转移至3 ml消化液(2 g/L Ⅰ型胶原酶+2 g/L中性蛋白酶+Hank's平衡盐溶液)中剪碎,于37 ℃下振荡消化25 min。将消化后的细胞悬液通过40 μm细胞过滤器过滤(FlowmiTM SP Scienceware,美国)获得单细胞悬液,进行细胞计数,检测活细胞比例,保证每个样本至少获得20 000个细胞。使用单细胞试剂盒(ChromiumTM Single Cell 3′ Reagent Kits v3,10×Genomics Inc,美国)构建单细胞文库。使用NovaSeq6000平台进行测序,参数设定为双端150 bp,每个细胞的测序深度为50 000读数。从本课题组已发表的研究中提取出生后7 d(牙根开始发育)的小鼠磨牙scRNA-seq数据[ 2 ],与本研究测序得到的0 d和3 d样本数据进行合并分析。使用CellRanger3.1.0软件(10×Genomics Inc,美国)对测序数据进行质控、基因组比对,生成基因表达矩阵用于后续分析。

3.单细胞表达矩阵分析:在R4.1.3环境中,使用Seurat4.0.5程序分析基因表达矩阵[ 3 ]。对数据进行质控,保留基因读数>200且<5 000,分子标签读数<30 000,线粒体基因比例<15%的细胞。应用NormalizeData功能对数据进行标准化,用FindVariableFeatures功能寻找差异基因。使用FindIntegrationAnchors和IntegrateData功能通过寻找不同组数据间相似的锚将0、3、7 d测序数据整合。应用ScaleData功能对整合后的数据进行线性转换,排除细胞周期对主成分的影响。运行主成分分析RunPCA,使用FindNeighbors和FindClusters功能根据细胞间相似性将细胞分为不同亚群,选择前20个主成分,分辨率设定为0.5,将细胞聚类。使用RunUMAP功能进行非线性降维,绘制统一流形逼近和投影(uniform manifold approximation and projection,UMAP)图。使用FindMarkers功能寻找各亚群的差异表达基因(differentially expressed genes,DEG),生成基因表达热图。根据各亚群的DEG,结合文献和CellMarker数据库定义各亚群的身份[ 2 , 4 , 5 ]。单独提取牙髓细胞的亚群,并再次进行聚类分析,分辨率设定为0.3。

Monocle3程序分析流程:使用R程序的SeuratWrappers功能将Seurat对象转换为Monocle3对象。使用细胞分群(cluster_cells)功能对数据进行分群,用学习曲线(learn_graph)功能预测细胞发育轨迹,用排列细胞功能(order_cells)将细胞按照拟时序排列[ 6 ]

Scillus程序分析流程:使用绘制基因分体(plot_cluster_go)功能对各亚群的前100 DEG进行基因本体(gene ontology)分析,对各细胞亚群的主要功能进行注释[ 7 ]

4.原位杂交染色:收集0、3、7 d的小鼠下颌骨各4个,常规固定、脱矿后制备小鼠下颌第一磨牙矢状位冰冻切片。使用原位杂交试剂盒(RNAscope Multiplex Fluorescent v2,323110,Advanced Cell Diagnostics,美国),按照试剂盒说明书操作。使用4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(4′,6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)染色液进行细胞核染色。所用探针均从Advanced Cell Diagnostics公司(美国)购入,包括:柯萨奇病毒腺病毒受体(coxsackie virus and adenovirus receptor,Cxadr)(550711-C2)、SPARC相关模块化钙结合蛋白2(SPARC related modular calcium binding 2,Smoc2)(318541)、Ⅱ型DNA拓扑异构酶(DNA topoisomerase Ⅱ alpha,Top2a)(491221)、棕榈酰蛋白羧酸酯酶(notum palmitoleoyl-protein carboxylesterase,Notum)(428981)和牙本质涎磷蛋白(dentin sialophosphoprotein,Dspp)(448301)。


结果

1.小鼠磨牙的单细胞转录组图谱:图12 。小鼠0、3、7 d磨牙样本分别测序8 571、4 824和8 925个细胞,3个时点的样本共测序22 320个细胞。通过质控排除低质量细胞后,共计17 793个细胞进入后续分析。将3个时点样本整合后,所有细胞被分为26个亚群,将其定义为八大类细胞,分别为牙髓细胞(亚群0、3、7、12、14)、牙囊细胞(亚群1、13)、上皮细胞(亚群6、10、11、16、17、24)、免疫细胞(亚群4、8、15、19、21、23)、内皮细胞(亚群5、20)、管周细胞(亚群18)、胶质细胞(亚群25)和红细胞(亚群9、22)( 图1A )。亚群2的DEG不明显,因而无法分类( 图2 )。分别查看0、3、7 d样本的UMAP图,发现三者在细胞亚群分布上基本一致,但在亚群的细胞数量上有差别( 图1B )。


