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文摘   2024-12-03 09:05   江苏  



可变剪切使得一个基因可以编码多个不同的蛋白质亚型,这些亚型可能具有不同的功能或定位,从而增加了生物体的功能复杂性。例如BCL2L1基因受RNA结合蛋白RBM4的调控,可以产生BCLxL和BCLxS两种异构体,当RBM4表达较低时,就产生更长形式的Bcl-xL,而这种长的形式会抑制细胞的死亡,即让细胞无限增殖,从而导致了癌症的发生和发展
肿瘤通常表现出比正常组织更复杂的剪接序列,致瘤性可能与转化过程中出现的癌症特异性替代剪事件有关。癌症相关的替代剪接异构体可以提供增殖优势,改善细胞迁移和转移,使细胞免于死亡,重新连接细代谢或细胞信号,促进有利的微环境,改变免疫反应或实现耐药性。例如,转录因子KLF6,其调节细胞增殖、分化0存活,并且通常通过突变或缺失在肿瘤中失活。KLF6的选择性剪接可以产生致癌异构体KLF6-SV1,而不是全长肿瘤抑制异构体。在前列腺、肺、卵巢、脑、乳腺、胰腺和肝脏肿瘤中检测到KLF6-SV1水平升高,并与生存率低相关。
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DOI: 10.1002/hep.32195

背景:

肝细胞性肝癌(Hepatocellular carcinoma HCC是最常见的原发性肝癌,生存率低且预后不良,是癌症死亡的第二大原因,因此了解肝癌转移的分子机制至关重要。选择性剪接(Alternative splicing AS是扩展基因表达模式和产生蛋白质多样性的关键生物过程,异常事件一直被认为是癌症进展的关键标志之一。DEAD-box家族是一类以D(Asp)-E(Glu)-A(Ala)-D(Asp)为保守序列的RNA解旋酶家族,参与需要RNA调节的所有细胞过程,越来越多的研究表明,DDX家族在肿瘤组织中存在异常表达,且与肿瘤的发生、发展、转移以及侵袭等方面有关。其中DDX17已被报导参与许多重要肿瘤相关基因的AS事件,如NFAT5CD44等,但其在肝癌中的作用还没有被很好的研究。

在这篇文章中作者报导了DDX17在肝癌中的经常性上调,且通过对于转移性肝癌和非转移性肝癌的RNA-seq分析,描绘了HCCAS景观,确定了DDX17调节的PXN反义转录本1lncRNA-PXN-AS1),参与促进HCC的肿瘤转移。

主要内容:

  1. 1.      DDX17是选择性剪接的重要调节因子,被鉴定为与HCC转移密切相关的上调基因。

作者首先对于9对肝外转移的原发性HCC组织(EHMH)和9对无转移HCC组织(MFH)进行了RNA-seq分析,结果显示与相邻的非肿瘤组织(ANT)相比,在EHMH中共有5149个差异表达的蛋白质编码基因,而MFH中存在4087个差异表达的蛋白质编码基因,在此基础上,作者分析了数据中的AS事件,这些事件可分为五个主要的AS模式,包括替代的3'5'剪接位点(A3SSA5SS)、互斥外显子(MXE)、内含子保留(IR)和外显子跳跃(SEFig.1A)。同时,作者评估了蛋白编码基因的显著剪接,发现相比MFHEHMH中有1070个不同AS事件,且EHMHMFH增加了AS事件(Fig.1B)。对于差异AS事件的富集分析显示,许多癌症相关的通路被富集,其中排名靠前的通路与肌动蛋白细胞骨架的调节和AMPK信号相关(Fig.1C)。此外,作者更详细地研究了人类癌症转移(HCMDB)数据库中1938个转移相关基因的剪接模式。发现相比于MFH,在EHMH140个差异表达转移相关基因,且70 (70/140, 50.00 %)基因有显著AS事件(Fig.1D-E)。转移相关基因的AS事件以A3SS(p = 0.027) A5SS(p= 0.041) IR(p = 0.029) SE(p = 0.001)增加最多;以上数据提示这些基因的剪接可能是肝癌转移的替代机制Fig.1F剪接调节器(Splicing regulators)在AS过程中起着关键作用,为了确定与肝癌转移相关的剪接失调调节因子,作者汇总了452个不同来源的剪接调节因子,包括spliceaid2数据库,lamya ben ameurnikolaigenovanita sveen等,发现相比于MFH,在EHMH28个剪接调节基因是失调的,其中27个基因上调,1个基因下调;且上调的基因中DDX17最为显著Fig.1G28个差异因子与375ASEs差异酶相关,参与多个生物学途径(Fig.1H-I)。