图1 不同发育时期小鼠磨牙的单细胞转录组测序及其整合分析  A:0、3、7 d 3个时点样本整合后的统一流形逼近和投影(UMAP)图(每个点代表1个细胞,不同颜色代表不同亚群,数字为亚群序号,虚线内表示该亚群定义为同一类细胞);B:3个时点样本各自的UMAP图;C:5个主要细胞类型的标记基因在UMAP图上的表达情况,Dcn为核心蛋白聚糖,Ibsp为整合素结合唾液蛋白,Krt14为角蛋白14,Ptprc为蛋白酪氨酸磷酸酶受体C,Cdh5为血管内皮钙黏蛋白(颜色越深代表标记基因的表达量越高,灰色代表无表达)


图2 小鼠磨牙各细胞亚群的基因表达热图


根据DEG的特异性,从基因表达热图中各选择1个基因作为每种细胞的标记基因,其中核心蛋白聚糖(decorin,Dcn)主要表达于牙髓细胞,整合素结合唾液蛋白(integrin binding sialoprotein,Ibsp)主要表达于牙囊细胞,角蛋白14(keratin 14,Krt14)主要表达于上皮细胞,蛋白酪氨酸磷酸酶受体C(protein tyrosine phosphatase receptor type C,Ptprc)主要表达于免疫细胞,血管内皮钙黏蛋白(cadherin 5,Cdh5)主要表达于内皮细胞( 图1C )。管周细胞、胶质细胞和红细胞的标记基因见 图2 。在每种细胞内部各亚群之间,既有共同的DEG,又有各自特异性的DEG,如Krt14和角蛋白5(keratin5,Krt5)在上皮细胞所有亚群中均表达,而X-连锁釉原蛋白(amelogenin X-linked,Amelx)在亚群16、17中强表达,上皮细胞黏附分子(epithelial cell adhesion molecule,Epcam)在亚群10、17、24中强表达( 图2 )。


2.牙髓细胞的分区图谱:牙髓细胞再次聚类分析结果显示,牙髓细胞仍然分为5个相连的细胞亚群(亚群0~4, 图3A )。细胞周期分布显示,亚群2主要处于G2/M期和S期,其他4个亚群多处于G1期( 图3B )。



图3 小鼠牙髓细胞的聚类分析及体内定位  A:牙髓细胞的统一流形逼近和投影(UMAP)图(每个点代表1个细胞,不同颜色代表不同亚群,数字为亚群序号);B:牙髓细胞的细胞周期分布;C~G:牙髓细胞各亚群标记基因在UMAP图上的表达(上图)和体内原位杂交染色(下图)结果,箭头示阳性信号为红色,蓝色示细胞核(Cxadr为柯萨奇病毒腺病毒受体,Smoc2为SPARC相关模块化钙结合蛋白2,Top2a为Ⅱ型DNA拓扑异构酶,Notum为棕榈酰蛋白羧酸酯酶,Dspp为牙本质涎磷蛋白);H:7 d小鼠磨牙牙髓的分区模式图谱(不同颜色代表不同细胞亚群,数字为亚群序号)


基因表达热图显示小鼠牙髓细胞各亚群的DEG具有明显差异,从中选择1个DEG作为各亚群的标记基因( 图3 C~G, 图4 )。原位杂交染色显示,亚群0的标记基因Cxadr主要表达于冠方的成熟牙髓中,亚群1的标记基因Smoc2主要表达于根尖部的牙乳头细胞中,亚群2的标记基因Top2a位于牙髓中下三分之一,亚群3的标记基因Notum主要在表达于上皮根鞘附近的前成牙本质细胞中,亚群4的标记基因Dspp表达于成熟成牙本质细胞中。根据标记基因的体内定位及分布,对各亚群的身份进行定义,亚群0为成熟牙髓细胞,亚群1为牙乳头细胞,亚群2为周期细胞,亚群3为前成牙本质细胞,亚群4为成牙本质细胞,7 d小鼠磨牙牙髓的体内分区图谱见图3H 。


图4鼠磨牙牙髓细胞的基因表达热图


3.牙髓细胞的发育轨迹:图5 。0、3、7 d 3个时点的牙髓UMAP图及细胞数量统计显示,亚群0成熟牙髓细胞比例逐渐增多,亚群1牙乳头细胞变化不明显,而亚群2周期细胞、亚群3前成牙本质细胞和亚群4成牙本质细胞的比例逐渐减少( 图5A ,D)。拟时序分析显示,牙髓细胞有1个发育起点,位于亚群1,发育轨迹经过亚群2后,分化为2个发育终点,分别位于亚群0和亚群4( 图5B )。小鼠磨牙牙髓细胞发育轨迹模式图显示,牙髓细胞的发育从Smoc2+的牙乳头细胞出发,经过增殖(Top2a+周期细胞),分化出两条不同的发育方向,一是向Cxadr+的成熟牙髓细胞分化,二是经过Notum+的前成牙本质细胞,向Dspp+的成熟成牙本质细胞分化( 图5C )。


图5 小鼠磨牙牙髓细胞发育的动态变化分析  A:0、3、7 d牙髓细胞各自的统一流形逼近和投影(UMAP)图;B:拟时序分析显示牙髓细胞的发育轨迹(空心1为起点,实心1、2为终点);C:牙髓细胞发育轨迹模式图;D:不同发育阶段牙髓细胞的比例分析;E:小提琴图,显示亚群0、2的标记基因柯萨奇病毒腺病毒受体(Cxadr)和Ⅱ型DNA拓扑异构酶(Top2a)在不同发育时期的表达水平变化


小提琴图显示,Cxadr的表达集中在亚群0,表达水平随着牙齿发育明显上升;Top2a的表达集中在亚群2,表达量逐渐下降( 图5E )。原位杂交结果显示( 图6 ),Smoc2在胚胎期16.5 d遍布整个牙乳头;在0 d分布于牙胚下部;在7 d时,仅局限于根尖部( 图3D )。Notum在0 d时遍布整个成牙本质细胞层,此时Dspp的表达尚不明显且分散;在3和7 d时Notum逐渐向根方的上皮根鞘附近集中( 图3F , 图6 ),而冠部的成牙本质细胞层出现Dspp强阳性表达( 图3G , 图6 )。


图6 不同发育时期小鼠下颌第一磨牙的原位杂交染色图(红色示阳性信号,蓝色示细胞核)A:胚胎期16.5 d(E16.5 d)牙乳头细胞标记基因SPARC相关模块化钙结合蛋白2(Smoc2)染色;B:0 d Smoc2染色;C:0 d前成牙本质细胞标记基因棕榈酰蛋白羧酸酯酶(Notum)染色;D:3 d Notum染色;E:0 d成牙本质细胞标记基因牙本质涎磷蛋白(Dspp)染色;F:3 d Dspp染色


4.牙髓细胞的功能分析:图7 。各亚群主要的生物学过程和分子功能的基因本体分析注释结果显示,亚群0(成熟牙髓细胞)主要与成骨、矿化和细胞外基质结构相关,具备与多种胞外分子结合的能力( 图7A );亚群1(牙乳头细胞)主要与“细胞外结构组织”和器官发育相关( 图7B );亚群2(周期细胞)的主要功能都与有丝分裂相关( 图7C );亚群3和4为成牙本质细胞系亚群,功能皆与生物矿化和细胞外基质结构相关( 图7D ,E)。成熟牙髓细胞和成牙本质细胞在功能上相近,不同之处在于成熟牙髓细胞具有细胞-基质黏附功能和硫化物结合能力,成牙本质细胞具有胶原纤维组织功能、双加氧酶活性和L-抗坏血酸结合能力。


图7 小鼠磨牙牙髓细胞不同亚群的基因本体分析结果  A:亚群0;B:亚群1;C:亚群2;D:亚群3;E:亚群4


讨论

随着单细胞测序技术的广泛应用,人类对器官发育和疾病发生、发展的认知站上了新台阶。单细胞测序技术于2018年开始应用于口腔研究,Takahashi等[ 8 ]借助scRNA-seq发现小鼠牙囊中的甲状旁腺激素相关蛋白标记间充质干细胞,通过自分泌作用调控细胞命运。Sharir等[ 9 ]通过scRNA-seq,发现小鼠切牙上皮干细胞处于活跃的细胞周期中,明确了干细胞在颈环中的定位和分化路径。目前的研究致力于绘制小鼠和人类牙齿的细胞图谱,揭示牙胚不同种类细胞间的调控和通讯网络[ 4 , 10 , 11 , 12 ]。现有研究通常是对单一发育阶段的牙齿进行scRNA-seq,难以在时间维度上对单个细胞的发育进行动态分析。本研究选取0、3、7 d 3个发育阶段的小鼠磨牙进行scRNA-seq。这期间牙胚迅速发育,细胞类型丰富、全面,更有助于发现细胞在发育过程中的动态变化规律。在未来的研究中,有必要对更早期和更晚期的牙齿进行scRNA-seq,以完善牙齿发育全周期的细胞图谱绘制。