Fig.1

  1. 2.       DDX17水平高与肝癌患者预后不良相关。

接下来,为探究DDX17在肝癌中的临床意义,作者首先证明了TCGA数据库中DDX17在肝癌中表达升高,且与患者的预后不良相关。进一步,作者通过RT-qPCR实验验证了肝癌组织中DDX17mRNA水平明显高于正常组织(Fig.2C-D),且DDX17的水平与患者的生存率呈负相关(Fig.2E)。同时,为了探究DDX17在癌症转移中的作用,作者检测了28例转移肝细胞癌和56例无转移肝细胞癌中DDX17mRNA和蛋白水平,结果显示与无转移的肝癌组织相比,转移性肝癌组织中DDX17的表达明显升高(Fig.2F-H)。以上数据证明DDX17的表达升高与肝癌的预后不良显著相关。

Fig.2


  1. 3.       DDX17促进HCC生长和迁移。

为了确定DDX17的生物学功能,作者使用CRISPR-Cas9技术在肝癌细胞中进行了DDX17的敲除,Transwell实验结果显示DDX17的敲除明显抑制了HCC肿瘤细胞的迁移和侵袭(Fig.3A)。无脊椎动物膜是一种富含肌动蛋白的膜状突起,能够降解周围的细胞外间质以便入侵,因此,采用明胶降解法检测DDX17基因敲除对MHCC97HHCCLM3细胞功能的影响,结果显示,DDX17基因敲除减弱了MHCC97HHCCLM3细胞的侵袭能力(Fig.3B)。同时,F‐actin细胞染色证明了基因缺失后伪足形成明显减少(Fig.3C)。之后,作者进一步进行了体内实验,在肝细胞特异性DDX17敲除小鼠(DDX17HKO)和相应的对照小鼠(DDX17fl/fl)中构建DEN/CCl4诱导的肝癌发生模型,得到了与体外一致的实验结果,结果显示DDX17KO小鼠肝肿瘤的数目和大小以及肺转移灶减缓(Fig.3D-E),且DDX17过表达的小鼠中肝癌的体积和数量显著增加,肺转移明显增多(Fig.3F-G)。以上结果证明DDX17促进肝癌的发生发展。

Fig.3

  1. 4.       DDX17诱导HCC细胞中lncRNA - PXN - AS1内含子3保留。

为了阐明DDX17促进肝癌转移的分子机制,作者经RNA-seqRNA免疫沉淀和测序(RIP-seq)评估了DDX17敲除前后肝癌细胞中的AS事件,分析结果显示,作者发现了17个与DDX17密切相关的LncRNAsFig.4A-B),提示DDX17可能更倾向于影响lncRNA来驱动肝癌的转移。对于这些LncRNAs进行进一步分析,WBRT-qPCR结果发现只有PXN-AS1-IR3转录本在DDX17 KO细胞中显著减少,而且DDX17过表达细胞中显著增加(Fig.4C-D,J)。同时,患者样本的RNA-seq数据显示EHMHMFH组织中存在内含子3保留的PXN-AS1Fig.4E)。除此之外,作者还构建了shDDX17细胞系,得到了一致的结论(Fig.4H-I),RIPRNA pull down实验进一步验证了DDX17PXN-AS1存在相互作用Fig.4F-G)。

Fig.4

  1. 5.       PXN- AS1- IR3在体外和体内促进HCC细胞的迁移和侵袭。

为了进一步证明PXN- AS1- IR3在肝癌中的作用,作者在细胞中过表达PXN-AS1-IR3,而不是PXN-AS1-WT,导致伤口愈合能力、细胞迁移和体外侵袭增加(Fig.5A-C)。荧光明胶降解实验显示,异位表达PXN-AS1-IR3的肝癌细胞细胞外基质降解活性增强(Fig.5D)。同时,作者构建了裸鼠原位肝癌转移模型,实验结果显示PXN-AS1-IR3的过表达,显著促进了裸鼠原位肝癌模型的肝癌发生和肺转移(Fig.5E-F)。总的来说,这些结果表明PXN-AS1-IR3参与DDX17介导的HCC迁移信号通路。