为方便叙述,本文中的牙髓细胞包括牙乳头细胞、成牙本质细胞和成纤维细胞。牙髓由牙乳头发育而来,二者在组织学上无明显界限[ 13 , 14 ]。本研究发现牙髓和牙乳头在转录组水平具有明显差异,参与的生物学过程也显著不同,为揭示二者的异质性和功能提供了可靠依据。牙乳头细胞的基因功能主要与器官发育相关,说明牙乳头细胞处于分化早期,且它的细胞周期位于G1期,这些结果都与其间充质干细胞的身份相符[ 15 ]。本研究发现Smoc2标记小鼠牙乳头细胞,这与既往研究中人根尖牙乳头细胞高表达Smoc2的结果一致[ 16 ]。Smoc2还是小肠干细胞的体内标志物[ 17 ],提示Smoc2与干细胞功能密切相关。Smoc2与骨骼、牙齿的发育密切相关,Smoc2基因突变导致严重的缺牙和牙齿发育异常[ 18 , 19 ],具体机制还有待进一步探索。牙髓细胞中还存在一个周期细胞亚群,标记基因是Top2a,基因本体分析显示该亚群基因功能与有丝分裂相关,说明这群细胞在进行活跃的细胞增殖[ 20 ]。在小鼠切牙和小肠等多种干细胞微环境中,都存在类似的处于活跃增殖状态的过渡放大细胞[ 17 , 21 ]。本研究显示Cxadr在小鼠成熟牙髓中高表达。Cxadr突变小鼠表现为多种致死性的发育缺陷[ 22 ],其在牙齿发育中的作用尚不明确。虽然成熟牙髓细胞和成牙本质细胞位于分化的两条路径上,但它们在功能上十分相近,成熟牙髓细胞的功能与成骨和矿化密切相关,这或许能解释为何外伤后的牙齿容易发生牙髓钙化[ 23 ]。成牙本质细胞是只存在于牙髓的特异性细胞,其分子标志物的鉴定常用于判断牙髓干细胞的分化状态。目前的研究发现成牙本质细胞特异性表达Dspp、牙本质基质蛋白1、骨钙素等标志物[ 24 ]。前成牙本质细胞是牙乳头细胞向成牙本质细胞分化的中间状态,其定位和特征尚不明确。在本课题组前期研究中,发现Notum作为前成牙本质细胞的标志物,在调节成牙本质分化中发挥重要作用[ 2 ]。本研究通过原位杂交技术,对前成牙本质细胞和成牙本质细胞在不同发育时期的体内定位和相互关系进行精确测绘,并结合scRNA-seq完整绘制了它们的转录组图谱和发育轨迹,对研究其功能和牙髓干细胞的定向分化具有重要意义。


除了牙髓细胞,牙胚中还存在牙囊细胞、上皮细胞、免疫细胞、管周细胞、内皮细胞、胶质细胞等一系列重要的细胞类型。牙囊细胞和上皮细胞的细胞图谱和发育轨迹已被初步阐释[ 9 , 25 , 26 ]。牙源性干细胞是组织工程常用的种子细胞,目前的研究发现常用的牙源性干细胞标志物,如Cd90、Cd105、Cd146等,在体内定位于管周细胞和内皮细胞,而非牙髓细胞[ 27 ]。本研究中牙髓细胞的DEG也未发现这些标记基因,提示在发育和稳态维持过程中,干细胞的来源可能不同。目前牙胚中免疫细胞的图谱和功能尚不明确,不同研究中免疫细胞的种类及数量差别较大,还有待进一步深入研究[ 4 , 11 ]


综上,本研究借助scRNA-seq技术,揭示了小鼠磨牙的细胞图谱和标记基因,从时间和空间两个维度绘制了牙髓细胞的发育图谱,并对牙髓细胞各亚群的功能进行了初步分析,研究结果可为阐明牙齿的发育过程和调控机制提供参考,为临床实现牙髓损伤修复和牙髓再生提供依据。


利益冲突  所有作者声明不存在利益冲突

作者贡献声明 温泉:课题设计、实验实施、数据分析、论文撰写;任惠惠:实验实施、论文修改;赵玉鸣:课题设计、论文修改;闫文娟:数据分析、论文修改;葛立宏:课题设计、论文修改;陈小贤:课题设计、论文修改

(参考文献略)

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