Fig.5

  1. 6.       PXN-AS1-IR3通过MYC增强子的染色质修饰激活MYC信号通路。

为了确定PXN-AS1-IR3的下游靶点,作者对于PXN-AS1-IR3敲除前后的细胞进行了RNA-seqGSEA分析显示发现PXN-AS1-IR3敲除显著下调了“MYC信号”和“Wnt通路”等(Fig.6A,MYC信号的GSEAPXN-AS1-IR3敲除的HCC细胞中显示出显著富集(Fig.6B)。RT-qPCR结果显示PXN-AS1-IR3敲除后MYC下游靶点下调(Fig.6C)。RIP实验进一步验证了PXN-AS1-IR3MYC之间存在相互作用(Fig.6D-E),之后,作者使用一系列PXN-AS1-IR3的截短片段进行RNA下拉分析,发现MYC特异性与内含子3区域发生相互作用Fig.6F此外,PXN-AS1-IR3基因敲除导致MYC mRNA和蛋白水平降低(Fig.6G)。最后,作者在PXN-AS1-IR3敲除细胞或DDX17敲除细胞中过度表达MYC,以探讨DDX17HCC细胞肿瘤发生的影响是否由MYC介导,结果显示MYC过度表达显著恢复了PXN-AS1-IR3敲除HCC细胞的迁移和侵袭能力(Fig.6H-I)。以上结果表明MYC参与DDX17-PXN-AS1-IR3调节轴。

Fig.6

7. PXN-AS1-IR3通过与Tex10相互作用,表观遗传调节MYC表达。

接下来,为了探索PXN-AS1-IR3如何调节MYC转录,作者进行了RNA pull down和质谱分析,以确定与PXN-AS1-IR3相关的蛋白质(Fig.7A)。Tex10通过修饰H3K4甲基化和招募辅激活因子组蛋白乙酰转移酶p300在转录调控中发挥重要作用,因此作者重点关注了这个蛋白,使用RNA pull downRIP进行验证,结果证实了PXN-AS1-IR3Tex10蛋白的显著结合Fig.7B-C)。和预期的那样,Tex10的基因沉默能够抑制MYC蛋白水平(Fig.7D)。Tex10的过度表达显著阻断PXN-AS1-IR3敲除诱导的MYC蛋白抑制(Fig.7E)。CHIP实验分析进一步显示,PXN-AS1-IR3基因敲除显著降低了MYC基因增强子区Tex10p300的占有率(Fig.7F),且增强子标记(H3K4me1H3K27ac)水平明显降低(Fig.7G)。PXN-AS1-IR3基因敲除导致下游基因MMP2MMP9启动子区域MYC结合富集度降低,最终导致MMP2MMP9mRNA和蛋白质水平降低(Fig.7H-I)。以上数据表明,PXN-AS1-IR3通过与Tex10相互作用,表观遗传调节MYC表达,从而促进肝癌的进展。

Fig.7

  1. 8.      人肝癌中DDX17PXN-AS1-IR3MYC表达存在相关性。

为了评估PXN-AS1在肝癌患者中的临床意义,作者检测了84对原发性肝癌和邻近非肿瘤肝组织(包括56MFH28EHMH)中PXN-AS1-WTPXN-AS1-IR3MYC mRNA水平。与MFH相比,EHMH中的PXN-AS1-IR3MYC mRNA水平显著上调,而PXN-AS1-WT未显示出显著变化(Fig.8A)。此外,作者在另一个HCC队列(40EHMH40MFH)的血液样本和HCC样本中验证了PXN-AS1-IR3PNX-AS1-WT水平,结果显示EHMH组血清和HCC组织中的PXN-AS1-IR3水平显著升高(Fig.8B-C)。相关性分析显示40EHMHDDX17PXN-AS1-IR3DDX17MYCPXN-AS1-IR3MYC mRNA水平呈正相关(Fig.8D-F)。以上数据证明体内DDX17-PXN-AS1-IR3-MYC调节轴的存在(Fig.8G)。

Fig.8

总结讨论:

这篇文章是先通过RNA测序数据,从中去筛选关键的靶点,再针对该靶点去做功能验证,找到其调控的剪接变体,进而对剪接变体进行功能验证并分析其调控疾病的机制。这种思路比较适合课题之初,先通过高通量测序来找到关键因子,再去深入分析。

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